JY市人民医院
标本采集与运送标准操作规程
前言
标本的正确采集在院内感染控制以及合理使用抗生素中具有非常重要的意义，标本正确采集也是临床微生物学实验室分析前质量控制中最为重要的部分，标本采集的质量很大程度上影响检验结果的准确性。因此，要有效地利用实验室，发挥病原学诊断的作用，必须规范标本的采集和运送，否则实验室所做的工作几乎没有什么意义。
为规范临床检验标本的采集，提高细菌性感染的抗菌药物治疗水平，保障患者用药安全，减少细菌耐药，根据省卫生厅“感染病人的病原菌及药敏试验送检率≥50％”的规定，在感管防保科和检验科的努力下，结合临床微生物学检测的相关专著和规范，编写了《JY市人民医院标本采集与运送标准操作规程》。
该标准操作规程的编印，目的是帮助和指导我院临床医疗、护理和检验人员正确采集和收集临床标本，获得准确的临床检验结果，指导临床合理使用抗菌药物，更好地为患者服务。
希望各科室在实践中不断总结，及时反馈实际应用中存在的具体问题，以便适时改进。
二00八年十一月
血培养标本采集与运送标准操作规程
（一）采血指征一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征：发热(≥38℃)或低温(≥36℃)，寒战，白细胞增多(计数大于10.0×109/L，特别有“核左移”时)，皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低，C反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少、血小板减少等；或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。
新生儿可疑菌血症，应该同时做尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。
（二）采集方法
1、皮肤消毒程序：
严格执行以下三步法：(1)70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。(2)1%～2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm 以上。(3)70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干后采血。
2、培养瓶消毒程序：
(1)70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s。(2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。
3、静脉穿刺和培养瓶接种程序：
(1)在穿刺前或穿刺期间,为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，但不可接触穿刺点。(2)用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头(如果行第二次穿刺，应换针头)直接注入血培养瓶，或严格按厂商推荐的方法采血。(3)血标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固。
（三）注意事项
1、血液标本采集后应立即送检，不能及时送检者应置室温暂存，勿放冰箱。检验单需注明抗菌药物（特别是磺胺、青霉素）使用情况，采集时间和部位（如左臂等），可疑的诊断。
2、采血部位：通常为肘静脉，疑为细菌心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助区分是病原菌还是污染菌。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才能确定是病原菌。不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被固有菌群污染。
3、采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半个小时为宜或在停用抗生素24小时后。
4、采血次数及时间：
采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，在24h内采集2～3次做血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采集2份。可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒战或发烧后1h进行。
特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议：(1)可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2～3份血标本。(2)不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2～3份血标本，24～36h后估计体温升高之前(通常在下午)再采集2份以上。(3)可疑菌血症或真菌菌血症，但血培养持续阴性，应改变血培养方法，以获得罕见的或苛养的微生物。(4)可疑细菌性心内膜炎，在1～2h内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标本。
5、采血量：成人采血量是8～10ml，儿童1～5ml。血液和肉汤之比为1∶5～1∶10。
6、将血注入培养基前不需要更换针头，用无菌干棉球按压瓶塞，并尽可能避免血培养瓶橡皮塞上的残留消毒液影响结果。
7、每日每例采血至少两次，间隔0.5～1h。
（四）结果判断
1、健康人体的血液是无菌的。
2、通常血培养分离的细菌或真菌可认为是血液感染的病原体。
3、大多数的菌血症是间歇性的，往往需要以多次血培养阳性证实。如为表皮葡萄球菌、类白喉棒状杆菌等皮肤常居菌，则连续两次培养为同种细菌方可确定。
