当前位置：文档之家› 鞠建华博士研究员海洋微生物天然产物及其生物合成学科组

鞠建华博士研究员海洋微生物天然产物及其生物合成学科组

鞠建华博士

海洋微生物天然产物及其生物合成学科组组长

E-mail: jju@https://www.doczj.com/doc/7813102938.html,

职务描述

1. 中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室主任

2. 广东省海洋药物重点实验室主任

3. 中国科学院南海海洋研究所研究员，博士生导师

个人简介

鞠建华，男，1972年生，理学博士，研究员，博士生导师，中国科学院大学岗位教授。广东省海洋药物重点实验室主任（2010-），中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室副主任（2010-），海洋微生物天然产物及其生物合成学科组组长。2014年获得国家杰出青年科学基金、同年入选科技部“创新人才推进计划”中青年科技创新领军人才，2015年入选广东省百千万人才工程领军人才。主要从事海洋微生物活性次级代谢产物的发现、生物合成和抗感染、抗肿瘤创新药物研发工作，从海洋微生物中发现了具有抗感染、抗肿瘤等活性天然产物500余个，开发了海洋微生物的组合生物合成和异源表达技术，阐明了12种特征活性代谢产物的生物合成机制，揭示了咔啉碱合成酶、Dieckmann缩合酶、细胞色素P450氧化酶等26种新颖生物合成酶的催化功能，筛选出3个自主产权的抗结核杆菌感染、抗胶质瘤和抗白血病候选海洋药物，其中1个在系统临床前研究。主持国家科技部863计划重点课题、973计划子课题、NSFC-广东联合基金重点项目、国家海洋经济创新发展区域示范专项课题、广东省自然科学基金团队和中科院科技创新交叉团队项目等20余项。获得

第五届施维雅青年药物化学奖(2002)、第七届药明康德生命化学研究奖(2013)。中国药学会海洋药物专业委员会委员，中国微生物学会海洋微生物专业委员会委员，广东药学会药物化学专业委员会副主任委员，热带海洋学报副主编，中国海洋药物编委，广州市科技创新专家咨询委员会委员，国家自然科学基金委学科会评专家。在J. Am. Chem. Soc.(IF=12.1)、Angew. Chem. Int. Ed. (IF=11.3)、Org. lett.(6.4)、PNAS、Nature Chem. Biol.、Antimicrob. Agents Chemother.、J. Nat. Prod.、ChemBioChem等国内外学术刊物发表论文121篇（其中SCI论文82篇），论文近5年被引用超过1600次，多篇论文被Nature Chemical Biology, Faculty of 1000, Science-Perspectives和Global Medical Discovery等作为研究亮点评述，被自然指数中国增刊评为2014年广州个体科研产出领先者，获授权专利13项，参与撰写专著3部。

研究兴趣与领域

本学科组以海洋微生物为研究对象，以海洋微生物活性次级代谢产物的生物学功能及其形成机制为拟解决的关键科学问题。主要从特殊海洋环境中（深海沉积物、珊瑚礁生态系统、不同深度的海水层、特色海洋生物等）分离、培养、鉴定海洋放线菌、真菌和细菌；综合运用微生物学、天然产物化学、细菌遗传学、分子生物学、生物信息学、生物化学和药理学等多学科专业技能，从海洋微生物中筛选发现新的生物活性物质，发掘新的生物合成途径、新型酶催化反应机理，利用代谢工程、组合生物合成和合成生物学技术手段构建新结构衍生物，并对具有自主产权、有前景的化合物进行成药性评价和药物开发，具体包括以下内容：

(1) 海洋微生物活性次级代谢产物的发现（Marine Bioactive Natural Products Discovery）。利用化学生态学原理和多种发酵培养技术，从海洋微生物中筛选、分离和鉴定结构新颖、活性显著的生物活性物质。研究海洋微生物产生的活性物质在特定海洋生态系统中的化学防御机理，发现生理活性显著药效活性物质，为开发具有我国独立知识产权的创新药物提供先导化合物。

(2) 海洋微生物复杂活性天然产物的代谢工程和组合生物合成(Metabolic Engineering and Combinatorial Biosynthesis of Complex Bioactive Natural Products)。包括：抗生素生物合成基因簇的克隆、序列测定和生物信息学分析；重要活性化合物产生菌全基因组的序列测定及其功能基因研究；新的生物合成途径的发现及其调控机制；基因阻断、置换、重组或异源表达构建工程菌，产生“非天然”的天然产物或提高目标天然产物的产量；利用基因克隆、蛋白表达、纯化手段，对酶促反应机理和动力学进行表征，发掘新型酶促反应催化剂；重要活性天然产物的体外全生物合成(in vitro total biosynthesis)，体外构建重要天然产物的生物合成途径，用生物酶快速合成天然产物衍生物库。

(3) 抗感染、抗肿瘤海洋药物的成药性评价和药物研发(Anti-infective and Anti-tumor Drug Development)。对通过发现和生物合成技术改造获得的化合物进行构效关系研究，筛选出结构新颖、活性显著、具有自主知识产权的化合物进行体内药效、安全性、质量标准、药代和药剂学等临床前研究，开发抗感染、抗肿瘤海洋药物。

工作经历

2008.03—，中国科学院南海海洋研究所，中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室，广东省海洋药物重点实验室，研究员，博士生导师，中国科学院大学岗位教授；

2003.03—2008.02，美国威斯康星–麦迪逊大学(University of Wisconsin-Madison) 药学院，研究助理(Research Associate)、助理研究员(Assistant Researcher)；

2000.08—2003.03，中国医学科学院/北京协和医学院药用植物研究所，助理研究员、副研究员，硕士生导师。

教育背景

1995.09—2000.07，北京协和医学院/中国医学科学院，理学博士，天然药物化学专业；

1991.09—1995.07，山东大学药学院，理学学士，药学专业。

教授课程

研究生课程：生物有机化学，中国科学院大学，北京

主要获奖情况

1. 2017年获得广东省特支计划“杰出人才”（南粤百杰）称号

2. 2016年获得国家“万人计划”科技创新领军人才称号

3. 2015年获得广东省特支计划“百千万人才工程领军人才”称号

4. 2014年获得“中青年科技创新领军人才”称号

5. 国家杰出青年基金获得者（2014年）

6. 第七届药明康德生命化学研究学者奖（2013年）

7. 第五届施维雅青年药物化学奖(2002)

8. 鞠建华,林耕,杨峻山等. 第二届中国科协期刊优秀学术论文奖. 获奖论文：铁破锣皂苷O和P的结构及其药理活性. 药学学报, 2002, 37(10),788-792。

学术任职

1. 中国微生物学会海洋微生物专业委员会委员

2. 中国药学会海洋药物专业委员会委员

3.广东省药学会药物化学专业委员会委员

4.《热带海洋学报》副主编

5.《中国海洋药物》编委

代表性成果

论文发表：

2018

1. Li Qinglian+*, Ding Wenjuan, Yao Ziwei., Tu Jiajia, Wang Liyan, Huang

Hongbo, Li Shengying, Ju Jianhua*. AbmV catalyzes tandem ether installation

and hydroxylation during neoabyssomicin/abyssomicin biosynthesis. organic

letters. 2018, 20,4854-4857

2. Qin Xiangjing, Xie Yunchnag, Huang Hongbo, Chen Qi, Ma Junying, Li Qinglian, Ju Jianhua*. Enzymatic synthesis of GDP-b-L-fucofuranose by MtdL and Hyg20. organic letters. 2018, 20,1015-1018

3. Zhang Chunyan, Yang Zhijie, Qin Xiangjing, Ma Junying, Sun Changli, Huang Hongbo, Li Qinglian, Ju Jianhua*. Genome mining for mycemycin: discovery and elucidation of related methylation and chlorination biosynthetic chemistries. organic letters. 2018, 20,7633-7636

4. Gui Chun, Liu Yena., Zhou Zhen, Zhang Shanwen, Hu Yunfeng, Gu Yucheng, Huang, H.,*. Ju Jianhua*. Angucycline glycosides from mangrove-derived Streptomyces diastaticus subsp. SCSIO GJ056. Marine Drugs. 2018,16,185

5. Li Yan, Zhang Chunyan, Liu Chengxiong, Ju Jianhua,* Ma Junying.* . Genome sequencing

of Streptomyces atratus SCSIO ZH16 and activation production of nocardamine via metabolic engineering. Frontiers in Micrbiology. 2018,9,1269-1278

6. Huang Hongbo., Song Yongxiang, Li Xin, Wang, Xin, Ling Chunyao, Qin Xiangjing, Zhou Zhenbin, Li Qinglian, Wei Xiaoyi, Ju Jianhua*. Abyssomicin monomers and dimers from the marine-derived Streptomyces koyangensis SCSIO 5802. Journal of natural

products. 2018, 81,1892-1898

7. Zhang Chunyan, Sun Changli, Gui Chun, Wang Liyan, Huang Hongbo, Li Qinglian, Ju Jianhua.*. Biosynthetic Baeyer–Villiger chemistry enables access to two anthracene scaffolds from a single gene cluster in deep sea-derived Streptomyces olivaceus SCSIO T05. Journal of natural products. 2018, 81,1570-1577

8. Gui Chun., Yuan, J., Mo Xuhua, Huang Hongbo, Zhang Shanwen, Gu Yucheng, Ju Jianhua.*. Cytotoxic anthracycline metabolites from a recombinant Streptomyces. Journal of natural products.2018, 81,1278-1289

9. Sun Jianbin, Shao Junli, Song Yongxiang, Sun Changli, Li Qinglian, Lu Laichun, Hu Yunfeng, Zhang Hua,* Ju Jianhua.* . Borrelidins F–I, cytotoxic and cell migration inhibiting agents from mangrove-derived Streptomyces rochei SCSIO ZJ89. Bioorganic & Medicinal Chemistry. 2018,26,1488-1494

10. Sun Changli, Zhang Chunyan., Qin Xiangjing., Wei Xiaoyi, Liu Qing, Li Qinglian, Ju Jianhua*. Genome mining of Streptomyces olivaceus SCSIO T05: discovery of olimycins A and

B and assignment of absolute configurations.Tetrahedron. 2018, 74,199-203

11. Zhang Shanwen, Gui Chun, Shao Mingwei., Kumar, Saravana, Huang Hongbo,* Ju Jianhua.*. Antimicrobial tunicamycin derivatives from the deep sea-derived Streptomyces xinghaiensis SCSIO S15077. Natural Product Research. doi:10,1080/14786419,2018,1493736

2017

1. Zhu, Q.; Chen, Q.; Song, Y.; Huang, H.; Li, J.; Ma, J.; Li, Q.; Ju, J.* Deciphering the sugar

biosynthetic pathway and tailoring steps of nucleoside antibiotic A201A unveils a GDP-L-galactose mutase. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2017, 114, 4948-4953.

