氯胺酮是什么 认识一些麻醉药的真名

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氯胺酮是什么认识一些麻醉药的真名

导语：我们都知道做手术一般都是需要麻醉的。那么，我们可知道麻醉剂里面的成分是什么吗？麻醉剂又是运用什么逻辑吗？这都是需要我们好好观察和认

我们都知道做手术一般都是需要麻醉的。那么，我们可知道麻醉剂里面的成分是什么吗？麻醉剂又是运用什么逻辑吗？这都是需要我们好好观察和认知的，大家不妨可以看看小编写的吧，还是相当有道理的。那么，下面就由小编来为大家好好介绍一下吧。

氯胺酮是什么

氯胺酮是什么为非巴比妥类静脉麻醉剂，可先阻断大脑联络径路和丘脑向新皮层的投射，故意识还部分存在，痛觉消失则明显而完全;随血药浓度升高而抑制整个中枢神经系统。作用快速但短暂，能选择地抑制大脑及丘脑，静脉注射后约30秒钟(肌内注射后约3?4分钟)即产生麻醉，但植物神经反射并不受抑制。麻醉作用持续约5?10分钟(肌内注射者约12?25分钟)。一般并不抑制呼吸，但可能发生短暂的呼吸频率减缓和潮气量降低，尤以静脉注射较快时容易发生。注入后可引起一定程度的血压上升和脉率加快，并可能引起喉痉挛。

氯胺酮的用途

1、种小手术或诊断操作时，可单独使用本品进行麻醉。对于需要肌肉松弛的手术，应加用肌肉松弛剂;对于内脏牵引较重的手术，应配合其他药物以减少牵引反应。

2、其他全身麻醉的诱导剂使用。

3、麻醉性能较弱的麻醉剂进行麻醉，或与其他全身或局部麻醉复合使用。

禁忌症

生活常识分享

实验报告-大鼠

姓名：薛桂凤学号：132015200300 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于0.1ml （麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针）（3）腹腔注射0.01-0.02ml/g（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为 1.26ml，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构

实验动物的麻醉方法

实验动物麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程屮所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验屮服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5 % 1%；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用 1 %?2%溶液作为大动物神经干阻滞麻醉， 也可用0. 25 %-0. 5 %溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醯乙瞇吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙瞇局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程屮要注意。但总起来说乙醛麻醉的优点 多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期岀现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20- 30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重5-10mg）及阿托品（每公斤体重0. lmg）。盐酸吗啡可降低屮枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醯用量及避免乙醸麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醸刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醯，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程屮， 仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程屮，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔 突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能 无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80-100mg/kg体重，静脉注射70-120mg/kg体重（一般每公斤体重给70-80mg即可麻醉，但有的动物要100-120mg才能麻醉，具体用量可根据各个动物的敏感性而定）。兔腹腔注射150-200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使 用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1-3% 生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1~2月不失药效。静脉或腹腔注 射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30-35mg/kg体重，腹腔注射 40 ^45mg/kg 体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配，常用浓度为 5%o此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快， 一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的麻醉深度。