4、血液中常见细菌为金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、A群、B群链球菌、肺炎链球菌、肠球菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌等。
（五）临床微生物标本送检的注意事项
1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在２小时内。如果不能及时送检，请置于室温环境，切勿冷藏。
2、送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3、最佳的临床标本送检，包括厌氧菌培养标本，首先取决于所获取标本的量。量少的标本要在采集后的15－30分钟内送检。
4、送检期间要予以安全防护：①标本必须置放于我院统一配置的标本箱内，禁止徒手将标本送往实验室。②严禁将带有裸露针头的注射器送往实验室。
痰培养标本采集与运送标准操作规程
（一）标本来源
痰/气管抽吸物（TA）、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。
（二）容器
洁净、广口、无菌、加盖、密封、防渗漏。不含防腐剂和抑菌剂，一次性使用。
（三）采集方法
清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用清水漱口，以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，痰量极少可用45℃10%氯化钠液雾化吸入导痰。
建立人工气道，如气管切开或气管插管者，戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管，一头缓慢插入气管致隆突（叶支气管）水平，一头接电动吸引器，螺旋式抽吸，吸引痰液。
（四）注意事项
1、以清晨第二口痰为佳。防止唾液及上呼吸道分泌物污染。
2、在抗生素使用前采集价值更高。
3、连续采集3～4次,采集间隔时间>24h。
（五）结果判断
1、正常人体的下呼吸道是无菌的，上呼吸道有正常菌群栖居。
2、合格痰的涂片镜检鳞状上皮细胞〈10个/低倍视野，白细胞〉25个/低倍视野，或两者比例小于1：2.5。
3、连续两次分离出相同的病原菌可认为是感染病原菌。
4、经纤维支气管镜和人工气道吸引采集分泌物分离出的细菌可认为是感染病原菌。
5、痰液与血液或胸水中分离到相同病原体，有诊断意义。
6、痰培养常见病原菌为肺炎链球菌、乙型溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌、厌氧性球菌、结核分枝杆菌等。
7、痰中的病原菌不少属于机会致病菌，应根据病情判断。
（六）临床微生物标本送检的注意事项
1、标本及时送检避免干燥，不能及时送检者可暂存4℃冰箱。如在室温下放置数小时，则定植于口咽部的非致病菌过度生长，而肺炎球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显下降。故标本采集后送检时间不得超过2小时。
2、送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3、送检期间要予以安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
手术切口标本采集与运送标准操作规程
（一）采集指征
手术切口部位有红、肿、热、痛等感染征兆或怀疑有切口感染时。
（二）采集方法
1、抽吸前用生理盐水或75%酒精擦去表面分泌物，以避免污染。
2、未溃破脓肿用消毒液消毒皮肤，待消毒液干燥后以无菌注射器抽取脓液送检或切开排脓时用无菌棉拭子采样。
3、采样后速将试管口于酒精灯火焰上消毒，插入拭子塞紧送验。
（三）采集量
至少采集两个拭子标本，一个用于细菌培养，另一个用于制备涂片染色。最好每天1次，每次采集≥1ml。
（四）注意事项
1、标本避免干燥；
2、厌氧菌标本避免与空气接触；
3、采样前局部避免使用抗菌药物；
4、如使用消毒液消毒皮肤，须待其干燥后采样。
（五）结果判断
感染的判定主要看细菌的种类和数量，因为外环境和皮肤定植菌也常在手术切口或创面分离到。
对无菌部位的感染，从分泌物中分离到细菌一般均有临床意义。
（六）临床微生物标本送检的注意事项
1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在２小时内。如果不能及时送检可暂存4℃冰箱，但不要超过24小时。
2、送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3、以棉拭子采集的标本，宜插入运送培养基内送检。
4、厌氧培养标本需保持厌氧状态运送：使用专用运送培养基或用针筒抽取标本后排尽空气,在针头上置无菌橡皮塞后运送。
5、最佳的临床标本送检，包括厌氧菌培养标本，首先取决于所获取标本的量。量少的标本要在采集后的15－30分钟内送检。活检组织如果采用厌氧运送方式，可置于25℃恒温箱存放20至24小时。
6、送检期间要予以安全防护：①放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。②严禁将带有裸露针头的注射器送往实验室。
尿培养标本采集与运送标准操作规程
（一）采集指征
（1）有典型的尿路感染症状；(2）肉眼脓尿或血尿；（3）尿常规检查表现为白细胞或亚硝酸盐阳性；(4)不明原因的发热，无其他局部症状；（5）留置导尿管的患者出现发热；（6）膀胱排空功能受损；(7）泌尿系统疾病手术前。
（二）采集方法
1、普通中段尿采集
最好留取早晨清洁中段尿标本，嘱咐患者睡前少饮水，清晨起床后，女性采样前用肥皂水或0.1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部尿道口（男性须翻转包皮冲洗），用0.1％新洁尔灭或无痛碘消毒尿道口，灭菌纱布擦干；开始排尿，将前段尿排去，中段尿约10-20ml直接排入专用的无菌容器中，立即送检，2h内接种。
该方法简单、易行，是最常用的尿培养标本收集方法，但很容易受到会阴部细菌污染，应由医护人员采集或在医护人员指导下由患者正确留取。