2. Ma, J.;* Huang, H.; Xie, Y.; Liu, Z.; Zhao, J.; Zhang, C.; Jia, Y.; Zhang, Y.; Zhang, H.; Zhang,

T.; Ju, J.* Biosynthesis of ilamycins featuring unusual building blocks and engineered production of enhanced anti-tuberculosis agents. Nat. Commun.2017, 8(1), 391(doi: 10.1038/s41467-017-00419-5).

3. Gui, C.; Mo, X.; Gu, Y.-C.; Ju, J.* Elucidating the sugar tailoring steps in the cytorhodin

biosynthetic pathway. Org. Lett. 2017, 19, 5617-5620.

4. Gui, C.; Zhang, S.; Zhu, X.; Ding, W.; Huang, H.; Gu, Y.C.; Duan, Y.; Ju, J.* Antimicrobial

spirotetronate metabolites from marine-derived Micromonospora harpali SCSIO GJ089. J.

Nat. Prod. 2017, 80, 1594-1603.

5. Luo, M.; Cui, Z.; Huang, H.; Song,X.; Sun, A.; Dang, Y.; Lu, L*; Ju, J.* Amino Acid

Conjugated Anthraquinones from the Marine-derived Fungus Penicillium sp. SCSIO sof101.

J. Nat. Prod. 2017, 80, 1668-1673.

6. Xie, Y.; Ma, J.; Qin, X.; Li, Q.; Ju, J.* Identification and utilization of two important

transporters: SgvT1 and SgvT2, for griseoviridin and viridogrisein biosynthesis in Streptomyces griseoviridis. Microb. Cell Fact.2017, 16(1):177 (doi:10.1186/s12934-017-0792-8).

7. Song, Y.; Li, Q.; Qin, F.; Sun, C.; Liang, H.; Wei, X.; Wong, N.-K.; Ye, L.; Zhang, Y.; Shao,

M.; Ju, J.* Neoabyssomicins A–C, polycyclic macrolactones from the deep-sea derived Streptomyces koyangensis SCSIO 5802. Tetrohedron, 2017, 73, 5366-5372.

8. Chen. E; Chen, Q.; Chen, S.; Xu, B.; Ju, J.*; Wang, H.* Discovery and biosynthesis of

mathermycin from marine-derived Marinactinospora thermotolerans SCSIO 00652. Appl.

Environ. Microbiol. 2017, 83(15), pii: e00926-17 (doi: 10.1128/AEM.00926-17).

9. Li, H.; Huang, H.; Hou, L.; Ju, J.; Li, W.* Discovery of antimycin-type depsipeptides from

a wbl gene mutant strain of deep sea-derived Streptomyces somaliensis SCSIO ZH66 and

their effects on pro-inflammatory cytokine production. Front Microbiol. 2017, 8, 678.

10. Zhu, X.; Duan, Y.; Cui, Z.; Wang, Z.; Li, Z.; Zhang, Y.; Ju, J.; Huang, H.* Cytotoxic

rearranged angucycline glycosides from deep sea-derived Streptomyces lusitanus SCSIO LR32. J. Antibiot. 2017, 70, 819-822.

11. Mo, X.*; Shi, C.; Gui, C.; Zhang, Y.; Ju, J.; Wang, Q.* Identification of nocamycin

biosynthetic gene cluster from Saccharothrix syringae NRRL B-16468 and generation of new nocamycin derivatives by manipulating gene cluster. Microb. Cell Fact. 2017, 16(1):100.

12. Lai, Z.; Yu, J.; Ling, H.; Song, Y.; Yuan, J.; Ju, J.; Tao, Y.;* Huang, H.* Grincamycins I？-？

K, cytotoxic angucycline glycosides derived from marine-derived actinomycete Streptomyces lusitanus SCSIO LR32. Planta Med. 2017, doi: 10.1055/s-0043-119888.

13. Li, X.; Xia, Z.; Tang, J.; Wu, J.; Tong, J.; Li, M.; Ju, J.; Chen, H.; Wang, L.* Identification

and biological evaluation of secondary metabolites from marine derived fungi-Aspergillus sp.

SCSIOW3, cultivated in the presence of epigenetic modifying agents. Molecules,2017, 22(8), pii: E1302 (doi: 10.3390/molecules22081302).

2016

14. Li, Q.; Qin, X.; Liu, J.; Gui, C.; Wang, B.; Li, J.; Ju, J.* Deciphering the biosynthetic origin

of L-allo-isoleucine.J. Am. Chem. Soc. 2016, 138, 408-415 (Highlighted in JACS Spotlights, 2016, 138, 461; Hot off the Press in Natural Products Reports, 2016, 33, 530)

15. Luo, M.; Tang, G.; Ju, J.; Lu, L.; Huang, H.* A new diketopiperazine derivative from a deep

sea-derived Streptomyces sp. SCSIO 04496.Nat. Prod. Res. 2016, 30, 138-143.

2015

16. Liu, J.; Wang, B.; Li, H.; Xie, Y.; Li, Q.; Qin, X.; Zhang, X.; Ju, J.* Biosynthesis of the anti-

infective marformycins featuring pre-NRPS assembly line N-formylation and O-methylation and post-assembly line C-hydroxylation chemistries. Org. Lett. 2015, 17, 1509-1512 (Hot off the Press in Natural Product Reports).

17. Gui, C.; Li, Q.; Mo, X.; Qin, X.; Ma, J; Ju, J.*Discovery of a new family of Dieckmann

cyclases essential to tetramic acid and pyridone-based natural products biosynthesis. Org.

Lett. 2015, 17, 628-631.

18. Li, Q,; Song,X.; Qin, X,; Zhang, X.; Sun, A.; Ju, J.* Identification of the biosynthetic gene

cluster for the anti-infective desotamides and production of a new analogue in a heterologous host. 2015, J. Nat. Prod.2015, 78, 944-948.

19. Song, Y.; Liu, G.; Li, J.; Huang, H.; Zhang, X.; Zhang, H.,* Ju, J.*Cytotoxic and

antibacterial angucycline- and prodigiosin- analogues from the deep-sea derived Streptomyces sp. SCSIO 11594. Mar. Drugs, 2015, 13, 1304-1316.

20. Medema, M.H.; et al; Xie, Y.; et al; Ju, J.; et al, Gl？ckner, F.O.* Minimum Information

about a Biosynthetic Gene cluster. Nat. Chem. Biol. 2015, 11, 625-631.

21. Huang SX, Yun BS, Ma M, Basu HS, Church DR, Ingenhorst G, Huang Y, Yang D, Lohman

JR, Tang GL, Ju J, Liu T, Wilding G, Shen B.* Leinamycin E1 acting as an anticancer prodrug activated by reactive oxygen species. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015, 112, 8278-8283.

22. Zhang, Y.; Huang, H.; Xu, S.; Wang, B.; Ju, J; Tan, H.; Li, W.* Activation and enhancement

of fredericamycin A production in deepsea-derived Streptomyces somaliensis SCSIO ZH66 by using ribosome engineering and response surface methodology. Microb. Cell Fact. 2015, 14, 64.

2014

23. Song,Y.; Li,Q.; Liu, X.; Chen, Y.; Zhang, Y.; Sun, A.; Zhang, W.; Zhang, J.; Ju, J.* Cyclic

hexapeptides from the deep South China Sea-derived Streptomyces scopuliridis SCSIO ZJ46 active against pathogenic Gram-positive bacteria. J. Nat. Prod.2014, 77, 1937-1941.

24. Xie, Y.; Li, Q.; Song, Y.; Ma, J.; Ju, J* Involvement of SgvP in carbon–sulfur bond formation

during griseoviridin biosynthesis.ChemBioChem,2014, 15, 1183-1189 (commented by Faculty of 1000).

25. Ji C.,Chen Q., Li Q.,Huang H., Song Y.,Ma J, Ju J.*Chemoenzymatic synthesis of new β-

carboline derivatives using McbA, an ATP-dependent amide synthetase. Tetrahedron Lett.

2014, 55, 4901-4904.

26. Mo X.,Li Q., Ju J.*Naturally occurring tetramic acid products: isolation, structure

elucidation and biological activity. RSC Advances. 2014, 4, 50566-50593.

27. Zhou X., Huang H.,Li J., Song Y., Jiang R., Liu J., Zhang S., Hua Y.,* Ju J.* New anti-

infective cycloheptadepsipeptide congeners and absolute stereo-chemistry from the deep sea-derived Streptomyces drozdowiczii SCSIO 10141. Tetrehedron, 2014, 70, 7795-7801.

28. Seo, J.W.; Ma, M.; Kwong, T.; Ju, J.; Lim, S.K.; Jiang, H.; Lohman, J.R.; Yang, C.;

Cleveland, J.; Zazopoulos, E.; Farnet, C.M.; Shen, B.* Comparative characterization of the

lactimidomycin and iso-migrastatin biosynthetic machineries revealing unusual features for acyltransferase-less type I polyketide synthases and providing an opportunity to engineer new analogues. Biochemistry. 2014, 53(49):7854-7865.

29. Wang, H.; Zhang, H.; Mi, Y.; Ju, J.; Chen, Q.; Zhang, H.* Expression, crystallization and

preliminary X-ray analysis of McbB, a multifunctional enzyme involved in β-carboline skeleton biosynthesis. Acta Crystallogr F Struct Biol Commun. 2014, 70(Pt 10), 1402-145.

2013

30. Chen, Q.; Ji, C.; Song, Y.; Huang, H.; Ma, J.; Tian, Xi.; Ju, J* Discovery of McbB, a novel

enzyme catalyzing the β-Carboline skeleton construction in the marinacarboline biosynthetic pathway. Angew. Chem. Int. Ed., 2013, 52, 9980-9984 (commented by Faculty of 1000). 31. Zhang, Y.; Huang, H.; Chen, Q.; Luo, M.; Sun, A.; Song, Y.; Ma,J.; Ju, J.* Identification of

the grincamycin gene cluster unveils divergent roles for GcnQ in different hosts, tailoring the L-rhodinose moiety. Org. Lett. 2013, 15, 3254-3257.

32. Wang, B.; Song, Y.; Luo, M.; Chen, Q.; Ma, J.; Huang, H.; Ju, J.*Biosynthesis of 9-

methylstreptimidone involves a new decarboxylative step for polyketide terminal diene formation. Org. Lett. 2013, 15, 1278-1281.