实验报告-大鼠

姓名：薛桂凤学号： 实验报告（二） 一、实验目的： 1.掌握大鼠的抓取和固定。 2.掌握大鼠的编号与标记方法。 3.掌握大鼠的常用实验方法。 4.掌握大鼠的常用麻醉方法。 5.掌握大鼠的安死术。 6.掌握大鼠的釆血方法。 7.了解小鼠的采尿、粪的方法。 8.了解小鼠各种脏器标本的采集方法。 二、实验器材：SD大鼠、电子称、手套、实验托盘、固定板、烧杯、注射器（3支）、 剪刀、镊子、灌胃针头、毛细管、酒精棉球、5%水合氯醛、生理盐水 三、实验内容 1.抓取：两种方法。第一种方法：右手食指和中指夹住大鼠颈部，使其头部固定，右 手拇指及无名指分别在大鼠前爪下抓住大鼠身体。第二种方法类似单手抓取小鼠的 方法，用右手拇指及其余四指并捏住大鼠颈部背部皮肤。 2.称重：小鼠放在烧杯中称重（去除烧杯重量），记录小鼠体重210g。 3.鉴别大鼠性别：观察生殖器雄性大鼠的阴囊非常明显。 4.编号：染色法：逆毛方向涂上有色斑点，顺序由左到右，由上向下，用两种颜色 可标记99只动物。 5.给药： （1）皮下注射小于1ml/100g（俯卧固定，左手拇指和食指捏住皮肤提起，右手持针沿纵轴方向刺入皮肤，阻力消失后回抽无血注入药物，拔针）（2）皮内注射小于（麻醉后进行，先备皮）（俯卧固定，与皮肤平行刺入捏起的皮肤，阻力大，注射药物局部有皮丘后停留片刻后拔针） （3）腹腔注射（仰面固定，在腹正中线两侧腹股沟平行的位置30-45°进针，挑起皮肤和肌肉，回抽无血，注药） （4）灌胃1-2ml/100g （大鼠固定身体呈一条直线，灌胃针头顺着上颚插入咽部，先少量注药证明未入气管后继续给药） 6.釆血：尾尖釆血法、眼眶静脉丛釆血法、心脏釆血法(麻醉后) 。 7.大鼠的采尿、粪的方法 （1）少量采集：在抓取固定时受到刺激排出少量尿液和粪便 （2）长期大量采集：使用代谢笼 8.麻醉：根据大鼠体重计算麻醉药物用量5%水合氯醛按300mg/kg，给药，计算药 量为，ip 麻醉小鼠，观察小鼠麻醉期。 (1)全身麻醉的第一期（随意兴奋期）：出现运动和运动失调；35秒 (2)全身麻醉的第二期（不随意兴奋期）：是由意识完全丧失至深而规则的自动 呼吸开始时止;2分30秒 (3)全身麻醉的第三期：角膜反射由迟钝渐趋消失，翻正反射消失，疼痛反射 消失； 9.安死术：颈椎脱臼法：用左手按住动物的头部于实验台上，右手抓住尾根部，快速、 不间断地向后、略向上使劲拉，以致脊椎脱臼，脊髓与脑干断离而死亡。 10.解剖：观察大鼠的脏器解剖结构

大鼠水合氯醛麻醉心得[参考内容]

大鼠水合氯醛麻醉心得 本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间） 现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。 动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。 结果：如下表格所示： 水合氯醛浓度 4% 7% 7% 10% 10% 水合氯醛剂量 0.5mL/100g 0.3mL/100g 0.2mL/100g 0.2 mL/100g 0.3 mL/100g 诱导时间约7min 约4min 约7min 约4min 约4min 麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉 麻醉开始清醒时间约90min 约100min 未观察约68min 114min 结论： 1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。 2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。 3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关 在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗？》的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，

我的经验是这样： （1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。 （2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。 （3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。 由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。 我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h左右。 lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。 楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果？值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。 关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%, 10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g （这个剂量应该跟cma1954站友用的3% ，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够？不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，

实验动物的麻醉方法

实验动物麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 (二)常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹腔注射80～100mg/kg体重，静脉注射70～120mg/kg体重( 一般每公斤体重给70～80mg即可麻醉，但有的动物要100～120mg 才能麻醉,具体用量可根据各个动物的敏感性而定)。兔腹腔注射150～200mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长,一次给药的有效时间可延续3-5小时,所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～３％生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放臵1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重,腹腔注射40～45mg/kg体重。 4. 硫喷妥钠为黄色粉末，有硫臭，易吸水。其水溶液不稳定，故必须现用现配,常用浓度为1～5％。此药作静脉注射时，由于药液迅速进入脑组织，故诱导快，动物很快被麻醉。但苏醒也很快，一次给药的麻醉时效仅维持半至一小时。在时间较长的实验过程中，可重复注射，以维持一定的

大鼠的麻醉

大鼠的麻醉 集团企业公司编码：（LL3698-KKI1269-TM2483-LUI12689-ITT289-

大鼠的麻醉 点击次数：3690?发表于：2008-06-2522:38转载请注明来自丁香园 来源：

可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。 3、SD大鼠经口气管插管 腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G 或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。 二、异氟醚大鼠麻醉 安全且具有麻醉科特色。 我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发