如果需要可收集第一段尿液数毫升作淋球菌和衣原体检查；不中止排尿，在排去数毫升尿液后用无菌试管收集第二段尿，即为所需中段尿。
2、留置导尿尿标本采集
培养前，有条件者可夹管4～5小时以上，使细菌有足够的时间繁殖，以提高阳性率。采样时应松管弃去前端尿液，左手戴无菌手套固定导尿管后，按中、
左、右、中的顺序，严格消毒尿道口处的导尿管壁，用无菌注射器针头斜穿管壁抽吸尿液。不可打开导尿管和引流管连接处收集标本。
3、耻骨上膀胱穿刺法：使用无菌注射器直接从耻骨上经皮肤消毒穿入膀胱吸取尿液，是评估膀胱内细菌感染的“金标法”，尤其做厌氧菌检查时必须采用膀胱穿刺法。但本法有一定的痛苦，患者难以接受。穿刺时膀胱应充盈，皮肤严格消毒后用装有19或20号针头的注射器在耻骨联合距脐1/3处穿刺。主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本的采集。
（三）注意事项：
1、采集的尿液标本放入无菌容器中立即送检，室温下保存时间不得超过2h （夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）,4℃冷藏保存时间不得超过8h，但应注意冷藏保存的标本不能用于淋病奈瑟菌培养。
2、在用药前采集尿液，不加防腐剂；
3、严格无菌操作，避免污染；
4、不可从集尿袋下端管口留取标本。
（四）结果判断
1、正常人体内膀胱中的尿液是无菌的。
2、中段尿以晨起第一次尿液为主，其革兰阴性杆菌浓度＞10５/ml，革兰阳性球菌＞10４/ml可认为是感染的病原菌，反之污染菌可能性大。真菌浓度＞103～4/ml可认为感染菌。
3、已用抗菌药或经导尿管采集的尿液，多次尿培养为单一的同种菌，细菌浓度虽未达到上述界限，也可认为是感染的病原菌。
4、尿培养显示浓度超过上述界限的但有三种或三种以上细菌和真菌时，应考虑污染菌可能。
5、尿培养中常见病原菌为大肠埃希菌、肠球菌等。
（五）临床微生物标本送检的注意事项
1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在２小时内。如果不能及时送检，放置于冰箱内，但不要超过24小时。
2、送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3、送检期间要予以安全防护：①放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。②严禁将带有裸露针头的注射器送往实验室。
粪便标本采集与运送标准操作规程
急性感染性腹泻可以由细菌、病毒及原虫引起，实验室常规检查是细菌培养。沙门氏菌、志贺氏菌、假单胞菌和气单胞菌应作为实验室常规培养的主要腹泻病原菌。住院3天以上发生腹泻的患者进行常规培养意义不大，秋冬季，儿童(2岁以内)腹泻多以病毒性肠炎为主，应在腹泻病毒阴性排除后，再考虑做细菌培养。
（一）物品准备与申请
1、领取清洁便盒。请拿检验申请单到检验科细菌室登记领取。细菌室周一到周六上午正常上班。其他时间如中午、夜班、节假日请与生化室联系。
2、填写检验申请单。用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
（二）采集指征
当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培养：（1）粪便涂片镜检白细胞≥5个/HP；（2）重症腹泻；（3）体温大于38.5℃；（4）血便；（5）便中有脓液；（6）未经抗菌药物治疗的持续性腹泻患者；（7）来自疫区的患者。
（三）采集方法
标本采集尽可能在发病早期和应用抗菌药物治疗之前。在不同的时间采集2～3份标本可以提高致病菌的分离率。方法有:
1、自然排便法
直接留置粪便标本于清洁、干燥广口容器中送检。本法为常规方法。注意若有脓血、粘液、组织碎片，则取有脓血、粘液、组织碎片部分的粪便2～3g，液体粪便则取絮状物，一般取1～3ml。
2、直肠拭子法
用无菌拭子插入肛门2-4cm，轻轻旋转拭子，可在拭子上明显见到粪便，插入运送培养基内，立即送检。本法只适用于排便困难患者或婴幼儿，不推荐使用拭子做常规性病原菌培养。
（四）标本运送和验收
1、标本应尽快送检，不能及时送检的标本，室温保存≤2h。如采便后2h
内未培养,标本应放入运送培养基如Cary -Blair运送培养基中4℃冰箱保存，一般可保存24h。
2、粪便标本验收与拒收程序：采用一次性无菌杯，杯盖严密，无明显灰尘纸屑，留取时间符合要求者为合格标本；否者为不合格标本应拒收。当怀疑沙门菌、志贺菌、弯曲菌以外的细菌引起的腹泻时，临床医生必须通知实验室，因为
分离弧菌、耶尔森菌、气单胞菌、大肠埃希菌O
157：H
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需要特殊的实验程序和培
养基。粪便标本一般不做厌氧培养。
脑脊液标本采集与运送标准操作规程
正常人体脑脊液是无菌的。当人体患有脑脊髓膜炎症时，在脑脊液中可以出现病原菌。常见的病原菌有细菌、真菌、结核分枝杆菌等。做脑脊液的细菌培养有助于诊断脑膜炎病因。
（一）物品准备与申请
1、领取无菌试管
供应室领取无菌穿刺包。细菌室周一到周六上午正常上班。其他时间如中午、夜班、节假日请到生化室联系。
2、填写检验申请单
用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
（二）采集指征
有脑膜炎症状，临床怀疑有脑膜炎感染，应进行细菌培养。
（三）采集方法
病人应先禁食，由医师以无菌手续在病人第3和第4腰椎间隙或稍低处穿刺取得，小儿则于第4和第5腰椎间隙穿刺，必须装入戴帽(盖)的无菌容器，立即送检。
（四）标本运送和验收
1、标本采集后应置于无菌试管内尽快送检，绝不可冷藏！！！每种检验需要最小量：细菌培养≥lml，真菌≥2ml，抗酸杆菌≥2ml。
2、标本验收与拒收：标本未收集于无菌管或送检延误或冷藏保存，则拒收标本，通知临床要求重新采集标本。
脓液标本采集与运送标准操作规程
组织或器官的化脓性感染，其病原菌的来源可分为两类：内源性（感染源是炎症局部周围器官中的正常菌群）和外源性（感染源是存在于外界的微生物）.