33. Song, Y.; Huang, H.; Chen, Y.; Ding, J.; Zhang, Y.; Sun, A.; Zhang, W.; Ju, J.* Cytotoxic and

antibacterial marfuraquinocins from the deep South China Sea-derived Streptomyces niveus SCSIO 3406. J. Nat. Prod. 2013, 76, 2263-2268.

34. Zhang, Y.; Zhou, X.; Huang, H.; Tian, X.; Song, Y.; Zhang, S.; Ju, J.*03219A, a new Δ8,9-

pregnene isolated from Streptomyces sp. SCSIO 03219 obtained from a South China Sea sediment. J. Antibiot. 2013, 66, 327-331.

35. Zhang, H.; Chen, J.; Wang, H.; Xie, Y.; Ju, J.; Yan, Y.; Zhang, H.* Structural analysis of

HmtT and HmtN involved in the tailoring steps of himastatin biosynthesis. FEBS Lett. 2013, 587, 1675-1680.

36. Ma, M.; Kwong, T.; Lim, S.-K.; Ju, J.; Lohman, J. R.; Shen, B.* Post-polyketide synthase

steps in iso-migrastatin biosynthesis, featuring tailoring enzymes with broad substrate speci？

city. J. Am. Chem. Soc., 2013, 135, 2489-2492.

2012

37. Mo, X.; Ma, J.; Huang, H.; Wang, B.; Song, Y.; Zhang, S.; Zhang, C.; Ju, J.*11,12-double

bond formation in tirandamycin biosynthesis is atypically catalyzed by TrdE, a glycoside

hydrolase family enzyme. J. Am. Chem. Soc.2012, 34, 2844-2847 (highlighted in Nat.

Chem. Biol. 2012, 8, 320).

38. Zhu,Q.; Li, J.; Ma, J.;Luo, M.;Wang, B.; Huang, H.; Tian, X.; Li, W.; Zhang, S.; Zhang, C.;

Ju, J.*Discovery and engineered overproduction of antimicrobial nucleoside antibiotic A201A from deep sea marine actinomycete Marinactinospora thermotolerans SCSIO 00652.

Antimicrob. Agents. Chemother.2012, 56, 110-114.

39. Xie, Y.; Wang, B.; Liu,J.; Zhou,J.; Ma,J.; Huang, H.; Ju, J.* Identification of the biosynthetic

gene cluster and regulatory cascade for the synergistic antibacterial antibiotics griseoviridin and viridogrisein in Streptomyces griseoviridis.ChemBioChem, 2012, 13, 2745-2757 (highlighted as an an inside cover).

40. Ma, J.; Zuo, D.; Song, Y.; Huang, H.; Yao, Y.; Li, W.; Zhang, C.; Ju, J.* Characterization of a

single gene cluster that is responsible for methylpendolmycin and pendolmycin biosynthesis in the deep sea bacterium Marinactinospora thermotolerans. ChemBioChem, 2012, 13, 547-552.

41. Huang, H.; Yang, T.; Ren, X.; Liu, J.; Song,Y.; Sun, A.; Ma, J.; Zhang, Y.; Huang, C.; Zhang,

C.; Ju, J.*Cytotoxic angucycline class glycosides from the deep sea actinomycete

Streptomyces lusitanus SCSIO LR32. J. Nat. Prod.2012, 75, 202-208.

42. Chen, Z.; Song, Y.; Chen, Y.; Huang, H.; Zhang, W.; Ju, J.*Cyclic heptapeptides,

codyheptapeptides C–E, from marine-derived fungus Acremonium persicinum SCSIO 115. J.

Nat. Prod., 2012, 75, 1215-1219.

43. Huang, H.; Wang, F.; Luo, M.; Chen, Y.; Song, Y.; Wang, B.; Ma, J.; Zhang, W.; Zhang, S.;

Ju, J.*Halogenated anthranquinones from the deep sea-derived fungus Aspergillus sp.

SCSIO F063. 2012, J. Nat Prod.75, 1346-1352.

44. Zhou,X.; Huang, H.; Chen, Y.; Tan, J.; Song,Y.; Zou, J.; Tian, X.; Hua, Y.; Ju, J.*

Marthiapeptide A, an anti-infective and cytotoxic polythiazole cyclopeptide from a 60-L scale fermentation of the deep sea-derived marinactinospora thermotolerans SCSIO 00652. J.

Nat Prod.2012, 75, 2251-2255.

45. Chen, Z.; Zheng, Z.; Huang, H.; Song, Y.; Zhang, X.; Ma,J.; Wang, B.; Zhang C.; Ju, J.*

Penicacids A-C, three new mycophenolic acid derivatives and immunosuppressive activities from the marine-derived fungus Penicillium sp. SOF07. Bioorg. Med. Chem. Lett., 2012, 22, 3332-3335.

2011

46. Ma, J.; Wang, Z.; Huang, H.; Zuo, D.; Luo, M.; Wang, B.; Sun, A.; Cheng, Y.; Zhang, C.; Ju,

J.* Biosynthesis of himastatin: Assembly line and characterization of three cytochrome P450

enzymes involved in the post-tailoring oxidative steps. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 7797-7802 (commented by Faculty of 1000).

47. Mo, X.; Huang, H.; Ma, J.; Wang, Z.; Wang, B.; Zhang, S.; Zhang, C.; Ju J.* Characterization

of TrdL as a 10-hydroxy dehydrogenase and generation of new analogues from a tirandamycin biosynthetic pathway. Org. Lett., 2011, 13, 2212-2215.

48. Huang, H.; Yao, Y.; He, Z.; Yang, T.; Ma, J.; Tian, X.; Li, Y.; Huang, C.; Chen, X.; Li, W.;

Zhang, S.; Zhang, C.; Ju, J.*Antimalarial -carboline and indolactam alkaloids from Marinactinospora thermotolerans, a deep sea isolate. J. Nat. Prod.2011, 74, 2122-2127 (highlighted by Global Medical Discovery).

49. Mo, X.; Wang, Z.; Wang, B.; Ma, J.; Huang, H.; Tian, X.; Zhang, S.; Zhang, C.; Ju, J.*

Cloning and characterization of the biosynthetic gene cluster of the bacterial RNA polymerase inhibitor tirandamycin from marine-derived Streptomyces sp. SCSIO1666.

Biochem. Biophy. Res. Commun., 2011, 406, 341-347.

50. Chen, Z.; Huang, H; Chen, Y.; Wang, Z.; Ma, J.; Wang, B.; Zhang, W.; Zhang, C.; Ju,

J.*New cytochalasins from the marine-derived fungus Xylaria sp. SCSIO 156. Helv.Chim.

Acta.2011, 94, 1671-1676.

51. Huang, Y.; Huang, S. X.; Ju, J.; Tang, G.; Liu, T.; Shen, B.* Characterization of the lnmKLM

genes unveiling key intermediates for -alkylation in leinamycin biosynthesis. Org. Lett., 2011, 13, 498-501.

Other representative publications：

52. Schneider-Poetsch, T.; Ju, J.; Eyler, D. E.; Dang, Y.; Bhat, S.; Merrick, W. C.; Green, R.;

Shen, B.; Liu, J. O*. Inhibition of eukaryotic translation elongation by cycloheximide and lactimidomycin. Nat. Chem. Biol.2010, 6, 209-217.

53. Ju, J.; Rajski, S.R.; Lim S.K.; Seo, J.W.; Peters, N.R.; Hoffmann, F.M., Shen, B.*

Lactimidomycin, iso-migrastatin and related glutarimide-containing 12-membered macrolides are extremely potent inhibitors of cell migration. J. Am. Chem. Soc. 2009, 131, 1370-1371.

54. Ju, J.;# Li, W.;# (co-first-author) Yuan, Q.; Peters, N.R.; Hoffmann, F.M., Rajski, S.R.; Osada,

H.; Shen, B.* Functional characterization of ttmM unveils new tautomycin analogs and

insight into tautomycin biosynthesis and activity. Org. Lett., 2009, 11, 1639-1642.

55. Ju, J.; Rajski, S.R.; Lim, S.K.; Seo, J.W.; Peters, N.R.; Hoffmann, F.M., Shen, B*. Evaluation

of new migrastatin and dorrigocin congeners unveils cell migration inhibitors with dramatically improved potency. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2008, 18, 5951-5954.

56. Kennedy, D.R.; Ju, J.; Shen, B.; Beerman, T.A.* Designer enediynes generate DNA breaks,

interstrand cross-links, or both, with concomitant changes in the regulation of DNA damage responses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 2007, 104, 17632-17637.

57. Ju, J.; Seo, J.-W.; Her, Y.; Lim, S.-K; Shen, B*. New lactimidomycin congeners shed insight

into lactimidomycin biosynthesis in Streptomyces amphibiosporus. Org. Lett., 2007, 9, 5183-5186.

58. Ju, J.; Lim, S.-K; Jiang, H.; Seo, J.-W.; Her, Y.; Shen, B*. Thermolysis of isomigrastatin and

its congeners via [3,3]-sigmatropic rearrangement: a new route to the synthesis of migrastatin and its analogues. Org. Lett., 2006, 8, 5865-5868.

59. Ju, J.; Lim, S.K.; Jiang, H.; Seo, J.W.; Shen, B.* Isomigrastatin congeners from Streptomyces

platensis and generation of a glutarimide polyketide library featuring the dorrigocin, lactimidomycin, migrastatin, and NK30424 scaffolds. J. Am. Chem Soc. 2005, 127, 11930-11931.

60. Ju, J.; Lim, S.K.; Jiang, H.; Shen, B.* Migrastatin and dorrigocins are shunt metabolites of

iso-migrastatin. J. Am. Chem. Soc. 2005, 127:1622-1623.

61. Ju, J.; Ozanick, S.G.; Shen, B.; Thomas, M.G.* Conversion of (2S)-arginine to (2S, 3R)-

capreomycidine by VioC and VioD from the viomycin biosynthetic pathway of Streptomyces sp. strain ATCC11861.ChemBioChem, 2004, 5:1281-1285.

62. Ju, J.*; Liu, D.; Lin, G.; Xu, X.; Han, B.; Yang, J*. Tu, G.; Ma, L.; Beesiosides A-F, Six new

cycloartane triterpene glycosides from Beesia calthaefolia. J. Nat. Prod.,2002, 65, 42-47.