实验动物的麻醉方法知识

实验动物的麻醉方法 麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所致的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 （一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成 0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物 神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。 （二）常用全身麻醉剂： 1. 乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法，各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相差大，所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大，可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用。因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品（基础麻醉），通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡（每公斤体重1～2mg）及阿托品（每公斤体重0.1mg）。 盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。 进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用，麻醉后可以先进行气管切开术，通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察瞳孔大小（如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。并施行必要的人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。 2. 苯巴比妥钠此药作用持久，应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法：大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。 3. 戊巴比妥钠此药麻醉时间不很长，一次给药的有效时间可延续2-4小时，所以十分适合一般使用要求。给药后对动物循环和呼吸系统无显著抑制作用，药品价格也很便宜。用时配成1～3%生理盐水溶液，必要时可加温溶解，配好的药液在常温下放置1～2月不失药效。静脉或腹腔注射后很快就进入麻醉期，使用剂量及方法为：狗、猫、兔静脉注射30～35mg/kg体重，腹腔注射40～45mg/kg体重，大鼠腹腔注射40-50mg/kg体重。但动物个体间差异颇大。用于兔、鼠死亡率较高；用于大等较大动物，亦需要辅助呼吸和其他复苏措施，且完全苏醒需要6～8小时。镇痛效果差，恢复时间长，尤其是为延长麻醉额外加量后更易发生。近来使用日趋减少。

戊巴比妥钠和异氟烷对大鼠急性应激反应的影响

戊巴比妥钠和异氟烷对大鼠急性应激反应的影响 麻醉前处死动物可能会干扰应激研究 腹腔注射戊巴比妥钠和异氟烷吸入不影响大脑mRNA水平 腹腔注射造成额外的应激和干扰血浆皮质酮 异氟烷吸入在应激反应伦理上最理想 研究背景：麻醉后处死动物在应激方面的研究是普遍的，但是麻醉对结果的影响研究不足。我们的目的是探究不同麻醉剂的影响，如在大鼠急性应激反应时腹腔注射戊巴比妥钠或吸入异氟烷。 方法：将大鼠随机分为电击（FS）和非应激对照组，进一步设定处死程序：直接斩首，腹腔注射戊巴比妥钠或吸入异氟烷后斩首。再设定一组对照组腹腔注射生理盐水后断头处死。测定血浆皮质酮（CORT），睾酮和雌二醇，下丘脑应激相关分子表达的促肾上腺皮质激素释放激素，血管加压素和催产素，与额叶相关分子表达的NMDA受体NR2B亚单位，GABAA受体和神经元烟碱型乙酰胆碱受体。 结果：直接斩首组和异氟烷电击（FS）显著增加血浆皮质酮（CORT），而腹腔注射戊巴比妥钠注射后，这种应激反应未出现。非应激对照组动物，无论是注射生理盐水还是戊巴比妥钠都引起的血浆皮质酮（CORT）显著增加。各组间性激素水平和大脑中的相关分子mRNA的表达差异显著。 结论：混合注射麻醉导致动物应激反应，妨碍了血浆皮质酮（CORT）水平，但影响血浆性激素水平和大脑mRNA的表达。异氟烷吸入应激反应影响较少，而且从实验动物伦理的角度来看，也是最理想的。 1.简介 应激反应与情感性精神障碍病因学的关系[ 1 ]促进了动物模型应激反应的研究。压力调节系统如下丘脑-垂体-肾上腺（HPA）轴活动已在不同的应激活动下丘脑-垂体-肾上腺（HPA）活性研究是由促肾上腺皮质激素释放激素（CRH）驱动的物质主要来自下丘脑室旁核（PVN）的下丘脑。HPA轴的最终目标的压力荷尔蒙激素，这主要是在大鼠皮质酮（CORT）。我们和其他组发现性激素如睾酮（T）、雌二醇（E2）和神经肽，如精氨酸加压素（A VP）和催产素（OXT），在压力反应[ 2 ]起重要调节作用。 处死动物的方式来研究可能的混淆作用引起了我们的关注。相关的生物学研究处死动物一般有两种方法：直接断头或给药后麻醉断头。断头可能是一个潜在的额外的压力，这也取决于研究者的经验，会影响研究结果[ 3 ]。无意识的麻醉药似乎减少了额外的压力[ 4 ]。然而，一些药物，如苯巴比妥，也会引起额外的应激反应，表现为增加血浆CORT水平[5,6]。此外，麻醉剂影响兴奋性受体抑制大脑的活动，包括N-甲基-D-天冬氨酸（NMDA）受体NR2B亚单位与神经元烟碱型乙酰胆碱受体（nnachr），通过抑制受体刺激如GABAA 受体（GABAAR）[ 7 ]。到目前为止是否经常使用麻醉剂如腹腔注射（ip）戊巴比妥钠或异氟烷吸入可能影响大鼠脑mRNA表达与在急性应激反应有关的分子，也不清楚腹腔注射戊巴比妥钠如何引起动物的附加应激。 因此我们分析了经验丰富的研究员用不同方式处死动物的影响，大鼠腹腔注射戊巴比妥钠和吸入异氟烷后电击（FS）和不刺激对照组比较，比较内容包括血浆CORT，T和E2水平，下丘脑CRH mRNA水平， A VP和OXT，与额叶NMDA-NR2B、GABAAR、mRNA和nnAChR的表达水平。 2.实验方法 2.1伦理陈述 所有动物使用和实验均按照实验动物的使用和保护指南(National Research Council, 1996, USA)，经中国国家委员会浙江分会批准。尽最大努力来减少动物的痛苦，并尽可能少用动物（更多细节见补充材料1）。2.2电击大鼠 雄性SD大鼠（体重300-330g），饲养在25-27℃房间，12h明暗交替，自由摄食饮水。给予一周时间适应环境。拟定0.5mA电刺激5s，然后间隔25min。动物居住条件和卫生细节连同FS协议见辅助材料1.将大鼠随机分为7组：1）对照或2）FS通过直接断头处死大鼠（分别为黄连解毒汤，FSD）；3）控制或4）腹腔注射3.5%戊巴比妥钠（3ml/kg）5分钟后FS大鼠断头处死（分别为和FSP）；5）对照或6）4%异氟醚在吸氧后1–2分钟FS大鼠断头处死（综合技术研究所或FSI组）；7）额外的对照组腹腔注射生理盐水（3