（一）物品准备与申请
1、领取无菌试管
请拿检验申请单到检验科细菌室登记领取。细菌室周一到周六上午正常上班。其他时间如中午、夜班、节假日请到生化室联系。
2、填写检验申请单
用钢笔填写，字迹清楚，填写完整。填写内容包括：患者姓名、性别、年龄、科别、病区、床号、住院号、临床诊断、送检目的、申请医生及送检时间。
（二）采集指征
局部组织或器官有化脓性感染表现，应进行细菌培养。
（三）采集方法
1、开放脓肿用无菌盐水或70％酒精擦去表面渗出物，用拭子伸入溃疡基底部或边缘部，采集两个拭子，分别做培养和革兰氏染色，也可对渗出物做需氧培养。开放病灶不能做厌氧培养。
2、闭锁脓肿不能用拭子，要消毒脓肿表面皮肤后用无菌注射器抽取，刺入无菌橡皮塞中送检。
3、烧伤伤口清创，出现渗出物后用拭子用力采集，仅做需氧培养。也可送组织标本。
4、脓疱或水疱酒精消毒，干燥，用针头（小儿用23号针头）挑破脓疱，用拭子采集脓疱液和基底部标本。
（四）标本运送和验收
1、标本采集后应尽快送检，如果在1h内不能培养，应将标本冷藏。
2、标本验收与拒收:标本拭子未装入无菌容器内或注射器渗漏污染者；送检时间过长者应拒收。标本涂片革兰染色若发现上皮细胞，提示标本已被污染，一般不适合再做培养。
（五）注意事项
对大多数开放伤口，采集前应先清创，去除表面菌群，除非有渗出物。干燥、结痂伤口一般不做培养。闭合脓肿应取穿刺物和脓肿壁标本。开放脓肿处理同开放性伤口。不要仅仅送检脓液，应在病灶活动区域或基底部采集标本，最好有组织标本。
封面
前言 医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。 宾阳县人民医院 检验科、护理部、感染管理科 2016年8月4日
目录 第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4) 第二部分检验标本采集运输要求 (5) 第三部分患者采血前的准备 (6) 第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6) 一、静脉血液采集运输作业指导书 (6) 二、末梢血采集运输作业指导书 (8) 三、动脉血液采集运输作业指导书 (9) 四、尿液标本采集运输作业指导书 (10) 五、粪便标本采集运输作业指导书 (11) 六、前列腺液采集运输作业指导书 (11) 七、精液采集运输作业指导书 (12) 八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13) 九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14) 十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15) 十一、骨髓采集运输作业指导书 (16) 十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18) 第五部分标本采集运输流程 (20) 第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21) 1 . 检验标本的接收标准: (21) 2 . 不合格标本拒收标准: (21) 3 . 检验标本接收流程: (22) 4 . 不合格标本拒收流程: (23)
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
文档序号：XXYY-ZWK-001 文档编号：ZWK-20XX-001 XXX医院 尿液标本采集和运送 操作规程 编制科室：知丁 日期：年月日
尿液标本采集和运送操作规程1．目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2．范围 医院科室／部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3．定义 无。 4．内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.2耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接
从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.3.3回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液，这种方法易污染产生假阳性。 4.2.4.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。 4.3标本运送：标本采集后应及时送检，室温下保存时间不应超过2小时（夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存）。如果不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但保存时间也不应超过8小时。
临床标本采集与运送规范 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤，要求规范采集并正确送检，特制定本规范。一、尿液标本的采集规范 (一)尿常规检查标本 1、使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。 2、尿标本应避免经血、白带、类使等混入。 3、标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。 (二)尿培养标本 1.需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 2.病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，弃前段尿，用无 菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 3.患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 4.尿中应加入防腐剂。 (三) 24小时尿标本 1、准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000-5000mL。 2、病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次尿。 3、测量尿液总量(mI)并记录，将全部尿液充分混均后，取出20- 50m1，
置于清洁干燥有盖容器中立即总检。 4、若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 二、血液标本采集规范 1、理想的采集血标本的时间是早晨7: 00~8 : 00。 2、采集血液标本的真空采血管与容器注射器应干燥，针头不能过细， 3、血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血，对已用药而不能终止的患者，也应在下次用药之前采血。 4.采血部位和数量成人首选肘部血管:正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 5、禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。 6、采集血液标本时应根据检验日的及要求，准确采集标本量。 7、分装血液标本时应取下针头，将血液沿试管壁缓慢推入试管或其他相应容器。 8、对于抗凝的标本，要温和地使血液与抗凝剂混匀，防止剧烈摇动使细胞损伤。 9、标本送检:血液标本采集后应及时送检，血气分析应在30min内检测，慢则会因为全血中RBC的代谢，不断地耗02产生CO2，致使pHPO2降低PCO2 升高，而影响结果的准确性 血标本采集后应尽快送检，时问最好不超过2 h ①建立标本传送系统，加强对送检人员的培训、教育及监督。