63. Ju, J.*; Liu, D.; Lin, G.; Zhang, Y.; Yang, J.*; Lu, Y.; Gong N.; Zheng, Q. Beesiosides G, H,

and J-N, Seven new cycloartane triterpene glycosides from Beesia calthifolia. J. Nat. Prod., 2002, 65, 147-152.

64. Ju, J.; Yang, J.; Li, J.; Xiao, P. Cypripediquinone A, a new phenanthraquinone from

Cypripedium macranthum (Orchidaceae ). Chin. Chem. Lett.2000, 11(1), 37-38.

授权专利：

1. 鞠建华，黄洪波，姚月良，等。β-咔啉生物碱及其在制备抗疟疾药物中的应用(授权

专利号：ZL 201110132680.9)。

2. 鞠建华，姚月良，田新朋，等。一种海洋链霉菌以及利用该菌制备替达霉素A和B

的方法(授权专利号：ZL 201010565028.1)。

3. 鞠建华，周俊勇，黄洪波，等。一种海洋链霉菌及利用其制备星形孢菌素和K-252d 的方法(授权专利号：ZL 201110065140.3)。

4. 鞠建华, 陈子明, 黄洪波，等。霉酚酸衍生物A、B、C及其在制备免疫抑制药物中的应用(授权专利号：ZL 20111040451

5.4)。

5. 鞠建华, 朱清华, 李军，等。一种核苷类抗生素A201A高产菌株及其构建方法(授权专利号： ZL 201110340905.X)。

6. 鞠建华, 黄洪波, 任香梅，等。一类角环素类化合物及其在制备抗肿瘤药物中的应用(授权专利号：ZL 201110421665.6)。

7. 鞠建华，谢运昌。绿灰霉素和绿灰霉素的生物合成基因簇及其应用(授权专利号：ZL201210284937.7)。

8. 鞠建华，张云，黄洪波，等。一种格瑞克霉素和P-1894B的生物合成基因簇及其应用(授权专利号：ZL 201310118576.3)。

9. 鞠建华，周潇，黄洪波，等。抗生素Tetrathiazomycin A及其制备方法和在制备抗肿瘤药物中的应用(授权专利号：ZL 201210230665.3)。

10. 鞠建华,陈奇,纪昌涛。一种海洋咔啉生物碱的生物合成基因簇及其应用（PCT专利申请号：201310224447.2）。

11. 鞠建华,宋永相,黄洪波，等。一类吩嗪化合物及其在制备抗肿瘤药物中的应用（授权专利：ZL 201310304568.8）

12. 鞠建华,宋永相,黄洪波，等。一类萘醌倍半萜化合物及其在制备抗肿瘤或抗菌药物中的应用（授权专利：ZL 201310304510.3）

13. 鞠建华,丁杰,宋永相。一种生物碱类化合物的制备方法及其在制备抑制钙离子通道药物中的应用（授权专利：ZL 201310367331.4）

14. 鞠建华，宋永相，李洁，黄洪波。一类角环素化合物及其在制备抗肿瘤或抗菌药

物中的应用（授权专利：ZL 201510053130.6）

15. 鞠建华，张幸，桂春。一种海洋链霉菌及其应用（授权专利：ZL 201510073450.8

16. 张幸，罗明和，鞠建华。一种吲哚-3-甲醛类化合物的制备方法和应用（授权专利

号：ZL 201410641080.9）

17. 鞠建华，朱清华，黄洪波，宋永相，马俊英，李青连。一类核苷类抗生素及其在制

备抗菌药物中的应用（授权专利号：ZL 201510460273.9）

18. 鞠建华，宋永相，许芳。一类环六肽化合物及其在制备抗良性前列腺增生药物中的

应用（授权专利号：ZL 201510725256.3）

人才培养

1. 学科组团队成员。研究员1名：马俊英（华南农业大学博士，分子生物学），副研究员3名：黄洪波（中山大学博士，天然药物化学），宋永相（中山大学博士，天然药物化学），李青连（北京协和医学院博士，分子生物学）；助理研究员2名：秦湘静（中山大学博士，结构生物学），孙长利，李骏；在读博士生4名，硕士生3名。

2. 硕士/博士研究生和博士后。招生专业一：海洋生物学（方向1：海洋微生物代谢工程、海洋生物技术；方向2：海洋微生物天然药物化学）；招生专业二：生物工程。每年9月份接受985、211工程院校生物科学（生物技术）、化学和药学专业推荐免试直博生和推荐免试硕士生各1名，接受联合培养硕士/博士研究生。

联系方式

广州市海珠区新港西路164号，邮编510301

电话：(020)89023028

Email: jju@https://www.doczj.com/doc/7813102938.html,

微生物培养基的制备及接种

微生物培养基的制备及接种宿舍：628 成员：黄朋朋、李厅、王冲、马浩、王萌、王锦楼一、实验原理：牛肉膏蛋白培养基是一种应用最广泛和最普通的细菌基础培养基，这种培养基含一般细菌生长繁殖所需要的最基本营养物质，培养基含有碳源、氮源、磷酸盐、维生素、生长因子等。在配制固体培养基时还要加入一定量琼脂作凝固剂。多用于培养细菌因此要用烯酸和稀碱将其pH调至中性或微碱性，以利于细菌的生长繁殖。二、实验器材： 1、试剂：牛肉膏1.8g、蛋白胨6g、食盐11g、琼脂12g、水 600ml、1mol/L NaOH、1mol/L HCl 2、仪器或其他用具：试管56/个、1000ml大烧杯/个、三角瓶、量筒、玻璃棒、培养基分装器、分析天平、牛角匙、 pH试纸、牛皮纸、记号纸、麻绳、纱布、培养皿、高压式蒸汽灭菌锅等。 3、菌种：大肠杆菌、金黄色葡萄球菌菌种。三、实验步骤： 1、称量按培养基配方比例依次准确地称取牛肉膏、蛋白胨、NaCl

放入烧杯中。牛肉膏常用玻棒挑取，放在小烧杯或表面皿中称量，用热水溶化后倒入烧杯。也可放在称量纸上，称量后直接放入水中，这时如稍微加热，牛肉膏便会与称量纸分离，然后立即取出纸片。蛋白胨很易吸潮，在称取时动作要迅速。另外，称药品时严防药品混杂，一把牛角匙用于一种药品，或称取一种药品后，洗净、擦干，再称取另一药品，瓶盖也不要盖错。2、溶解：在上述烧杯中可先加入少于所需要的水量，用玻璃棒搅匀，然后，在石棉网上加热使其溶解。待药品完全溶解后，补充水分到所需的总体积。配制固体培养基，将称好的琼脂放入已溶化的药品中，再加热溶化，在琼脂溶化的过程中，需不断搅拌，以防琼脂糊底使烧杯破裂。最后补足所失的水分。 3、调pH：在未调pH前，先用精密pH试纸测量培养基的原始pH值，如果pH偏酸，用滴管向培养基中逐滴加入1mol/L NaOH，边加边搅拌，并随时用pH试纸测其pH值，直至pH达7．6。反之，则用1mol/L HCl进行调节。注意pH值不要调过头，以避免回调，否则，将会影响培养基内各离子的浓度。4、分装：按实验要求，可将配制的培养基分装入试管内,每试管 10ml。如图：

微生物在海洋中的作用

论微生物在海洋中的作用作者：周浩王璐中文摘要： 21世纪人类社会面临“人口剧增、资源匮乏、环境恶化”三大问题的严峻挑战，随着陆地资源的日趋减少，开发海洋，向海洋索取资源，尤其是海洋微生物资源越来越受到人们关注。本文将从海洋微生物多样性、海洋药物及保健功能的生物活性物质、海洋极端酶、海洋微生物在消除海洋污染物等方面给予介绍。中文关键词：海洋微生物资源生物药物资源前言洋中生活许许多多各种各样的微生物，它们是以单细胞或以群体形式存在，能独立生活的生物，包括病毒、细菌、真菌、单细胞藻类及原生动物等等。但按狭意所指仅为病毒、细菌和真菌等。目前研究较多的是细菌。微生物体积大多非常微，需在显微镜下才能看见。如海洋微生物，它的直经大多仅为几个微米到零点几个微米。海洋微生物种类繁多，数量颇大。如胶州湾每毫升海水中生活着几百个，多至几千万个细菌。它们对我们生活及工农业生产有着极为密切的关系。浩瀚的海洋是地球上生命的摇篮，它覆盖着地球表面积海水总体积占地球总水量的70%，海洋中生物资源极为丰富，生物活性物质种类繁多，已引起世界各国的重视，仅在过去10年中有近5000种新的海洋天然产物被发现。大多数都分离自海洋微生物,且许多是陆地生物所没有的，显示出巨大开发潜力，因此，海洋微生物资源研究已成为海洋资源研究的重要内容之一。正文 1海洋微生物的生物多样性海洋是一个十分独特的生态环境，包罗了高盐、高压、低温、尤其是深海低光照、寡营养等特点，还有无光照以及局部高温的极端环境，来自海洋的微生物大部分都是适应了极端环境的极端微生物，据估计海洋微生物可达0.1~2亿种，已发现的类群主要包括病毒、古菌细菌、粘细菌、微藻、真菌，海洋微生物的物种多样性决定了其代谢产物多样性，海洋环境是新型生物活性物质的源泉 2海洋微生物药物资源

微生物培养基种类大全

摘要：1、营养琼脂（普通琼脂）成份：牛肉浸液（或其它浸液，消化液或肉膏汤）100毫升琼脂（视天气，琼脂质量而定）制法：将上物加热溶解，补足水，调ph至7．6，过滤分装121℃，高压灭菌15分钟。用途：作普通琼脂平皿。2、血琼脂平板（BA）制法：取营养琼脂（PH7．6），加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养 1、营养琼脂（普通琼脂) 成份：牛肉浸液（或其它浸液，消化液或肉膏汤) 100毫升琼脂（视天气，琼脂质量而定) 制法：将上物加热溶解，补足水，调ph至7．6，过滤分装121℃，高压灭菌15分钟。用途：作普通琼脂平皿。 2、血琼脂平板（BA) 制法：取营养琼脂（PH7．6)，加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养琼脂加灭菌脱纤维羊血或兔血5-10毫升,轻轻摇匀，立即倾注于平板或分装试管，制成斜面备用。用途：1．一般棉拭子均接种此培养基。 2．尿液，脓液 3．分离细菌标本用。 3、基础培养基（肉膏汤BB) 成份：蛋白胨10克牛肉膏5克氯化钠5克水1000毫升制法：将以上各物称好，加水煮沸溶解，用1NNOH校正PH至7．6，过滤分瓶，121℃高压灭菌，20分钟备用。用途：1 作耐药试验，增菌用分装小管。 2 作普通琼脂斜面。 4、血液培养基（大管肉汤培养基) 成份：1 新鲜牛肉浸液1000毫升 2 PABA（对氨基苯甲酸〔相当于10mg/毫升〕) 1g% 1毫升 3 MgSO 4 [相当于0．493/100毫升] 49．3% 1毫升 4 枸椽酸钠0．3g 制法：1 将1号，4号混合液，2号，3号液分装高压灭菌。