戊巴比妥钠麻醉大鼠时剂量与浓度选择

结果和讨论 1.两种灭菌饲料的营养成分　从表1可见,与对照组饲料相比,高热组粗蛋白损失11. 88%(P<0.05),而辐照组无显著差异。从表2可见,辐照组饲料维生素含量轻度下降,或无变化;高热组饲料维生素A、E、B1、B2、B6与对照组比,减少明显,其中维生素B1、B6损失达25%以上。 2.生长发育　饲喂辐照组饲料的小鼠体重增加明显高于高热组,特别是4、5、6周龄体重差异显著(P<0.05,表3),这可能与60Co C射线辐照后饲料营养成分特别是粗蛋白、维生素损失较少有关。 3.繁殖状况　如表4所示,饲喂辐照组饲料的小鼠其离乳数与高热组相比无明显差异(P>0.05),而窝产仔数、初生窝重、离乳窝重明显高于高热组饲料(P<0.05)。如果饲料中的蛋白质不足,动物可能出现负氮平衡。加上维生素摄入不足,从而影响胚胎发育。 由此可见,饲喂辐照饲料,小鼠不仅体重增长快,而且窝产仔数、初生窝重、离乳窝重均高于饲喂高压灭菌饲料,值得推广应用。 参考文献 1　王四旺,施新猷,娄清林,等.实验动物饲料60Co C 射线辐照后营养成分分析.上海实验动物科学, 1988,8(3):147149 2　张周,张素胤,杨秋龙,等.60Co C射线辐照消毒大鼠与小鼠饲料的效果.上海实验动物科学,1995,15 (4):201205 (收稿日期:19970515)　 戊巴比妥钠麻醉大鼠时剂量与浓度选择 朱森树　宋淑君 (解放军第251医院动物中心,张家口075000) 戊巴比妥钠为白色粉末,其水溶液不稳定,易析出结晶。它是一种镇静和抗癫痫药,用于动物实验麻醉与诱导麻醉的时间已较长。用于鼠类实验时,在使用剂量、浓度上各家做法不一。 我院动物中心曾配合烧伤医治研究中心、神经脊髓损伤治疗中心、骨科等科室,应用大鼠作动物实验。近几年以1%戊巴比妥钠液40mg/kg剂量,用于实验大鼠达2000多只,均收到良好效果,现将应用经验总结如下: 1.应用领域 (1)用于烧伤实验:用W istar大鼠,体重200～300g,术前禁食12h,以1%戊巴比妥钠40mg/kg剂量作腹腔注射麻醉。对大鼠分别施以各种化学烧伤,共用大鼠2063只。 (2)用于神经外科实验:用W istar大鼠,体重190～320g。术前禁食,以1%戊巴比妥钠40mg/kg麻醉,头部实验区脱毛。在急性脑损伤的微血管和超微结构实验研究及其药物治疗实验中共用大鼠350只。 (3)用于骨科实验:用SD和W istar大鼠,体重250～350g。实验前禁食,以1%戊巴比妥钠40mg/kg麻醉,将实验部位、鼠尾、四肢脱毛,做显微外科实验,用大鼠350只。 2.应用经验　戊巴比妥钠麻醉后,行大鼠动物实验是安全可靠的,且易控制。作者曾将2%～3%、0.5%浓度,以30mg/kg的剂量作效果比较试验,发现浓度较高,注射时稍有不慎易造成死亡。以3%戊巴比妥钠和30mg/kg的剂量麻醉,对体重250g的大鼠只能注射0. 25ml,剂量不易控制。若以0.5%戊巴比妥钠30mg/kg 的剂量注入,则需要注射1.25ml,剂量仍偏低,不能达到持续麻醉的效果,对实验时间较长的实验还需追加注射,妨碍实验,且可能造成麻醉药蓄积中毒。 我院在1993～1997年间,用大鼠作动物试验,用大鼠量达2700余只。实验前均禁食12h,均用1%戊巴比妥钠液以40mg/kg剂量作腹腔注射,麻醉成功率在96. 3%以上。作者认为,这一剂量和浓度是适用的。 (收稿日期:19960921) — 35 —