临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 （1）采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，根据检验的不同要求，采血的时间也不同： 1）空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。 2）餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3）急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK ）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4）血清淀粉酶起病后6～12小时开始升高，12～24小时达到高峰，一般持续3～5天后下降，超过500U （Somogy 法）即有确诊价值。 5）留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 （2）采血部位 1）动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2）静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。 3）毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。 （3）采血器材：a, 注射器， B ，真空采血器： （4）标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 1）全血：用抗凝剂。 2）血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。 3）血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。 （5）操作重点 1）止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。 2）当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。 3）注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4）操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5）有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法： （1）导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法：是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1：1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口；男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20毫升于无菌容器内，立即加盖送检。 尿标本采集注意事项： （1）尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
微生物检验标本采集运送程序 1．目的 规范微生物检验标本采集、运送，保证实验检测前标本质量。 2．范围 微生物检验标本。 3．职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。 3.3 标本运送人员负责及时送到检验科细菌室，急诊检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送到细菌室（备注：周一至周五8：00AM～5：30PM、节假日8：00AM-12：00AM 送细菌室，余下时间送门诊检验室）。 4．程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作。包括核对医嘱，打印条形码，选择合适的标本容器，粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请是否一致，严防差错。 4.3 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备来采集标本，注意避免自身正常菌群的污染，各标本采集技术、设备和方法参见微生物标本采集指南。 4.4 采集厌氧菌培养标本时一般情况下不要使用拭子，最好选择活检或抽吸物；厌氧菌培养标本的运输应避免接触空气，立即送检，切不可冷藏；厌氧标本采集与需氧标本采集均参见微生物标本采集指南。 4.5 收集足够量的标本，量少可能导致假期阴性结果。 4.6 在每份标本容器上贴上条形码标识，标识中包含有病人基本信息与检验项目，有时还需标明标本来源、采集部位、采集时间。 4.7 将标本放置于合适的密封容器中。 4.8 采集样品所用材料需按照废弃物处理程序处置，参见《废弃物处理程序》）。 4.9 采集标本后，运送人员及时送到检验科细菌室。 4.10 标本运送人员收集标本时，需核对标本数，用硬质、密闭防泄漏的二级容器将标本安全送抵细菌室，参见微生物标本采集指南。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 （一）消毒 1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。 2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm 以上，待消毒液挥发干燥后（常需30 s以上）穿刺采血。 （二）静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。 （三）注意事项 1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min;必要时次日再做血培养2次。 5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、
【2017年整理】血标本采集运送、交接管理制度与流程血标本采集运送、交接管理制度与流程 为落实执行《临床输血技术规范》第三章“受血者血样采集与送检”有关规定，确保血液样本的有效性，防止发生差错事故，以及便于追踪调查，特制定本制度。适用于临床输血工作中血标本的采集、标识、运输、交接、检测、保存和销毁等工作环节的管理。 一、血标本采集要求 1、人员要求:采集交叉配血、血型血样的护士必须具有有资质并接受过相关的血标本采集的培训，实习或进修护士不得进行。 2、采集血标本时要求采血护士必须认真核对受血者身份，如果患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清，通过询问患者的亲属确认患者身份。只有当《临床输血申请单》与患者腕带的资料完全一致时方可采集血标本，并在采血后将标有患者姓名、性别、年龄、住院号、检测项目的条形码标签贴在采血试管上并与《临床输血申请单》资料仔细核对。绝对禁止通过床头卡来核实患者身份。 二、血标本的要求: 1、ABO及RhD血型鉴定试验血标本推荐用EDTA?K2抗凝，血量不少于2m1;交叉配血、红细胞不规则抗体筛选试验血标本推荐用白盖不含抗凝剂管，血量至少5ml。 2、疑难交叉配血的血标本要求送检2管，1管抗凝(推荐EDTA?K2抗凝，另1管不抗凝，血量依照2.1要求。) 3、交叉配血标本采集要求，凡患者上次输注过血制品，再次输血仍须重新抽取交叉配血血标本以防止输血反应的发生。 4、受血者血标本采集
(1)血标本采集前应征得受血者知情同意，采血时采血人员持《临床输血申请单》和血型鉴定报告认真核对受血者身份，若患者是清醒的，应要求患者回答自己的姓名;若患者意识不清.通过询问患者的亲属核对患者身份。《临床输血申请单》的相关信息与受血者的资料完全一致时方可采集血标本，二者不一致时不得采集血标本。 (2)采集血标本时严格执行无菌操作和正确穿刺。 (3)一位采血人员不得同时采集两位以上患者用于交叉配血的血标本。 (4)血标本的标识:血标本采集后，采血人员必须于患者床边在血标本上贴上条码，内容至少包括患者姓名、性别、年龄、病案号、检测项目及血标本采集时间等信息采血人员在《临床输血申请单》上签名并注明采血时间。 5、受血者血标本的运输: 1)标识好的血标本连同《临床输血申请单》由医护人员送往输血科。 ( (2)紧急送检血标本应符合输血科紧急检测项目的相关要求，并在申请单上注明“紧急”字样。 (3)送外单位检测的血标本应有试管盖封口，同《疑难配血登记表》一起放入标本袋并密封，观察无血液渗漏后方能送检;若采取4?条件送检，应避免该血标本与冰盒等接触发生溶血。 6、受血者血标本的交接: (1)血标本送交人员与输血科人员交接血标本时按照3. 2的要求对血标本进行检查， 并仔细核对血标本信息与《临床输血申请单》是否一致等。 )确认无误后，由血标本送交人员和接收人员共同在《输血科血标本交接记录表》(2 上签名并注明送检时间。