2 取灭菌1，4号混合液用无菌法加入PABA，MgSO4，再分管，行无菌试验三天方可使用。用途：作血，骨髓培养用。 5、肠道杆菌培养基（伊红美兰琼脂) 成份：蛋白胨10克乳糖10克氯化钠5克琼脂25（22)克水1000毫升2%伊红溶液20毫升 0．5%美兰溶液20毫升制法：将蛋白胨，氯化钠琼脂称好，加水1000毫升使溶解，校正PH7．4过滤，补足失水，加入2%伊红溶液20毫升，0．5%美兰溶液20毫升，（115℃高压20分钟)，冷却至50℃左右倾注平板，凝固后存冰箱备用。（高压以后方可再加乳糖) 用途：用作分离沙门氏，志贺氏菌属，也作菌群调查。 1 6、罗文斯坦培养基成份：磷酸二氢钾2．4克硫酸镁0．24克枸椽酸钠0．6克天门冬素3．6克纯甘油（丙三醇) 12毫升水600毫升马铃薯粉30克鸡蛋1000毫升（约3公斤) 2%孔雀绿水溶液20毫升制法：1 除鸡蛋外（还有孔雀绿)。可将其它物品称好，放入大三角瓶包扎好，高压灭菌。 2 鸡蛋用75%酒精泡30分钟，灭菌法打蛋，倒入盛有玻璃珠的灭菌三角烧瓶内充分将鸡蛋摇散。 3 将各成份按比例配好，分装每管约5毫升。 4 间歇灭菌第一次90℃1小时，第二次80℃半小时，第三次80℃半小时（或放85℃烤箱内连续二次)。质控标准： 1 灭菌试验合格。 2 接种结核杆菌要求两星期生长良好。用途：作结核分枝杆菌培养用。

医学免疫学与微生物学--形考作业2

医学免疫学与微生物学--形考作业2 题目1 1. NK细胞所不具备的生物学功能有（）。 A. 通过Fas/FasL途径杀伤病毒感染的靶细胞 B. 通过释放颗粒酶杀伤肿瘤靶细胞 C. 通过ADCC作用杀伤肿瘤和病毒感染的靶细胞 D. 通过释放穿孔素杀伤肿瘤靶细胞 E. 通过释放蛋白水解酶杀伤病毒感染的靶细胞答案是：通过释放蛋白水解酶杀伤病毒感染的靶细胞题目2 2. 发育成熟的T细胞还未接受抗原刺激时称为（）。 A. 效应T细胞 B. 初始T细胞 C. 调节性T细胞 D. 细胞毒T细胞 E. 记忆性T细胞答案是：初始T细胞题目3 3. T细胞表面识别抗原肽-MHC复合物并向胞内传递刺激信号的结构是（）。 A. TCR B. TCR-CD3 C. CD28 D. CD2 E. CD3 答案是：TCR-CD3 题目4 4. 主要在细胞免疫中发挥作用的CD4+T细胞亚群为（）。 A. Th1 B. Th2 C. Th17 D. Th3 E. Treg 答案是：Th1 题目5 5. 在TD抗原诱导的体液免疫应答中发挥辅助作用的T细胞是（）。 A. Th1 B. Th2 C. Th3 D. Tfh E. Treg 答案是：Th2 题目6 6. B细胞表面识别抗原表位并向胞内传递刺激信号的结构是（）。

B. BCR-CD79a/CD79b C. CD40 D. CD79a/CD79b E. CD3 答案是：BCR-CD79a/CD79b 题目7 7. 白细胞中数量最多、存活期最短的细胞是（）。 A. 单核细胞 B. 巨噬细胞 C. 中性粒细胞 D. 淋巴细胞 E. NK细胞答案是：中性粒细胞题目8 8.早期固有免疫应答发生于（）。 A. 感染后0～4小时 B. 感染后4～24小时 C. 感染后4～48小时 D. 感染后4～96小时 E. 感染后96小时内答案是：感染后0～4小时题目9 9．机体适应性免疫应答的始动者是（）。 A. 巨噬细胞 B. 树突状细胞 C. B细胞 D. 内皮细胞 E. 以上均不是答案是：树突状细胞题目10 10. TCR的双识别是指（）。 A. 同时识别MHCⅠ类分子和MHCⅡ类分子 B. 同时识别抗原分子的T细胞表位和B细胞表位 C. 同时识别抗原肽和mIg的复合物 D. 同时识别抗原肽和MHC分子 E. 同时识别Igα和Igβ 答案是：同时识别抗原肽和MHC分子题目11 11. 能通过自分泌和旁分泌形式促进T细胞增殖的细胞因子是（）。 A. IL-1 B. IL-2 C. IL-4 D. TNF-β

微生物生理生化实验培养基配方

配方1（用于细菌葡萄糖发酵---半固体穿刺培养）：蛋白胨2g，NaCl5g，K2HPO40.2g，1%溴酚蓝3ml，葡萄糖10g，琼脂8g，水1000ml。115度灭菌20分钟。小提示：先将蛋白胨和NaCl溶于热水，调pH至7.4（这时总体积接近1000ml），再加入1%溴酚蓝3ml，再加入糖，溶解均匀后分装。配方2（用于细菌乳糖发酵---半固体穿刺培养）：蛋白胨2g，NaCl5g，K2HPO40.2g，1%溴酚蓝3ml，乳糖10g，琼脂8g，水1000ml。115度灭菌20分钟。小提示：先将蛋白胨和NaCl溶于热水，调pH至7.4（这时总体积接近1000ml），再加入1%溴酚蓝3ml，再加入乳糖，溶解均匀后分装。配方3:MR与VP试验-------请实验员准备蛋白胨5g，葡萄糖5g，NaCl5g，水1000ml，调pH至7.2-7.4左右，115度灭菌20分钟。甲基红试剂（需新配） 40%KOH，-萘酚（需新配）配方4:柠檬酸盐利用试验步骤（液体-直接观察现象）-------请实验员准备 NaCl5g，MgSO4.7H2O0.2g，磷酸氢二铵1g，K2HPO41g，柠檬酸钠2g，水1000ml，调pH至6.8-7.0左右后加入1%溴酚蓝10ml。

1%溴酚蓝：称取0.08g溴酚蓝溶于0.5ml95%乙醇中，再加水至总体积到10ml。以上成分加热溶解后，调pH至6.8，然后加入指示剂，摇匀。制成后为黄绿色，分装试管，121度灭菌20分钟。配方5:淀粉酶实验 0.2%淀粉2g，蛋白胨1g，1.5%琼脂20g，调pH7.0至7.2，水1000ml。小提示：可先将琼脂放入水中加热，待完全溶解后，加淀粉。混匀后高压灭菌。检测用卢戈氏碘液过氧化氢酶试验过氧化氢溶液配方6:吲哚试验------- 胰蛋白胨10g，NaCl5g，水1000ml，调pH至7.2-7.4左右，121度灭菌20分钟。检测用乙醚及吲哚试剂配方7:H2S试验：柠檬酸铁铵半固体培养基 1000ml蛋白胨10g，氯化钠5g，Na2S2O3.5H2O0.5g，柠檬酸铁铵0.5g，琼脂8g，pH7.2，121度灭菌20分钟。配方8:明胶液化实验（穿刺培养）-----不做明胶15g，牛肉膏0.5g，蛋白胨1g，氯化钠0.5g，水100mL,将明胶加入肉汤中，水浴加热溶解，调pH7.2-7.4，分装试管，115度高压灭菌20min，取出迅速冷却，使其凝固。

36种常用微生物培养基配制汇总

36 种微生物常用培养基配制 1. 牛肉膏蛋白胨培养基（用于细菌培养）牛肉膏3g,蛋白胨10g, NaCI 5g ,水1000mL pH7.4?7.6。 2. 高氏1 号培养基（用于放线菌培养）可溶性淀粉20g，KNO3 1g，NaCI 0.5g ，K2HPO4?3H2O0.5g，MgS04?7H200.5gFeS04?7H200.01,水1000mL pH7.4?7.6。配制时注意：可溶性淀粉要先用冷水调匀后再加入到以上培养基中。 3. 马丁氏（Martin ）培养基（用于从土壤中分离真菌） K2HPO41g MgSO4?7H2O0.5g蛋白胨5g,葡萄糖10g, 1/3000 孟加拉红水溶液100mL水900mL自然pH, 121C湿热灭菌30min。待培养基融化后冷却55?60C时加入链霉素（链霉素含量为30 卩g/mL）。 4. 马铃薯培养基（PDA）（用于霉菌或酵母菌培养）马铃薯（去皮）200g，蔗糖（或葡萄糖）20g，水1000mL配制方法如下：将马铃署去皮，切成约2cm2的小块，放入1500mL的烧杯中煮沸 30mi n,注意用玻棒搅拌以防糊底，然后用双层纱布过滤，取其滤液加

糖，再补足至1000mL自然pH,霉菌用蔗糖，酵母菌用葡萄糖。 5. 察氏培养基（蔗糖硝酸钠培养基）（用于霉菌培养）蔗糖30g, NaNO32g, K2HPO41g, MgSO4?7H2O0.5,gKCl 0.5g, FeSO4?7H2O0.1,水1000mL pH7.0?7.2。 6. Hayflik 培养基（用于支原体培养）牛心消化液（或浸出液）1000mL,蛋白胨10g,NaCI 5g,琼脂15g, pH7.8?8.0，分装每瓶70mL 121C湿热灭菌15min,待冷却至80C 左右，每70mL中加入马血清20mL 25%羊酵母浸出液10mL 15醋酸铊水溶液2.5mL,青霉素G钾盐水溶液（20万单位以上）0.5mL ,以上混合后倾注平板。 *注意：醋酸铊是极毒的药品，需特别注意安全操作。 7. 麦氏（McCLary）培养基（醋酸钠培养基）葡萄糖0.1g, KCl 0.18g ，酵母膏0.25g，醋酸钠0.82g，琼脂 l.5g，蒸馏水l00mL。溶解后分装试管，1l5 C湿热灭菌15min 8. 葡萄糖蛋白胨水培养基（用于V.P.反应和甲基红试验）蛋白胨0.5g，葡萄糖0.5g, K2HPO4 0.2g,水100mL pH7.2,

海洋微生物学作业

海洋微生物抗肿瘤活性物质姓名：班级：学号：摘要：海洋多变复杂的环境导致了海洋微生物的多样性。海洋微生物因其具有产生新型生物活性产物的巨大潜力，已受到全世界海洋研究人员的重视。近年来，从海洋微生物中已分离到许多结构新颖的抗肿瘤活性物质。其中有的已进入临床试验，显示了良好的研究开发前景。 Abstract: The changeable and complex environment of the ocean leads to diversity of marine microorganism. Marine microorganisms have been proved to be potential in producing novel bioactive substances. Marine-derived microorganisms are rich sources of bioactive compounds and thus they receive extensive attention from marine researchers. In recent years many new structurally-unique anti-tumor compounds have been isolated from marine-derived microorganisms, and some of them have been in clinical trials and showed better development prospects. 关键词：海洋微生物抗肿瘤活性物质筛选方法研究模型 Key words: marine-derived microorganisms; antitumor; bioactive substance; Method of screener; research model; 一、海洋微生物 1.海洋微生物研究意义海洋环境的特殊性(高压、高盐、低温、低光照、寡营养等)使海洋微生物具有丰富的生物多样性、独特的代谢方式和很强的再生、防御和识别能力。海洋微生物能产生一些结构新颖、活性特异的次级代谢产物以适应周围极端的生存环境。近几年，已有近万种新的海洋天然产物被发现，这些海洋天然产物具有抗癌、消炎、抗氧化、免疫调节等活性，已成为当今世界药物研发的热点，有的药物已进入临床实验阶段或已进入临床，并取得了丰硕的成果。 2.抗肿瘤活性物质肿瘤是现代社会威胁人类健康的重要疾病。多年来，各国学者致力于寻取新型、高效、低毒的抗肿瘤化合物。对海洋微生物次级代谢产物中具有抗肿瘤活性的有关研究表明，醚类、大环内酷类、菇类、含氮杂环类、肤类、酞胺类及醌类化合物均具有良好的抗肿瘤活性。二、海洋抗肿瘤活性物质的分类（450） 1.海洋放线菌的抗肿瘤活性物质（150）海洋放线菌的生活环境十分特殊，如高盐、高压、低营养、低温等。在这些生命的极限环境，海洋放线菌已发展出独特的代谢方式，同时提供了产生独特的生物活性物质的潜力。例如，中国海洋大学药物与食品研究所、军事医学科学院毒物药物研究所的科研人员对海洋放线菌S1001发酵产物进行了分离和研究，并用理化手段综合分析了其中的抗肿瘤活性成分，取得了较为满意的结果。近年来，研究者从海洋放线菌中分离出的主要抗肿瘤活性物质，见表1。

常用细菌培养基配方

常用抗生素氨苄青霉素（ampicillin）（100mg/ml）溶解1g氨苄青霉素钠盐于足量的水中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以25ug/ml～50ug/ml的终浓度添加于生长培养基。羧苄青霉素（carbenicillin）（50mg/ml）溶解0.5g羧苄青霉素二钠盐于足量的水中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以25ug/ml～50ug/ml的终浓度添加于生长培养基。甲氧西林（methicillin）（100mg/ml）溶解1g甲氧西林钠于足量的水中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以37.5ug/ml终浓度与100ug/ml氨苄青霉素一起添加于生长培养基。卡那霉素（kanamycin）（10mg/ml）溶解100mg卡那霉素于足量的水中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以10ug/ml～50ug/ml的终浓度添加于生长培养基。氯霉素（chloramphenicol）（25mg/ml）溶解250mg氯霉素足量的无水乙醇中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以12.5ug/ml～25ug/ml的终浓度添加于生长培养基。链霉素（streptomycin）（50mg/ml）溶解0.5g链霉素硫酸盐于足量的无水乙醇中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以10ug/ml～50ug/ml的终浓度添加于生长培养基。萘啶酮酸（nalidixic acid）（5mg/ml）溶解50mg萘啶酮酸钠盐于足量的水中，最后定容至10ml。分装成小份于-20℃贮存。常以15ug/ml的终浓度添加于生长培养基。四环素（tetracyyline）（10mg/ml）溶解100mg四环素盐酸盐于足量的水中，或者将无碱的四环素溶于无水乙醇，定容至10ml。分装成小份用铝箔包裹装液管以免溶液见光，于-20℃贮存。常以10ug/ml～50ug/ml的终浓度添加于生长培养基。常用培养基 LB培养基将下列组分溶解在0.9L水中：蛋白胨10g 酵母提取物5g 氯化钠10g 如果需要用1N NaOH（～1ml）调整pH至7.0，再补足水至1L。注：琼脂平板需添加琼脂粉12g/L,上层琼脂平板添加琼脂粉7g/L。(实验室一般都不调PH) SOB培养基将下列组分溶解在0.9L水中：蛋白胨20g 酵母提取物5g 氯化钠0.5g 1 mol/L 氯化钾2.5ml

西南大学17秋[1131]《微生物学》作业答案

１、细菌在下列哪个生长期中最易出现变异 1.迟缓期 2.对数期 3.稳定期 4.衰亡期 5.以上均可 2、属于细菌分解性代谢产物得就是 1.热原质 2.硫化氢 3.外毒素 4.维生素 5.抗生素３、关于细胞因子 1.细胞因子就是由细胞产生得 2.单一细胞因子可具有多种生物学活性 3.细胞因子可以自分泌与旁分泌两种方式发挥作用 4.细胞因子得作用不就是孤立存在得 5.以上均正确 4、下列哪一类细胞产生IgE抗体 1.T淋巴细胞 2.淋巴细胞 3.巨噬细胞 4.肥大细胞 5.嗜碱粒细胞５、5种免疫球蛋白得划分就是根据 1.Ｈ链与Ｌ链均不同 2.V区不同 3.L链不同 4.H链不同 5.连接H链得二硫键位置与数目不同 6、木瓜蛋白酶水解IgG得到得片段包括Ｆab与 1.Fc’ 2.F（ab）' 3.Fc 4.ＶＨ 5.F（ab')２ 7、人体内半衰期最长得抗体就是

1.ＩgＧ 2.IgM 3.IgA 4.ＩgE 5.ＩgＣ８、预示早期感染得抗体就是 1.IgＧ 2.ＩgＭ 3.IｇA 4.IｇＥ 5.IｇC 9、鸟类Ｂ细胞成熟得中枢免疫器官就是 1.骨髓 2.胸腺 3.法氏囊 4.淋巴结 5.脾 1０、细菌毒素中,毒性最强得就是 1.破伤风痉挛毒素 2.霍乱肠毒素 3.白喉外毒素 4.肉毒毒素 5.金黄色葡萄球菌肠毒素１1、细菌内毒素得成分就是 1.H抗原 2.肽聚糖 3.Ｏ抗原 4.荚膜多糖 5.脂多糖 1２、质粒在细菌间得转移方式主要就是 1.接合 2.转导 3.转化 4.突变 5.溶原性转换１3、湿热灭菌法中效果最好得就是 1.高压蒸汽灭菌法 2.流通蒸汽法 3.间歇灭菌法

微生物学作业

微生物学作业（华师生科院06函授07号李文勇）第一章绪论 1、什么是微生物？微生物有哪些特点？人们把那些形体微小（<0.1mm），结构简单，在适宜环境下能生长繁殖及发生遗传变异，用肉眼难以看到，必须借助光学显微镜或电子显微镜才能看清的低等微小生物统称为微生物。微生物有6大特点：微生物的比表面积大、转化能力强、繁殖速度快、易变异、适应性强、分布广。第二章原核微生物 1、名词解释原核微生物：指核质和细胞质之间不存在明显核膜，其染色体由单一核酸组成的一类微生物。肽聚糖：由两种糖衍生物，N-乙酰葡糖胺（G）和N-乙酰胞壁酸（M），以及短胎所组成。溶菌酶：又称N-乙酰胞壁酸酶。它专攻击聚糖链中的N-乙酰胞壁酸和N-乙酰葡糖胺之间的β-1,4糖苷键而使细胞壁解体核区：细菌菌体中央大量遗传物质（DNA）所在的区域。无核膜核仁，由一环状DNA分子高度缠绕而成。质粒：质粒是染色体外能够进行自主复制的遗传单位，包括真核生物的细胞器和细菌细胞中染色体以外的脱氧核糖核酸(DNA)分子。荚膜：某些细菌在细胞壁外包围的一层粘液性物质。粘液层：荚膜的类型，量大，而且与细胞表面的结合比较松散，没有明显边界，常扩散到培养基中。菌落：单个微生物在适宜固体培养基表面或内部生长繁殖到一定程度；形成肉眼可见有一定形态结构的子细胞的群落。 2、根据革兰氏阳性与革兰氏阴性细菌细胞壁通透性来说明革兰氏染色的机制。革兰氏染色法，主要过程为：结晶紫初染，碘液媒染，95%乙醇脱色，再以沙黄等红色燃料复染。染色结果为：革兰氏阳性菌被染成紫色，革兰氏阴性菌被染成浅红色。细菌的不同显色反应是由于细胞壁对乙醇的通透性和抗脱色能力的差异，主要是肽聚糖层厚度和结构决定的。经结晶紫染色的细胞用碘液处理后形成不溶性复合物，乙醇能使它溶解，所以染色的前二步结果是一样的，但在G＋细胞中，乙醇还能使厚的肽聚糖层脱水，导致孔隙变小，由于结晶紫和碘的复合物分子太大，不能通过细胞壁，保持着紫色。在G—细胞中，乙醇处理不但破坏了胞壁外膜，还可能损伤肽聚糖层和细胞质膜，于是被乙醇溶解的结晶紫和碘的复合物从细胞中渗漏出来，当再用衬托的染色液复染时，显现红色。红色染料虽然也能进入已染成紫色的G+细胞，但被紫色盖没，红色显示不出来。 3、什么是芽胞？它在什么时候形成？试从其特殊的结构与成分说明芽孢的抗逆性。芽胞杆菌生长到后期，在其菌体内形成厚壁、折光性强、具抗逆性的孢子称为芽孢。芽胞是代谢活性很低，对干燥、热、化学药物和辐射等具有高度抗性的休眠体。究表明芽孢对不良环境因子的抗性主要由于其含水量低（40％）。且含有耐热的小分子酶类，富含大量特殊的吡啶二羧酸钙和带有二硫键的蛋白质，以及具有多层次厚而致密的芽孢壁等原因。第三章真核微生物 1、名词解释真核微生物：具有真正细胞核，具有核膜与核仁分化的较高等的微生物。真菌：真核微生物，有细胞壁没光合色素，寄生或腐生生活，靠渗透作用吸取营养。酵母菌：真核单细胞生物。体呈圆形、卵形或椭圆形，内有细胞核、液泡和颗粒体物质。通常以出芽繁殖；有的能进行二等分分裂；有的种类能产生子囊孢子。霉菌：霉菌是丝状真菌的俗称

微生物培养基配制

微生物培养基配制培养基是指人工配制的、适合于微生物生长繁殖或累积代谢产物所需的各种营养物的混合基质。配制培养基是进行微生物检验工作的基础,甚至是任何与微生物有关工作的基础。注意事項–灭菌锅的使用 ①加水盖过底部铁板—②放入东西—③关门—④調整溫度時間—⑤关紧泄压阀灭菌結束後，等压力降回零時才可打開門進入灭菌锅之物品，蓋子不可關太緊或太鬆拿滅菌後物品請記得帶耐熱手套培养基中的主要成分及其作用：营养物质：N源、C源、无机盐、生长因子、水常用的N源：蛋白胨、牛肉膏、肉浸汁、酵母膏常用的C源：糖、醇类物质（单糖：葡萄糖、果糖、半乳糖、甘露糖双糖：蔗糖、麦芽糖、乳糖；多糖：淀粉、纤维素、菊糖；

醇类：甘露醇、卫茅醇、甘油）水：用蒸馏水，不能用自来水凝固剂：琼脂、明胶、血清等抑制剂： 1、作用：鉴定细菌、抑制杂菌的生长繁殖，增加待检菌的检出率 2、种类：盐类：氯化钠、氯化锂、氰化钾、亚碲酸钾（钠）、亚硒酸钠等染色剂类：煌绿、蔷薇酸、结晶紫、孔雀绿、孟加拉红、玫瑰红胆盐类：猪（牛、羊）胆盐、混合胆盐、三号胆盐、去氧胆酸盐、胆石酸盐抗菌素：青霉素、链霉素、杆菌肽、多粘菌素指示剂 1、作用：用于指示鉴别细菌可否利用分解糖醇类物质和含氮化合物，产酸产碱的能力。

2、常用的指示剂：酚红、溴甲酚紫、中性红、中国蓝、甲基红、复红、伊红、美蓝、孔雀绿等。培养基的类型： ●根据培养基的物理状态来区分： 1、液体培养基：主要用于增菌培养、鉴别性培养 2、固体培养基：用作微生物的分离、鉴定、检验杂菌、计数、保藏、生物测定 3、半固体培养基：观察微生物的动力，有时用来保藏菌种 4、脱水(商品)培荞基：脱水培养基也称为商品培养基、预制干燥培养基。 ●将各种营养成分按比例配制完全,制成脱水的干粉状,装瓶出售;使用时只需按比例加人定量的水溶化、灭菌便可。 ●根据培养基的用途来区分：增殖培养基选择培养基鉴别培养基 1、增殖培养基：在普通培养基中加入一些某种微生物特别喜欢的营养物质，以增加这种微生物

常用微生物培养基手册大全

1、营养琼脂（普通琼脂）成份：牛肉浸液（或其它浸液，消化液或肉膏汤） 100毫升琼脂（视天气，琼脂质量而定）制法：将上物加热溶解，补足水，调ph至7．6，过滤分装121℃，高压灭菌15分钟。用途：作普通琼脂平皿。 2、血琼脂平板（BA）制法：取营养琼脂（PH7．6），加热使其溶解待冷至45-50℃，以灭菌操作于每100毫升营养琼脂加灭菌脱纤维羊血或兔血5-10毫升,轻轻摇匀，立即倾注于平板或分装试管，制成斜面备用。用途：1．一般棉拭子均接种此培养基。 2．尿液，脓液 3．分离细菌标本用。 3、基础培养基（肉膏汤BB）成份：蛋白胨 10克牛肉膏 5克氯化钠 5克水 1000毫升制法：将以上各物称好，加水煮沸溶解，用1NNOH校正PH至7．6，过滤分瓶， 1

121℃高压灭菌，20分钟备用。用途：1 作耐药试验，增菌用分装小管。 2 作普通琼脂斜面。 4、血液培养基（大管肉汤培养基）成份：1 新鲜牛肉浸液 1000毫升 2 PABA（对氨基苯甲酸〔相当于10mg/毫升〕） 1g% 1毫升 3 MgSO 4 [相当于0．493/100毫升] 49．3% 1毫升 4 枸椽酸钠 0．3g 制法：1 将1号，4号混合液，2号，3号液分装高压灭菌。 2 取灭菌1，4号混合液用无菌法加入PABA，MgSO4，再分管，行无菌试验三天方可使用。用途：作血，骨髓培养用。 5、肠道杆菌培养基（伊红美兰琼脂）成份：蛋白胨 10克乳糖 10克氯化钠 5克琼脂 25（22）克水 1000毫升 2%伊红溶液20毫升 0．5%美兰溶液 20毫升 2

南开大学20秋《微生物学》在线作业-1(参考答案)

1.溶原性细菌是指()。 A.带有毒性噬菌体的细菌 B.带有原噬菌体基因组的细菌 C.带有R因子的细菌 D.带有F因子的细菌答案：B 2.芽孢是芽孢杆菌在不良环境条件下形成的特殊结构，属于()。 A.无性孢子 B.繁殖体 C.休眠体 D.营养体答案：C 3.细菌在接合转移中在菌体间转移的是()。 A.双链环状DNA B.单链环状DNA C.双链线状DNA D.单链线状DNA 答案：D 4.下列关于病毒核酸的描述，错误的是()。 A.遗传物质 B.决定病毒的感染性 C.每一病毒只有一种类型的核酸 D.-ssRNA可作为mRNA E.核酸可分节段答案：D 5.大肠杆菌的鞭毛类型属于()。 A.单端极生鞭毛 B.两端极生鞭毛

C.周生鞭毛 D.丛生鞭毛答案：C 6.人类中引起鹅口疮、阴道炎或肺炎等疾病的真菌是()。 A.新型隐球酵母 B.烟曲霉 C.白假丝酵母 D.匐枝根霉答案：C 7.在五界分类系统中，真菌放在称为()的界中。 A.原生动物 B.真菌 C.藻类 D.原核生物答案：B 8.当进行糖酵解化学反应时，()。 A.糖类转变为蛋白质 B.酶不起作用 C.从二氧化碳分子产生糖类分子 D.从一个单个葡萄糖分子产生两个丙酮酸分子答案：D 9.抑制噬菌体进入裂解周期的蛋白是()。 A.CI B.Cro C.N蛋白 D.Q蛋白答案：A 10.光能微生物的能量来源于()。

A.氧化还原反应 B.日光 C.ATP分子 D.乙酰CoA分子答案：B 11.需要载体但不能进行逆浓度运输的是()。 A.主动运输 B.扩散 C.促进扩散 D.基团转位答案：C 12.化能自养微生物能量产生的方式是()。 A.氧化磷酸化 B.底物水平磷酸化 C.光合磷酸化 D.无氧呼吸答案：A 13.主要由节肢动物如虱、蜱、螨等进行传播的原核微生物是()。 A.衣原体 B.支原体 C.立克次氏体 D.螺旋体答案：C 14.在原核微生物中，具有固定CO2功能的结构是()。 A.羧酶体 B.类囊体 C.载色体 D.迂回体答案：A

种常用微生物培养基配制汇总

36种微生物常用培养基配制 1.牛肉膏蛋白胨培养基（用于细菌培养）牛肉膏3g，蛋白胨10g，NaCl 5g，水1000mL，～。 2.高氏1号培养基(用于放线菌培养) 可溶性淀粉20g，KNO3 1g，NaCl ，K2HPO4?3H2O ，MgSO4?，FeSO4?，水1000mL，～。配制时注意：可溶性淀粉要先用冷水调匀后再加入到以上培养基中。 3.马丁氏（Martin）培养基（用于从土壤中分离真菌） K2HPO41g，MgSO4?，蛋白胨5g，葡萄糖10g，1/3000孟加拉红水溶液100mL，水900mL，自然pH，121℃湿热灭菌30min。待培养基融化后冷却55～60℃时加入链霉素(链霉素含量为30μg/mL)。 4.马铃薯培养基(PDA)(用于霉菌或酵母菌培养) 马铃薯(去皮)200g，蔗糖(或葡萄糖)20g，水1000mL，配制方法如下：将马铃署去皮，切成约2cm2的小块，放入1500mL的烧杯中煮沸30min，注意用玻棒搅拌以防糊底，然后用双层纱布过滤，取其滤液加糖，再补足至1000mL，自然pH，霉菌用蔗糖，酵母菌用葡萄糖。 5.察氏培养基(蔗糖硝酸钠培养基)(用于霉菌培养) 蔗糖30g，NaNO3 2g，K2HPO4 1g，MgSO4?，KCl ，FeSO4?，水1000mL，～。培养基(用于支原体培养) 牛心消化液(或浸出液)1000mL，蛋白胨10g，NaCl 5g，琼脂15g，～，分装每瓶70mL，121℃湿热灭菌15min，待冷却至80℃左右，每70mL中加入马血清20mL，25%鲜酵母浸出液10mL，15醋酸铊水溶液，青霉素G钾盐水溶液(20万单位以上)，以上混合后倾注平板。 *注意：醋酸铊是极毒的药品，需特别注意安全操作。 7.麦氏(McCLary)培养基(醋酸钠培养基) 葡萄糖, KCl ，酵母膏，醋酸钠，琼脂，蒸馏水l00mL。溶解后分装试管，1l5℃湿热灭菌15min。 8.葡萄糖蛋白胨水培养基(用于.反应和甲基红试验) 蛋白胨，葡萄糖，K2HPO4 ，水100mL，，1l5℃湿热灭菌20min。 9.蛋白胨水培养基(用于吲哚试验) 蛋白胨10g，NaCl 5g，水1000mL，～，121℃湿热灭菌20min。 10.糖发酵培养基(用于细菌糖发酵试验) 蛋白胨，NaCl ，K2HPO4 ，水100mL，溴麝香草酚蓝(1%水溶液)，糖类lg。分别称取蛋白胨和NaCl溶于热水中，调pH至，再加入溴麝香草酚蓝(先用少量95%乙醇溶解后，再加水配成1%水溶液)，加入糖类，分装试管，装量4～5cm高，并倒放入一杜氏小管(管口向下，管内充满培养液)。115℃湿热灭菌20min。灭菌时注意适当延长煮沸时间，尽量把冷空气排尽以使杜氏小管内不残存气泡。常用的糖类，如葡萄糖、蔗糖、甘露糖、麦芽糖、乳糖、半乳糖等(后两种糖的用量常加大为%)。

海洋微生物学

1、在人类的肠道中存在一个丰富的生态系统，这是一个数量惊人和种类繁多的微生物，大约有10个微生物，包括400多种重要的细菌，有100多个物种组成。 2、定居在肠道里的微生物为人类提供了许多好处，它们帮助人类消化食物、防御病原体、获得营养，调节脂肪含量，甚至还促进肠上皮细胞的更新。第一篇关于微生物功能的文章起因于来自两个不相关的，健康人的排泄物的基因组分析。参与新陈代谢的许多基因在人类肠微生物组中是富足的，例如那些参与异质、多糖和氨基酸等物质的新陈代谢的基因。下面我将从3个方面讲解肠道微生物的功能（对异质物质和毒素的代谢、人类外在体型的调节、作为疾病的病因） 3、肠道微生物对外来物质的代谢是至关重要的，大多数的药物被看做是外来的物质。与生物除污是类似的，这些微生物可以使有害的物质降解解毒。 4、通过上千年的选择，使得人类和微生物之间拥有一个有益的酶系统，一个例子就是共同的新陈代谢。其能产生两种影响。Good 和bad。 5、早期研究，人类可以通过肠中的微生物进行划分，因为这些微生物受到不同生活习惯、生理等条件的影响。而在这些不同的影响因素中，饮食是主要的影响因素。我们摄取食物的不同改变了肠道中的微生物，然后改变了人类的外在体型。

6、进行动物研究来看待肥胖。在胖老鼠体内的微生物从食物中获取能量的能力更强，因此导致了肥胖积累。微生物代谢难以消化的多糖，将其变为短链脂肪酸，这些短链脂肪酸很容易被吸收并作为脂质储存在寄主脂肪组织中。与瘦人相比较，在胖人的体内，拟杆菌所占的比列小。当给肥胖的人提供低卡路里的食物时，这个比率将要改变，并且他们的体重将减轻2-6%。这些发现显示，肠道微生物在肥胖中起着重要的作用。 7、ppt上 8、Hooper等将微生物与寄主的关系分为互利共生、同食共生及致病3种。互利共生就是微生物寄宿在寄主内，双方都不会危害对方，且双方受益。同食共生就是在共生中不损及对方，但是也没有明显的有益作用。共生微生物的生态失衡会使寄主致病，即使在没有外来传染性微生物侵入的条件下，共生微生物的生态失衡也会引发寄主发生炎性肠病。寄主与肠道微生物之间的共生关系经过几十亿年的协同进化，使得平衡向互利共生移动，在正常的情况下寄主与肠道微生物之间处于一种互利共生的状态。 9、肠道微生物影响寄主的健康情况。肠道微生物在免疫系统的发育和发展中起着重要的作用，其可能产生不利的影响引起免疫失调。肠易激综合症也许是最好的例子。肠易激综合征是。。。。。 10、研究表明，在患者的体内，微生物的组成发生了变化。微生物多样性的改变会产生如下几个结果。。。。。。

常用培养基配方

常用培养基配方（微生物学与微生物检验学部分）渤海大学生物与食品科学学院 2006年3月

目录 01糖发酵管 02 ONPG培养基 03西蒙氏柠檬酸盐培养基 04缓冲葡萄糖蛋白胨水(MR和VP试验用) 05克氏柠檬酸盐培养基 06丙二酸钠培养基 07葡葡糖铵培养基 08Hugh－Leifson培养基(O/F试验用) 09 马尿酸钠培养基 10营养明胶 11苯丙氨酸培养基 12 氨基酸脱羧酶试验培养基 13蛋白胨水(靛基质试验用) 14 硫酸亚铁琼脂(硫化氢试验用) 15 尿素琼脂 16 氰化钾(KCN)培养基 17 氧化酶试验 18 硝酸盐培养基 19 细胞色素氧化酶试验 20 过氧化氢酶试验 21 过氧化物酶试验 22 磷酸盐缓冲液 23明胶磷酸盐缓冲液 24 乳酸－苯酚溶液 25 肉浸液肉汤 26肉浸液琼脂 27牛肉(或牛心)消化汤 28血消化汤 29豆粉琼脂 30血琼脂 31营养琼脂 32营养肉汤 33 乳糖胆盐发酵管 34乳糖发酵管 35 EC肉汤 36 缓冲蛋白胨水(BP) 37 氯化镁孔雀绿增菌液(MM) 38 四硫磺酸钠煌绿增菌液(TTB) 39 四硫磺酸钠煌绿增菌液(换用方法) 40 亚硒酸盐胱氨酸增菌液(SC) 41 GN增菌液

42 肠道菌增菌肉汤 43 亚硫酸铋琼脂(BS) 44 DHL琼脂 45 HE琼脂 46 SS琼脂 47 WS琼脂 48 麦康凯琼脂 49 伊红美蓝琼脂(EMB) 50三糖铁琼脂(TSI) 51 三糖铁琼脂(换用方法) 52 克氏双糖铁琼脂(KI) 53 克氏双糖铁琼脂(换用方法) 54 葡萄糖半固体发酵管 55 5%乳糖发酵管 56 CAYE培养基 57 Honda氏产毒肉汤 58 Elek氏培养基(毒素测定用) 59 氯化镁孔雀绿羧苄青霉素培养基 60 胰蛋白胨水 61 Rustigian氏尿素培养液 62 氯化钠结晶紫增菌液 63 氯化钠蔗糖琼脂 64 嗜盐菌选择性琼脂 65 3.5%氯化钠三糖铁琼脂 66 氯化钠血琼脂 67 3.5%氯化钠生化试验培养基 68 改良磷酸盐缓冲液(小肠结肠炎耶尔森氏菌专用) 69 CIN－1培养基 70 嗜盐性试验培养基 71 改良Y培养基 72 改良克氏双糖 73 快速硫化氢(H2S)试验琼脂 74 DNA酶甲基绿琼脂(DTA) 75 Cary－Blair氏运送培养基 76 Skirrow氏培养基 77 TTC琼脂 78 甘氨酸培养基 79 改良磷酸盐缓冲液 80 氯化镁孔雀绿肉汤 81 胰酪胨大豆肉汤 82 Baird－Parker氏培养基 83 7.5%氯化钠肉汤 84 匹克氏肉汤 85 甘露醇卵黄多粘菌素琼脂

实验一微生物培养基的制备与灭菌知识讲解

实验一微生物培养基的制备与灭菌（8课时）一、目的要求 1、学习配制微生物培养基的一般方法和步骤。 2、掌握高压蒸汽灭菌的原理和操作方法。二、基本原理正确掌握培养基的配制方法是从事微生物学实验工作的重要基础。由于微生物种类及代谢类型的多样性，因而用于培养微生物的培养基的种类也很多，它们的配方及配制方法虽各有差异，但一般培养基的配制程序却大致相同，例如器皿的准备，培养基的配制与分装，棉塞的制作，培养基的灭菌，斜面与平板的制作以及培养基的无菌检查等基本环节大致相同。三、实验材料 1、药品：牛肉膏蛋白胨培养基、琼脂粉、1mol/L的NaOH和1mol/L HCl溶液。 2、仪器及玻璃器皿：电子天平、高压蒸汽灭菌锅、超净工作台、酒精灯、移液管、试管、烧杯、量筒、三角瓶、培养皿和玻璃棒等。 3、其他物品：药匙、称量纸、pH试纸、记号笔、棉花、报纸、线绳和注射器等。四、操作步骤（一）玻璃器皿的洗涤玻璃器皿在使用前必须用洗涤剂洗刷干净，然后用自来水冲净，置于烘箱中烘干后备用。（二）牛肉膏蛋白胨培养基的配制 1、培养基配制（1）称量：按培养基配方计算出各成分的用量，然后用电子天平进行准确称量后倒入一烧杯中。注意：称量药品时，一定要用称量纸而不能用滤纸。称药品用的药匙不要混用，称完药品应及时盖紧瓶盖。（2）溶解：用量筒称量所需体积的水（根据实验需要可用自来水或蒸馏水），倒

入烧杯中，用玻璃棒搅动溶解即可。（3）调pH：一般用pH试纸测定培养基的pH，可用1mol/L NaOH或1mol/L HCl 溶液进行调节。调节pH时，应逐滴加入NaOH或HCI溶液，防止局部过酸或过碱，破坏培养基中成分。边加边搅拌，并不时用PH试纸测试，直至达到所需pH为止。注意：pH值不要调过头，以免回调而影响培养基内各离子的浓度。 2、制备液体培养基（1）用量筒准确量取20ml培养基，倒入100ml三角瓶中，塞好棉塞，用报纸包好瓶口并用棉线包扎好，灭菌。注意：倒溶液时不要把瓶口沾湿。包扎时不要把瓶子弄倒而把棉塞弄湿。3、制备固体培养基（1）平板培养基 A、用量筒准确量取100ml培养基，倒入250ml三角瓶中，加入2g琼脂粉，塞好棉塞，用报纸包好瓶口并用棉线包扎好，灭菌。 B、将洗净烘干的培养皿用报纸包扎好，灭菌。 C、在超净工作台中，将装在三角瓶中已灭菌的琼脂培养基冷至50℃左右倾入无菌培养皿中。温度过高时，皿盖上的冷凝水太多；温度低于50℃，培养基易于凝固而无法制作平板。平板的制作应在火旁进行，左手拿培养皿，右手拿三角瓶的底部，左手同时用小指和手掌将棉塞打开，灼烧瓶口，用左手大拇指将培养皿盖打开，倾入10-15ml培养基，迅速盖好皿盖，置于桌上，轻轻旋转平皿，使培养基均匀分布于整个平皿中，冷凝后即成平板。（2）斜面培养基 A、用量筒量取100ml培养基，倒入一个烧杯中，加入2g琼脂粉，置于石棉网上加热，用玻璃棒搅动溶解至琼脂粉溶解。 B、将洗净烘干的试管放置在试管架上，用注射器将融化琼脂粉的培养基倒入试管至试管高度的1/4处。注意：不要将试管口弄脏。 C、待培养基冷却凝固后，塞上棉塞，以2支或4支为一组，用报纸将试管口包扎好，灭菌。 D、灭菌后，趁热将试管口端搁在一根长木条上，并调整斜度，便斜面的长度不

文档之家