大鼠水合氯醛麻醉心得修订版

大鼠水合氯醛麻醉心得集团标准化小组：[VVOPPT-JOPP28-JPPTL98-LOPPNN]

大鼠水合氯醛麻醉心得本人所做的模型需要使用水合氯醛麻醉，所使用的是医院里配制的用于儿科灌肠的10%水合氯醛。在先前的实验中，剂量为0.3mL/100g（这个剂量来自于师姐使用的经验），麻醉完全清醒时间约4h（当初没有记录开始清醒的时间） 现在由于实验方案有所改动，希望麻醉的时间尽量缩短（1~1.5h），而麻醉深度保持不变，这样在侧脑室注射操作后，大鼠能够尽快的恢复清醒状态，便于后续的实验操作。因此，对水合氯醛麻醉的剂量与药效进行了摸索，我把它贴出来，跟大家分享一下。 动物：雄性SD大鼠4只，平均体重356g（这里就不算标准差了），水合氯醛浓度分为4%、7%、10%三个水平。 结果：如下表格所示： 水合氯醛浓度4%7%7%10%10% 水合氯醛剂量0.5mL/100g0.3mL/100g0.2mL/100g0.2mL/100g0.3mL/100g 诱导时间约7min约4min约7min约4min约4min 麻醉深度浅麻醉水平中度麻醉浅麻醉深度麻醉深度麻醉 麻醉开始清醒时间约90min约100min未观察约68min114min 结论： 1、麻醉的诱导，似乎从4%到（7%、10%），随着浓度的增加，麻醉诱导的时间缩短。但在7%及10%这两个浓度，麻醉时间基本一致。 2、麻醉时间的长度与水合氯醛的总剂量可能成正相关。 3、麻醉的深度跟与水合氯醛的浓度可能成正相关 在之前甲醛《做动物实验前必须给予阿托品吗》