---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 传染性疾病标本采集方法 标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养： 医院内肺炎；留置中心静脉导管超过 72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后，以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程（一）消毒 1．培养瓶消毒程序： 用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。 2．皮肤消毒程序： 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达 5 cm 以上，待消毒液挥发干燥后（常需 30 s 以上）穿刺采血。 （二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。 近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。 1 / 10
（三）注意事项 1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3．采血次数： 对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4．细菌性心内膜炎： 在 24 h 内取血 3 次，每次间隔不少于 30 min;必要时次日再做血培养 2 次。 5．采血量： 以培养基与血液之比 10： 1 为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 采血量过少会明显降低阳性率。 成人每次每培养瓶采血 8～ 10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血 2 ml。 四、运送要求 1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在 2h 内。 如果不能及时送检，宜置于室温环境。 血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。
尿液标本采集和运送操作规程 1 Women and Children ' Hospital 1.目的 规范尿液标本采集和运送，提高标本检测合格率。 2.范围 医院科室/部门、员工、医学学员、患者、来访者。 3.定义 无。 4.内容 4.1采集时机：宜为抗菌药物使用之前的清晨第一次尿 液。 4.2采集方法： 4.2.1清洁中段尿： 4.2.1.1女性：采样前用肥皂水或0. 1%的高锰酸钾溶液 等冲洗外阴，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段尿10 - 20mL 于无菌容器内。 4.2.1.2男性：采样前用肥皂水或0. 05%-0.1010的碘伏消毒液清洗消毒 尿道口，弃去前段尿，不终止排尿，留取中段 尿10 - 20mL于无菌容器内。
422耻骨上膀胱穿刺： 4.2.2.1主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。 4.2.2.2消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺人膀胱吸取尿 液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3导尿管尿： 4.2.3.1直接导尿法：0.5010碘伏消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插人膀胱，先弃其前段尿液约15mL，再留取 中段尿液10 - 20mL于无菌容器内。 4.2.3.2留置导尿管法：采集前先夹住导尿管，采集时弃其前段尿液，消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺人导尿管（从采样口或靠近尿道的导尿管管壁）抽取10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.233回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，消毒吻合口后，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10 - 20mL尿液于无菌容器内。 4.2.4小儿收集包： 4.2.4.1对于无自控能力的小儿可采用收集包采集尿液， 这种方法易污染产生假阳性。 424.2如果检验结果为阳性，应结合临床进行分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进行复检。
标本采集与运送知识考试题 一、填空（20分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿2~3套＿套血培养，最好在＿5＿分钟内采集 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿导管相关血流感染＿；若从 导管取血，必需同时从＿静脉＿取血 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿6~8＿小时以上，所以夜间最 好＿少＿饮水。尿液培养标本宜立即送检，＿2＿小时内接种。 4、膀胱穿刺适应症＿有尿感表现但中断尿菌落数很低，而又难以确定感染源者＿、＿婴 幼儿、新生儿不能用导管者＿、＿怀疑有厌氧菌感染时＿,穿刺部位＿耻骨联合距脐1/3处＿穿刺针型号宜选＿19或20号＿号针头 5、冷藏保存过的尿标本不能用于＿淋病奈瑟菌＿菌培养 6、脑脊液标本送检时应注意＿保温＿，防止＿防止干燥＿ 7、胃液和胆汁采集后应立即送检，绝对不能注入＿血培养瓶＿内送检 8、疑有宫腔内感染剖宫产时在留取宫腔分泌物的同时需采集＿婴儿耳拭子＿一同送检 9、未破裂的脓肿留取标本时需同时留取＿渗出液＿和＿脓肿壁标本＿ 二、单选题（16分，每题2分） 1、一个静脉穿刺点可以采集几套血培养？（A） A、1套 B、2套 C、3套 D、N套 2、婴幼儿采血量不能超过全血量的（A） A、1% B、2% C、3% D、5% 3、75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞需要（D） A、20秒 B、30秒 C、40秒 D、60秒 4、血培养标本延迟上机的时间不能超过几小时？（D） A、2小时 B、4小时 C、10小时 D、20小时 5、留置导尿管吸取尿液可先夹住导尿但不能超过（C） A、10分钟 B、20分钟 C、30分钟 D、60分钟 6、怀疑肾结核时应连续几天采集晨尿？（B） A、2天 B、3天 C、5天 D、7天 7、以下那份尿标本可以做培养？（D）