的这篇中，有战友提出“把水合氯醛配成4%的，而不是10%的，这样就拉开了麻醉剂量和致死剂量之间的差距，可安全了”，我的经验是这样： （1）确实，4%的水合氯醛在实验中比较安全，我们一般用于追加麻醉的时候，4%水合氯醛每次1mL，追加一到两次，安全度颇高。 （2）而水合氯醛的致死剂量，我不是很了解，希望知道的战友能够告知一声。对于10%的水合氯醛，我们用到0.3mL/100g也很安全，应该距离致死剂量还有一段距离，麻醉深度与维持时间也很确切。 （3）据我认识的一位在伦敦大学获得博士学位的解剖学的教授介绍，英国人喜欢用7%的水合氯醛 0.5mL/100g，我看过他的博士论文也是用的是这个剂量。 由于样本量太小以及存在动物本身的个体差异，以上结果与结论科学性以及说服力有很大的欠缺。但是，当成实验的心得体会交流，应该也有一定的参考价值。欢迎大家分享关于水合氯醛使用的心得。 我们用5%的0.7ml/100g,感觉还不错。大概在腹腔注射5min之后就进入麻醉状态，麻醉状态可以维持3h 左右。 lixiang0526站友所用的方法，使用5%的浓度的话，按照我用4%和7%的经验，麻醉时间是可以维持，但是，恐怕麻醉深度不够。 楼主的剂量偏小，一般水合氯醛的剂量是300~350mg/kg，楼主仅200mg/kg左右，最低140mg/kg。能否达到麻醉效果值得考虑，当然水合氯醛的质量也有关系，楼主用的水合氯醛的质量、纯度可能很好；也可能是i.v，效果当然好。我们用5%，0.7ml；或3%，1～1.2ml/100g，效果很好，个人推荐3%，1ml/100g，浓度低，相对安全一些。 关于水合氯醛的浓度，3%，4%，5%，7%,10%都有人用，如果总剂量相同的话，麻醉维持的时间是差不多的，差别就在于麻醉的深度的诱导和维持，我这两天做了3只大鼠水合氯醛麻醉后侧脑室注射，用的是腹腔注射的方法，并非i.v，使用10%，0.3ml/100g（这个剂量应该跟cma1954站友用的3%，1ml/100g的总剂量相当）才可以保持麻醉的深度，侧脑室注射才可以顺利完成，但在切开皮肤的时候还是有明显的反应，我不知道怎么解释这个现象，真的是总剂量不够不见得，因为跟cma1954站友推荐的“3%，1ml/100g，”一样啊。水合氯醛的质量问题比较差有可能吧。

大鼠的麻醉

大鼠的麻醉 点击次数：3690 发表于：2008-06-25 22:38转载请注明来自丁香园 来源：丁香园 一、SD大鼠的麻醉 1、SD大鼠腹腔麻醉 把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。 乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。 乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/ kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。 2、SD大鼠吸入麻醉 可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC就够了，老鼠的异氟烷MA C大约是2%。 3、SD大鼠经口气管插管 腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。 二、异氟醚大鼠麻醉

SD大鼠麻醉

一、SD大鼠的麻醉 1、SD大鼠腹腔麻醉 把异氟烷和脂肪乳混合做成乳化异氟烷，腹腔注射，3分钟麻醉，30分钟清醒。 乳化异氟烷制备：用30%的脂肪乳为载体，在室温下（20℃）应用玻璃瓶法，配制成8%的乳化异氟烷。即将1.2ml的液态异氟烷和21.3ml的30%脂肪乳加入至一个气密性良好的25～30ml玻璃容器内，在振荡器上以2000r/min的速度剧烈震荡30s，静置30s，然后再以2000r/min速度剧烈震荡50min，达到平衡后放置于4℃冰箱保存备用。 乳化异氟烷，大鼠腹腔注射的半数有效量（ED50）相当于液态异氟烷0.51～0.64ml/kg，半数致死量（LD50）相当于液态异氟烷1.10～1.46ml/kg，治疗指数（TI）为2.24。致死量大鼠表现为呼吸抑制、心律失常，继而心跳停止。病理解剖显示腹腔注射乳化异氟烷不会引起心、肺、肝、肠系膜的病理改变。 2、SD大鼠吸入麻醉 可以作一个小金鱼缸（四方形）算出体积，钻个眼用橡皮塞塞住，老鼠装进去封住缸口，从橡皮塞插上注射器给液态吸入麻醉药（如1ml异氟烷可挥发成196ml的气体），算出需要的浓度就会算出需要的液态麻醉药量，一般一个MAC 就够了，老鼠的异氟烷MAC大约是2%。 3、SD大鼠经口气管插管 腹腔麻醉，四肢仰面固定，上下切牙用丝线系住作牵引，操作者头戴额镜（五官科检查耳朵用的），对面放置好光源（一个射灯），牵出舌头和下切牙丝线一起由左手捏住，上切牙丝线由助手提着或用止血钳夹住用自己的前胸固定，拉动丝线使头部上提和口充分张开，右手持18G或16G套管针（戴芯但不超过管口），看到声门（鱼口状）既可插管。 二、异氟醚大鼠麻醉 安全且具有麻醉科特色。 我们是用异氟醚（应该是国产的吧）麻醉的，用那种市面上常见的可以提的比较大的带盖塑料水杯自制一个封闭的小麻醉空间，水杯是那种直桶透明，盖子类似特百惠按盖，上有一个约2cm饮水孔的那种，用一个合适的注射器前端堵住饮水孔。使用时打开盖子，将杯子对着大鼠，大鼠顺势会自己进去，然后竖起杯子盖上盖，连抓大鼠都省了，超级安全！然后接麻醉机（临床淘汰的机型，不过作试验足够了），注意要事先准备好连接管道（临床上各种管子都是可以互相接口的），打开挥发器就行了。我们一般先开最大，大鼠一会儿不动了就麻好了（杯子要求至少半透明）。

大鼠及小鼠麻醉剂量

大鼠及小鼠麻醉剂量 IM:肌肉注射IV:静脉注射SC:皮下注射IP:腹腔注射 药物剂量途径麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW 0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC* IP* 镇静剂 Acepromazine Diazepam Ketamine 0.075 mg/100 g BW 0.5 mg/100 g BW 2.0 mg/100 g BW IM IP IM 注射麻醉剂 Ketamine Pentobarbital Thiopental Thiamylal 2.2-4.4 mg/100 g BW 10 mg/100 g BW 2.5 mg/100 g BW 1.5 mg/100 g BW 6.0 mg/100 g BW 2.5 mg/100 g BW 5.0 mg/100 g BW 2.5-5.0 mg/100 g BW IM IP IV IV IP IV IP IV 混合注射麻醉剂 Ketamine & Xylazine Fentanyl& Droperidol & Diazepam 8.7 & 1.3 mg/100 g BW 0.2-0.5 ml/100g BW (10% solution) IM IM

Ketamine & Acepromazine 0.5 mg/100g BW 2.2-4.4 & 0.075 mg/100 g BW IP IM 吸入麻醉剂 Methoxyflurane Halothane CO2 Induction: 2-4% Maintenance: 0.5-1.5% Induction: 1-3% Maintenance: 0.5-1.5% Induction: 10-15 seconds 止痛剂 Meperidine Pentacozine Nalbuphine Butorphanol Buprenorphine 2.0 mg/100 g BW 0.4 mg/100 g BW 1.0 mg/100 g BW 0.5 mg/100 g BW 0.1-0.5 mg/100 g BW 0.2 mg/100 g BW /12h 0.2 mg/100 g BW /6-8h IM, SC IP IM, SC, IV IM, SC IM, SC SC IP 不推荐使用的药物 Chloroform Carbon tetrachloride Chlorpromazine Ether Trichloroethylene

实验动物麻醉药物使用指南

实验动物麻醉药物使用指南 第一部分不同类型麻醉药物的一般特性 一、镇静剂和安定剂 镇静剂使用前动物的生理状态能显著影响镇静的程度。给药前攻击性强的、不听话的、极其兴奋的动物会比较难处理，除非给予高剂量的呼吸抑制药物。 1.吩噻嗪类Phenothiazines ?常用制剂：乙酰丙嗪acepromazine，氯丙嗪chlorpromazine，丙嗪 promazine ?理想疗效 ●增强麻醉剂、安眠药和麻醉性镇痛药的效果（包括减少药物 剂量，延长作用时间和顺利地从麻醉中恢复） ●止吐作用 ●促进骨骼肌松弛 ●引起兔耳静脉血管扩张 ?不良反应 ●中度低血压 ●导致低体温症 ?潜在的、与研究相关的并发症 ●基底神经节多巴胺阻塞 ●降低自发肌动活动 ●阻塞儿茶酚胺的外周作用 ●下丘脑儿茶酚胺耗尽引起的低体温症

●高剂量阻碍FSH和LH的释放 ●提高鼠、绵羊和山羊的催乳素水平 ●发生肾上腺素通过肾上腺髓质释放引起的高血糖 ●应用于猫，小剂量可减小肾上腺素导致的血管加压作用，大 剂量可翻转血管加压作用 ●减少动物的血细胞比容 ●拮抗阿朴吗啡诱发的犬呕吐 ●可能引起犬心律不齐 ●高剂量的氯丙嗪使猫产生颤动和僵硬 ●可能导致胎鼠产生唇裂和腭裂 ●长时间使用可产生眼部病变 2.苯二氮平类药物Benzodiazepines ?常用制剂：地西泮diazepam，咪达唑仑midazolam ?理想疗效 ●镇静作用因物种而异（作用最小的是犬，最大的是兔子和鼠） ●增强大部分麻醉药和麻醉镇痛药的药效 ●良好的松弛骨骼肌作用 ?不良反应 ●正常剂量下无不良反应 ●管制药物 ?潜在的、与研究相关的并发症 ●主要通过作用脑干网状结构抑制中枢神经系统 ●阻断脊髓多突触反射作用 ●减少大鼠脑和纹状体边缘区多巴胺的合成

麻醉大鼠动脉血压的测定

麻醉大鼠动脉血压的测定（直接测定法） 麻醉大鼠动脉血压的测定（直接测定法） 实验试剂 1. 20%氨基甲酸乙酯（Urethane）注射液或者1.5%戊巴比妥钠（Phentobarbital Sodium）注射液 2. 1%普鲁卡因注射液 3. 0.3%肝素生理盐水注射液 实验设备 1. 常用实验器械一套 2. 家兔或者大鼠实验台一个 3. 用于家兔或者大鼠的聚乙烯医用塑料导管（家兔用导管外径为2mm，内径为1.5mm；大鼠用导管外径为1mm，内径为0.8mm） 4. 压力换能器及其多通道生理信号采集记录仪器(安徽正华生物仪器设备有限公司生产) 实验材料 家兔，体重为2kg左右；大鼠，体重为200～250g左右。 实验步骤 1. 颈总动脉测量动脉血压 取体重为200～250g左右的大白鼠，用20%氨基甲酸乙酯注射液0.5ml/100g或者1.5%戊巴比妥钠注射液0.2ml/100g，腹腔注射麻醉，待动物被麻醉后，将其固定在实验台上，颈总动脉分离分离出一侧的颈总动脉约2cm。插管前将导管和压力换能器内充满0.3%肝素生理盐水注射液，排走气泡，并且准备好记录仪器。然后先将颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，在远心端结扎处的动脉壁上用眼科剪刀以45°角度剪口，将准备好的颈总动脉插管向近心端插入约1cm，用近心端的穿线结扎动脉血管和导管，松开动脉夹将导管再送入约1cm左右，即可看到动脉的血压波形，再用远心端的结扎线结扎固定插管，等动物稳定5min左右，就可以开始实验内容了。 2. 股动脉测量动脉血压 取体重为200～250g左右的大白鼠，用20%氨基甲酸乙酯注射液0.5ml/100g或者1.5%戊巴比妥钠注射液0.2ml/100g，腹腔注射麻醉，待动物被麻醉后，分离出约1cm左右。同样插管前将动脉插管和压力换能器内充满0.3%肝素生理盐水注射液，排走气泡，并且准备好记录仪器。然后先将股动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，或者用近心端的穿线轻轻提起血管，阻断血流。在远心端结扎处的动脉壁上用眼科剪刀以45°角度剪口，将准备好的动脉插管向近心端插入约0.5cm，松开动脉夹，或者松开近心端的提线，将插管再送入约1cm左右，用近心端的穿线结扎动脉血管和插管，即可看到股动脉的血压波形，再用远心端的结扎线结扎固定插管，等动物稳定5min左右，就可以开始实验内容了。 3. 指标及含义 反映动脉血压变化的指标有三个，它们是：收缩压（systolic blood pressure，SBP）、舒张压（diastolic blood pressure，DBP）、平均动脉压（mean blood pressure, MBP）。