临床常用检验标本的采集方法及注意事项 医学检验又称临床检验，是指通过感官观察，试剂反应，仪器分析等，对离体标本如体液，分泌物，排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断，病情判定，疗效观察，预后评估等提出实验数据。 检验结果的准确与否，与病人采样前的状态，准备，取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法，时间，饮食的要求，药物的影响，标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此，护士要有对病人负责的精神，科学的工作态度，严谨的工作作风，一丝不苟地做好临床标本的采集工作，并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断，为治疗护理提供参考依据。 各种标本采集的注意事项的重要意义 护士承担着大多数标本的采集任务，由于标本的来源，性质，采集方式不同，将直接影响临床检验结果的准确性。因此，护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况，明确采集标本的要求，以保证标本质量，为临床诊断提供可靠依据。 1 血标本采集方法及注意事项 采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，解除病人的恐惧或焦虑，安慰病人，使之处于安定状态，避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求，采血的时间也不同： 空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。 餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶（CK）达峰值；30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。 急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升，12-72小时达高峰，4小时左右恢复正常。留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 采血部位 动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。 静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。 毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。 采血器材：a,注射器，瓶塞，玻璃或塑料试管，防腐剂，抗凝剂，标签等。B，真空采血器：以不同彩色标记各种试管盖，用于不同实验。（我院常用的真空采血管规格及标志） 添加剂：一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸（EDTA）二甲抗凝，枸橼酸盐，草酸钠（钾）均系与钙作用而抗凝；肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用，用于血PH，血气，内分泌激素，氨基酸，药物浓度，6-磷酸葡萄糖，染色体等检查。用抗凝试管时，每管的抗凝剂与采血最大量有关，要求与血液充分混匀，不够可致血液凝固。 标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 全血：用抗凝剂。 血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。 血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交
鹤壁京立医院痰培养 标本采集与运送标准操作规程(SOP) （试行） 一、目的 正确采集、运送痰标本。 二、内容 （一）采集目的 一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。 （二）一般原则 1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2 宜采集清晨第二口痰液。 3 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。不建议24h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。 （三）采集方法 1 自然咳痰法与雾化导痰法 1.1 用物准备：无菌容器、生理盐水、化验单。 1.2 核对患者床号、姓名等。 1.3 无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml 雾化吸入约5min后留取痰液。 1.4 如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘取牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。 2 经人工气道吸引法 2.1 用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。 2.2 核对患者床号、姓名等。 2.3 将患者头部转向操作者一侧。
2.4 进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：40.0～5 3.3kPa；小儿：＜40.0kPa）。 2.5 将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。 2.6 折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2min）。 2.7 将痰液注入无菌容器内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器内。 （四）运送与保存 应在2h内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24h。
标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择
临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询，监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确，实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容： a)患者的唯一性标识，如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号； b)患者的姓名、性别、年龄； c)患者就诊或住院的科别、床号； d)样品的类型和原始解剖部位，如静脉抗凝血等； e)申请的检验项目或项目的组合； f)临床标本采集日期和时间； g)实验室收到样品的日期和时间； h)申请者姓名； i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床，临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容，采取 切实措施，保证采集的标本符合疾病的实际情况。
护理7种常用标本采集 正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者，护士应了解各种检验的目的，掌握正确采集标本的方法，采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施，以保证检验结果的准确性。 一、血标本采集 （一）评估和观察要点。 1.评估患者病情、意识及配合程度，需空腹取血者了解是否空腹。 2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 （二）操作要点。 1.真空采血法：根据标本类型选择合适的真空采血管，将采血针与持针套连接，按无菌技术操作规程进行穿刺，见回血后，按顺序依次插入真空采血管。 2.注射器直接穿刺采血法：根据采集血标本的种类准确计算采血量，选择合适的注射器，按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后，取下注射器针头，根据不同标本所需血量，分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内，轻轻混匀，勿用力震荡。 3.经血管通路采血法：外周血管通路仅在置入时可用于采血，短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血，但不能给药。采血后，血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。（三）指导要点。
1.告知患者血标本采集的目的及配合方法，如需空腹采血应提前告知。 2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。 （四）注意事项。 1.在安静状态下采集血标本。 2.若患者正在进行输液治疗，应从非输液侧肢体采集。 3.同时采集多种血标本时，根据采血管说明书要求依次采集血标本。 4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5.标本采集后尽快送检，送检过程中避免过度震荡。 二、血培养标本采集 （一）评估和观察要点。 1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。 2.了解寒颤或发热的高峰时间。 3.了解抗生素使用情况。 4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 （二）操作要点。 1.注射器直接穿刺采血法（同血标本采集）。 2.经血管通路采血法（同血标本采集）。 3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法：取1支注射器抽生理盐水20ml 备用，另备2支注射器。取下肝素帽，连接1支空注射器，抽出5ml 血液弃去；如正在静脉输液中，先停止输液20s，再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口，清除残留血迹。连接肝素帽或
血培养标本的采集与运送操作规程 一目的 1、确保血标本样本培养的准确性。 2、采集血标本做细菌培养。 二用物准备 一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带 三操作方法及程序 1、洗手、戴口罩。 2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒 至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。 3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。 4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。 5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。 6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。同时采集标本间隔时间小于5分钟。 7、立即送实验室室温放置不超过12小时。 四注意事项 1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。 4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。 5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。 6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。
第一篇血液标本采集指南 (依据二甲要求制定本采集指南) 血液标本采集法 1.血清标本测定血液中某些物质的含量（如非蛋白氮，尿素氮等）。 2.血清标本测定血清酶、脂类、电解质和肝功能等。 3.血培养标本查找血液中的病原体（如伤寒杆菌培养等）。 一般常规检验用毛细血管采血法，这种采血法由检验人员执行，血清生化及细菌培养等检验因需要较多量的血液，一般由护理人员协助采血。目前不少生化项目检验已采用微量测定法，故也可采用毛细血管采血法采标本。 （二）静脉采血法 1.用物同静脉注射法，备干燥注射器（5－10ml），7号针头，标本容器（按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶），酒精灯，火柴等。 2.操作方法 （1）备齐用物，贴好标签，核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量，立即卸下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内，切勿将泡沫注入，避免震荡，以防红细胞破裂而造成溶血。因血液中细胞的内外成分有很大差异，如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍，细胞内的某些酶含量也较细胞外高，如发生溶血，则直接影响检验结果的准确性。 （2）如需全血、血浆，可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内，立即轻轻摇动，使血液和抗凝剂混匀，以防血液凝固。如需作二氧化碳结合力测定时，抽取血液后，应立即注入有石蜡油的抗凝试管中，注入时针头应插入石蜡油面以下，以隔绝空气，立即送验。否则血液中二氧化碳逸出，使检验结果降低，影响准确性。 （3）采集血培养标本时，应防止污染。静脉采血后，将血液注入培养瓶内，一般培养标本用肉汤培养瓶，如做伤寒杆菌培养则备胆汁培养瓶。 临床常用的培养瓶有两种，一种是密封瓶，瓶口除橡胶塞外另加铝盖密封。瓶内盛培养液约50ml，经高压灭菌，使用时将铝盖剔去，用2％碘酒和70％酒精消毒瓶盖，更换针头将抽出的血液注入瓶内，摇匀后送验。另一种是三角烧瓶，瓶口以棉花塞子及纸严密包封，使用时先将封瓶纸松开，取血后将棉塞取出迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纸送验。一般血培养取血5ml，亚急性细菌性心内膜炎病人，因血中细菌数目较少，为提高细菌培养阳性率，应取血10－15ml. （4）采血完毕，连同检验单及时送验，清理用物，归还原处。一次性注射器使用后应经消毒液浸泡集中处理。 血液标本采集所需血量视检验目的而定，各医院检验方法不同，其采血量也各异。下面介绍
（一） A 型题 （）1. 防止血标本溶血的方法，下列哪项错误 A. 选用干燥无菌注射器 B. 采血后去针头顺管壁将血浆和泡沫注入试管 C. 避免过度震荡 D. 血培养标本将血液注入培养瓶 E. 立即送验 （）2. 尿常规检查需何时留取尿标本 A. 饭前半小时 B. 晨起第一次尿 C. 12 小时尿 D. 24 小时尿 E. 随时收集尿液 （）3. 留取中段尿的正确方法是 A. 尿量不宜太多，3ml 即可 B. 尿内勿混有消毒液 C. 女性患者须取坐位 D. 必须留取晨起第一次尿 E. 用干燥试管留取尿液 （）4. 检查粪便中的寄生虫卵应 A. 取中间部位的粪便 B. 取边缘部位的粪便 C. 取不同部位的粪便 D. 随机取少许粪便 E. 留取全部粪便 （）5. 采集痰培养标本时应用的漱口液是 A. 生理盐水 B. 1%~4% 碳酸氢钠溶液 C. 0.1% 醋酸溶液 D. 1%~3% 过氧化氢溶液 E. 朵贝尔溶液 （）6. 关于咽拭子培养，下列哪项错误 A. 采集咽部、两侧腭弓及扁桃体分泌物 B. 用无菌咽拭子培养管留取标本 C. 患者先漱口 D. 长棉签蘸无菌生理盐水擦溃疡面采集 E. 真菌培养须在口腔溃疡面采集 （）7. 患者伍某，持续高热，怀疑败血症，下列采集血培养标本哪项做法错误 A. 须放入消毒容器内 B. 检查容器有无裂缝 C. 检查瓶塞是否干燥 D. 检查培养基是否足够 E. 采集时严格执行无菌操作 （）8. 患者张某，急性细菌性心内膜炎，需作血培养检查，护士应给患者采血多少为宜A. 2ml B. 4ml C. 6ml D. 8ml E. 10ml （）9. 患者史某，查找痰中癌细胞，固定痰标本的溶液是 A. 3% 来苏儿 B. 5% 石炭酸 C. 95% 酒精 D. 0.2% 漂白粉 E. 0.2% 苯扎溴铵 （）10. 采集血标本测血糖含量，正确的是 A. 饭后2 小时采血 B. 标本容器用抗凝试管 C. 从输液针头处抽血 D. 采血后将针头靠近管壁缓慢注入 E. 血液注入试管后不能摇动 （）11. 下列关于血标本采集法的描述，错误的是 A. 血清标本应避免震荡，防止溶血 B. 全血标本采集后注入抗凝管，轻轻摇匀 C. 血气分析需用加盖抗凝管 D. 严禁在输血针头处采集血标本 E. 做二氧化碳结合力的测定时，用普通抗凝管，测定结果偏高
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 样本采集要求: 知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:
(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 运输要求: