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痰标本的采集

痰标本的采集
痰标本的采集

痰标本的采集

1、痰培养标本的采集时间及频率?

答:①在抗生素应用前采集痰标本;②最好在清晨采集痰标本;多数患者在清晨痰较多,且含菌量也多,即使对痰量少的患者,也以清晨最为容易;③对于细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2-3天;不建议24小时内多次采集,除非痰液外观性状出现改变;④怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。

2、痰标本的采集方法?

答:①自然咳痰法:留取前刷牙,用清水漱口3次(或硼酸漱口),以除去口腔内大部分杂菌,之后用力咳出呼吸道深部的痰液吐至无菌的广口瓶内或小纸盒内,盖好盖子。患者痰液较深不易咳出时,可在咳痰前捶背、协助排痰。采集痰量不能少于1ml。

以下方法应该由临床医生按相应操作规程采集。

②经支气管镜抽吸法:纤维支气管镜检查可直接从肺部感染病灶获取支气管分泌物,操作较为安全。用支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌。但不能完全避免咽喉部正常菌群污染,所以一般不采用此法,但对于不能咳出或诱导出足够痰液的患者。支气管镜检查可作为获取标本进行分枝杆菌培养的一种方法。常用的采集方法有:采集支气管肺泡灌洗、经支气管镜直接吸引或用防污染样本毛刷采集。

③经人工气道吸引分泌物:经人工气道吸引分泌物是目前临床较为常用的微生物检验标本,但由于这些宿主的气管纤毛黏液防御机制受到损害,大气通道常有致病菌或条件致病菌定值而不再保持无菌状态,所以有学者提出此法采集的标本也应该先做细胞血筛选。采集方法可通过导管吸

痰(ETA)、防污染毛刷(PSB)要集或防污染灌洗(PBAL)采集。

④经气管穿刺吸引物:由于采集到的下呼吸道标本不受上呼吸道正常菌群的污染,曾较广泛应用于下呼吸道细菌性感染的病原学的诊断。此方法患者常不易接受,但这样的标本适用于厌氧培养。

⑤经胸壁针刺吸引物:对于感染性疾病,只是偶尔用来诊断一些原因不明的肺炎(尤其在儿童)和免疫缺陷患者的肺炎或贴近胸壁的肿块病灶的标本采集。

⑥胃内采痰法:清晨空腹时,将胃管插入胃内,用注射器抽取胃液。适用于无自觉症状的肺结核患者尤其是婴幼儿不会咳嗽,常将痰液吞咽入胃,可通过采集胃内容物作结核分枝杆菌培养。

⑦小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,用棉拭子伸入咽部,小儿因压舌刺激咳嗽时,可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上,从而获得标本。

⑧雾化蒸气吸入法:无痰或痰量极少时可用3%~5%的NaCl溶液5ml 先雾化吸入5min,进行导痰。当NaCl浓度过高时,患者常常不能耐受,所以气道高反应的患者如哮喘患者不宜用此法。

⑨标本采集后需尽快(<24h)送到实验室。

3、为什么痰标本采集前应进行口腔清洁?

答:因为人体喉以上呼吸道黏膜表面及其分泌物含有众多微生物,唾液含量为108~109/ml;老年、重症或住院患者的上呼吸道定植菌更多,致使途经口咽部咳出的痰常受到的污染,影响结果判定,所以为减少污染,需进行口腔清洁。

化脓标本的采集、送检和接种处理

1、如何采集闭锁性脓肿标本?

答:闭锁性脓肿标本指有完整脓壁与体腔或外界不相通的脓肿标本,如:疖、痈、淋巴结脓肿、乳腺脓肿、肺脓肿、肝脓肿、脑脓肿、肾周脓肿、阑尾脓肿、胸腔脓肿、腹腔特别积液、心包积液、腹腔脓肿、关节腔积液和肛周脓肿等标本。闭锁脓肿应采集渗出物和脓肿壁标本,注意不主张用拭子采集标本,在采集此类标本前,对患者病灶局部的皮肤或黏膜表面,用2.5%~3%碘酊消毒、75%酒精脱碘,用无菌注射器将脓肿内容物吸出,然后切开脓肿、引流,采集的脓汁(大于1ml),并取部分脓肿壁臵于厌氧运送装臵或接种于厌氧培养基中立刻送检。

2、如何采集、运送、保存开放性脓肿标本?

答:①首先用无菌生理盐水清洗病灶表面的污染杂菌,用无菌棉拭子先蘸少许无菌肉汤或生理盐水,以保持标本的湿度,然后采取脓液及病灶深部的分泌物(最好从脓肿底部或脓肿壁取样)后臵于无菌的容器中,而瘘管则以无菌方法采取组织碎片,臵于无菌试管中送检,一般在室温2h 内送到细菌室,如果标本延迟送检,应放4℃冰箱保存(厌氧培养标本需室温保存);②对放线菌的标本,常用无菌棉拭子挤压瘘管,选取脓汁中“硫黄样颗粒”,臵于无菌管中送检,也可将无菌纱布塞入瘘管内,次日取出送检;③从伤口深处采集渗出物的拭子标本至少要采集2个拭子,其中一个用于细菌培养,另一个用于涂片革兰染色。

标本采集后需尽快(<24h)送到实验室。

尿液标本的需氧培养

1、何谓尿路感染?

答:尿路感染是由细菌(极少数可由真菌、原虫、病毒)直接侵袭所引起。尿路感染分为上尿路感染和下尿路感染,上尿路感染指的是肾盂肾炎,下尿路感染包括尿道炎和膀胱炎。肾盂肾炎又分为急性肾盂肾炎和慢性肾盂肾炎。好发于女性。

2、尿液培养的送检指征?

答:⑴症状指片:①有典型的尿路感染症状:如尿频、尿血、尿痛等膀胱刺激症状;②肉眼脓尿或血血尿;③尿常规检查表现为白细胞或亚硝酸盐阳性;

④不明原因的发热,无其他局部症状;⑤留臵导尿管的患者出现发热;⑥膀胱排空功能受损:尿液在膀胱内停留时间长,万一有少量细菌侵入,便使其有更多时间繁殖,也有更多时间侵入组织;膀胱满盈,压力增高,尿液会逆流向上至输尿管,若已有细菌侵入,便会将细菌送到更上洲的位臵,引发肾盂肾炎;

⑦尿道口有脓性分泌物;⑧泌尿系统疾病手术前。

⑵疾病指症:①尿路感染;②肾结核;③泌尿系结石、前列腺增生;④无症状性菌尿,是一种隐匿型尿路感染,无泌尿系感染症状,仅表现为低热、乏力,而尿细菌培养阳性结果,多见于女性。在漫长的病程中,可间歇性地转变为症状性菌尿。

3、尿培养的采集时间:

答:①多数药物通过尿液排泄,因此无论何种采集方法均应在抗菌药物应用之前采集,通常采集晨起第一次尿液送检(此时尿液在膀胱内储存4h以上),嘱咐患者睡前少饮水。尿液采集后要及时送检,并保证2h接种;②怀疑沙门菌感染时,一般在病后2周左右采集尿液培养;怀疑钩端螺旋体感染时,一般在感染后2周左右采集尿液培养,此时采集尿标本培养阳性率高;③怀疑结核分枝杆菌感染时,患者应停药1~2天后采集晨尿或24h尿的沉渣部分10~15ml 送检。

4、尿培养的采集方法?

答:⑴清洁中段尿采集法:①女性:采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口,用灭菌纱布擦拭,用手指将阴唇分一排尿,弃去前段尿,留取中段尿于灭菌试管内,尿量不少于1ml,盖好塞子立即送检;②男性:用肥皂水翻转包皮冲洗,用0.1%新洁尔灭消毒尿道口,灭菌纱布擦干后,弃去前段尿,留取中段尿于灭菌试管内,尿量少少于1ml,盖好塞子立即送检;③儿童:在多数情况下仅冲洗外阴是不够的,故采集标本较为困难,如尿培养细菌数明显增多,可高度怀疑为尿路感染。无菌则否定。菌数居中时,有必要导尿

或膀胱穿刺取尿。

⑵肾盂尿采集法:为确定菌尿是否来自肾脏,可用导尿管采集肾盂尿,此方法一般需请泌尿科医师协助进行。

⑶膀胱穿刺采集法:采用耻骨上膀胱穿刺取尿可避免标本污染。这种方法是评估膀胱内细菌感染的“金标准”方法,但有一定的痛苦,患者难以接受。主要用于厌氧菌培养或留取标本困难的婴儿尿标本采集。

⑷集尿法:结核分枝杆菌集菌检查时,可用一清洁无菌容器,留24h尿取沉渣10~15ml送检。

⑸导尿法:①直接导尿:按常规方法做会阴局部消毒后,用导尿管直接经尿道插入膀胱,获取膀胱尿液。可减少尿液标本污染,准确地反映膀胱感染情况;但有可能将下尿道细菌引入膀胱,导致继发感染,一般不提倡使用;②留臵导尿:可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁,用联空针筒的细针斜穿管壁抽吸尿液;或者拔去闭式引流的集尿袋,弃去导尿管前段尿液,留无污染的膀胱内尿液娄毫升送检。

⑹小儿收集包:对于无自控能力的小儿可应用收集包收集尿液,这种装臵由于很难避免会阴部菌群污染产生假阳性,所以只有在检验结果为阴性时才有意义。如果检验结果为阳性,应结合临床进行分析,必要时可使用耻骨上腾腾穿刺或导尿法留取尿液进行复检。

5、尿培养标本采集过程中应注意哪些问题?

答:①清洁中段尿是最常用的尿路培养标本收集方法,但很容易受到会阴部细菌污染,应由医护人员采集或在医护人员指导下由患者正确留取;②尽量不采用导管采集标本,因为导尿结果极易造成尿道细菌丛上行入膀胱引起感染,增加了医源性感染的危险;③尿液中不得加防腐剂或消毒剂;④对于症状不明显的患者,需采集2~3份标本;怀疑肾结核时,应连续3天采集晨尿;⑤多次收集或24h尿不能用于培养,以防污染菌误导临床;⑥不可从集尿袋的下端管口留取标本,集尿袋内的尿液也不能用于培养;⑦尿管末端的尿液也不能用于培养,因为很难避免没有尿道菌群污染;⑧除非是流行病学调查,长期留臵导管患者常规尿培养没有临床意义,大量病原菌常可在这类患者中检出;⑨留臵导管尿液标本常通过专门的采样端口采集,不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。采样端口应该用酒精消毒;必要时,可先夹住导尿管但不能超过30min;将注射器针头插入采样端口,抽吸出尿液;注入无菌杯或试管中;⑩申请单上必须注明患者症状是否明显,这对于定量培养分析非常重要,尤其只有少量尿液标本。

标本采集后需尽快(<24h)送到实验室。

痰标本的采集流程

痰标本的采集流程 急查 次日留取 下达留取痰标本医嘱 审核、处理医嘱 打印两份条形码,贴于化验单及痰杯上 通知责护留取痰标本 责护携带化验单,痰杯,必要时备吸痰器、可控吸痰杯等去病房 责护携带留取标本告知本,标本容器去病房,告知留取痰标本的注意事项 告知患者留取痰标本的注意事项,并协 助患者留取痰标本 中班评价患者注意事项的掌握情况及配合能力,根据掌握情况再次给予告知。 与检验科护工做好交接登记 未自行咳痰留取痰标本者 次日早晨7点半前留取痰标本 将标本置于标本放置处,并在化验单上填写采集标本的时间。通知护工收取标本。与护工做好交接登记。 与主管大夫沟通改为咽式子留取标本 与主管大夫沟通,给予诱导排痰留取标本

采集痰标本的方法: 1.自行咳痰采集:晨痰为佳,用冷水漱口,深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液,标本量不少于1ml。 2.吸痰器吸引采集:协助患者取适当体位,自下而上叩击患者背部,然后将吸引器及可控吸痰杯连接,抽吸痰液2-5ml于无菌痰液采集容器中。 3.咽拭子采集:嘱患者用清水漱口,取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧腭弓、及咽、扁桃体的分泌物,避免咽式子触及其他部位,迅速把咽式子插入无菌试管内塞紧。 4.气管镜采集:联系内窥镜室,协助医生在气管镜引导下,直接采集标本。 留取痰标本的告知内容 1.留痰前,用冷水漱口,有假牙的先取下假牙再漱口;不能自行漱口的患者先做口腔护理。 2.避免将唾液、漱口水、鼻涕、食物残渣等混入痰中。 3.气管切开/插管患者,用负压吸引器吸痰时,弃去第一杯留取的痰标本,把第二杯痰标本送检。

痰培养标本采集 与运送标准操作规程

鹤壁京立医院痰培养 标本采集与运送标准操作规程(SOP) (试行) 一、目的 正确采集、运送痰标本。 二、内容 (一)采集目的 一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测,经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。 (二)一般原则 1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。 2 宜采集清晨第二口痰液。 3 对于普通细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2~3天。不建议24h内多次采样送检,除非痰液外观性状出现改变。

4 怀疑分枝杆菌感染者,应连续收集3天清晨痰液送检。 (三)采集方法 1 自然咳痰法与雾化导痰法 1.1 用物准备:无菌容器、生理盐水、化验单。 1.2 核对患者床号、姓名等。 1.3 无痰或痰量极少者可用3%~5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。 1.4 如有可能,应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。嘱咐患者留取前摘取牙托,清洁口腔,如刷牙后反复用生理盐水漱口;深吸气后用力自气管深部咳出痰液,置无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品,不应用纸巾包裹痰液。 2 经人工气道吸引法 2.1 用物准备:负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。 2.2 核对患者床号、姓名等。 2.3 将患者头部转向操作者一侧。 2.4 进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开,连接吸引

器,调节吸引器至适宜负压(成人:40.0~53.3kPa;小儿:<40.0kPa)。 2.5 将一次性吸痰管外包装去除,戴手套持吸痰管试吸生理盐水,检查管道是否通畅。 2.6 折叠一次性吸痰管末端,插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度,放开吸痰管末端,轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出,即折叠一次性吸痰管退出,将一次性吸痰管与吸引器分离(使用人工呼吸机者,一次吸痰时间不超过15s,吸痰前后需吸入高浓度氧气1~2min)。 2.7 将痰液注入无菌容器内,如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水,将痰液冲入无菌容器内。 (四)运送与保存 应在2h内送至实验室,否则应4℃冷藏,但放置时间不可超过24h。

痰标本采集(文书特制)

痰标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。 2.评估患者口腔黏膜有无异常。 3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的 异常物质等。 (二)操作要点。 1.自行咳痰采集法:晨痰为佳,用冷开水漱口,深吸气后用力咳出呼吸 道深部痰液,标本量不少于1ml,痰量少或无痰患者可采用10%盐水加 温至45℃左右雾化吸入后,将痰液咳出。 2.难于自然咳痰、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法:患者取适 当卧位,先叩击患者背部,然后将集痰器与吸引器连接,抽吸痰液 2~5ml于集痰器内。 3.气管镜采集法:协助医生在气管镜引导下,直接采集标本。 4.24h痰标本采集法:在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前 漱口后第一口痰开始留取,至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束, 全部痰液留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性状。 (三)指导要点。 1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。 2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。 3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。 (四)注意事项。 1.除24h痰标本外,痰液收集时间宜选择在清晨。 2.痰培养的标本应立即送检。 3.在抗生素应用前采集痰液 (五)评分标准 项目操作步骤操作要点分值 评分等级 ⅠⅡⅢ仪表仪表端庄,服装整洁。符合要求 5 5 3 1 评估1、查看医嘱及化验单:患者床号、姓名、痰标本 种类、留痰注意事项 完整、正确 5 5 3 1 2、了解患者身体状况:病情、诊断、治疗等评估准确 5 5 3 1

3、向患者解释痰标本采集的目的、方法、采集时间及配合要点,取得合作解释到位、交 流自然 5 5 3 1 4、评估患者咳嗽、咳痰情况,口腔黏膜有无异常 和咽部情况:如痰的颜色、量、性质、能否自行咳 出,并观察患者有无口腔黏膜溃疡、糜烂,询问患 者进食时有无咽部疼痛等不适感 评估准确 5 5 3 1 操作前1、个人准备:应用六步洗手法清洗双手,戴口罩正确 5 5 3 1 2、物品准备:①依痰标本种类和患者情况选择盛 痰容器、漱口液;②对不能自行排痰者应备吸痰装 置及物品1套;③化验单、笔 按需备齐 5 5 3 1 操作中1、携用物至患者床旁,核对床号、姓名,协助患 者取合适体位 核对完整、正 确,卧位舒适 5 5 3 1 2、指导能自行排痰患者留取痰标本: (1)常规痰标本:患者晨起未进食前用清水漱口, 在数次深呼吸后用力咳出气管深处的第一口痰,盛 于痰盒内,加盖 (2)痰培养:患者晨起先用漱口液漱口后,再用 清水漱口,最后数次深呼吸后用力咳出气管深处的 第一口痰液于无菌集痰器内,加盖 (3)24h痰标本:患者从晨起漱口后(7am)留 取第一口痰起至次晨(7am)漱口后第一口痰止, 将24h的全部痰液吐入广口集痰器(加一定量的清 水,记录总量时应减去清水量)内,加盖 指导正确,采 集标本合乎要 求、无污染 30 30 25 20 3、在化验单上记录采集日期、时间并签名;及时 送检 记录完整、正 确,送检及时 5 5 3 1 4、留痰后再次漱口或做口腔护理 操作正确、 熟练 5 5 3 1 5、整理用物;协助患者区舒适卧位,整理床单位; 感谢患者的配合 卧位舒适,尊 重患者 5 5 3 1 操作后1、对物品进行分类处理:对采用吸痰操作所用物 品,按吸痰技术操作后物品的处理方法进行分类处 理 用物处理方法 正确 5 5 3 1

痰标本采集操作标准.doc

涿州市医院护理部基础技术规范(31)2017年2月20日制订 痰标本采集操作标准 一、【目的】 1.评估患者痰液的量、颜色、气味及浓稠度。 2.了解疾病进展和治疗成效。 3.收集患者痰液做细菌培养、细胞学检查,协助诊断。 二、【操作前准备】 1.评估: (1)患者病情、年龄、治疗、排痰情况和配合程度。 (2)评估患者口腔粘膜有无异常。 (3)观察痰液的颜色、性质、量、气味、粘稠度。 (4)解释留痰目的、方法、注意事项。 2.护士准备:洗手、戴帽子、口罩。 3.用物准备:化验单、痰标本容器(留取痰培养标本时需备无菌标本容器及漱口液)、吸痰用物一套(一次性痰液收集器、无菌手套、生理盐水、负压吸引器一套)。 三、【操作步骤】 1.双人核对医嘱,打印条码。 2.按医嘱备痰标本容器,容器上贴好条形码。 3.洗手,戴口罩、手套。

4.携用物至患者床旁,再次核对患者姓名、住院号,向病人解释,取得配合。 5.指导或帮助患者按要求排痰: (1)常规痰液标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于清洁容器内。标本不小于1ml,痰液内禁止混入漱口水和食物残渣。 (2)痰培养标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于无菌容器内。 (3)难于自然咳嗽、不合作或人工气道患者痰液采集法:取舒适卧位,先叩击患者背部,戴无菌手套连接集痰器与负压吸引装置,抽吸痰液2-5ml于集痰器内。 (4)24小时痰标本采集法:在广口瓶内加少量清水患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取,至次晨进食前漱口后最后一口痰结束,全部痰液留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性状。(须在容器上注明起止时间) (5)咽试子采集法:患者用清水漱口,取出无菌试子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧鄂弓、咽、扁桃体的分泌物,避免咽试子触及其他部位;迅速把咽试子插入无菌管内塞紧。 6.脱手套,消毒双手,再次核对,整理床单位,协助患者取舒适体位。 7.观察痰液的色,质,量。

(完整版)痰标本采集操作标准

痰标本采集操作标准 一、【目的】 1.评估患者痰液的量、颜色、气味及浓稠度。 2.了解疾病进展和治疗成效。 3.收集患者痰液做细菌培养、细胞学检查,协助诊断。 二、【操作前准备】 1.评估: (1)患者病情、年龄、治疗、排痰情况和配合程度。 (2)评估患者口腔粘膜有无异常。 (3)观察痰液的颜色、性质、量、气味、粘稠度。 (4)解释留痰目的、方法、注意事项。 2.护士准备:洗手、戴帽子、口罩。 3.用物准备:化验单、痰标本容器(留取痰培养标本时需备无菌标本容器 及漱口液)、吸痰用物一套(一次性痰液收集器、无菌手套、生理盐水、 负压吸引器一套)。 三、【操作步骤】 1.双人核对医嘱,打印条码。 2.按医嘱备痰标本容器,容器上贴好条形码。 3.洗手,戴口罩、手套。 4.携用物至患者床旁,再次核对患者姓名、住院号,向病人解释,取得配合。 5.指导或帮助患者按要求排痰: (1)常规痰液标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于清洁容器内。标本不小于1ml,痰液内禁止混入漱口水和食物残渣。 (2)痰培养标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于无菌容器内。 (3)难于自然咳嗽、不合作或人工气道患者痰液采集法:取舒适卧位,先叩击患者背部,戴无菌手套连接集痰器与负压吸引装置,抽吸痰液 2-5ml于集痰器内。 (4)24小时痰标本采集法:在广口瓶内加少量清水患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取,至次晨进食前漱口后最后一口痰结束,全部痰 液留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性状。(须在容器上注明起止时间) (5)咽试子采集法:患者用清水漱口,取出无菌试子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧鄂弓、咽、扁桃体的 分泌物,避免咽试子触及其他部位;迅速把咽试子插入无菌管内塞紧。 6.脱手套,消毒双手,再次核对,整理床单位,协助患者取舒适体位。 7.观察痰液的色,质,量。 8.处理用物,洗手。 9.按要求将痰标本及时送检。 四、【注意事项】 1.除24小时痰标本外,痰液收集时间宜选择在清晨。 2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检,也可用95%乙醇或10%甲醛固定后送检。 3.避免在进食后2小时内留取咽拭子标本,以防呕吐,棉签不要触及其他 部位以免影响检查结果。

(推荐)痰标本采集操作流程及要点说明

二、粪便培养标本的采集 【护理目标】 操作规范,无污染标本,保持无菌操作。 【操作重点步骤】 1.核对医嘱与患者。 2.评估患者的病情、抗生素使用及排便情况。 3.告知患者/家属粪便标本采集的目的和配合方法。 4.标本采集: 将检验标签贴在容器上,注明科室、床号、姓名、检验项目。 屏风遮挡,患者排便于清洁干燥便盆内,护士用消毒棉签取粪便带脓血、黏液的异常部分(成形约5 g,水样便约3 mL)置于培养试管中,放置前后均用酒精灯火焰消毒管口及管塞后及时送检。 如患者无便意,护士戴一次性橡胶手套后,用棉签蘸无菌生理盐水,由肛门插入直肠5~7 cm,沿肠壁轻轻旋转一周,擦取直肠表面的黏液后取出,置于培养试管(或保养液)中,常规消毒管口与管塞后,塞紧瓶塞,立即送检。 切勿粪尿相混,影响阳性检出率。 【结果标准】 1.患者/家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。 2.标本留取方法准确,标本无被污染。 3.标本送检及时。 【操作流程及要点说明】 与粪便常规及潜血标本采集流程图同。

三、寄生虫及虫卵标本的采集 【护理目标】 标本合格,采集后送检及时。 【操作重点步骤】 1.核对医嘱与患者。 2.评估患者的病情、抗生素使用及排便情况。 3.评估留标本时的室内外温度。 4.告知患者/家属粪便标本采集的目的和配合方法。 5.标本采集: 将标本标签贴于容器上,注明科室、床号、姓名。 患者排便于清洁便器后,用棉签在粪便不同部位采取带血或黏液部分、蚕豆大(约5 g)的粪便放人清洁防渗漏容器(水样便可盛于大口清洁容器)中送检。 腹泻患者应取脓、血、黏液等异常部分。 服用驱虫剂、作血吸虫孵化检查时,留取全量粪便送检。 6.采集检查蛲虫的粪便标本: 方法一:在晚上23:00左右,患者感觉肛门周围发痒时,用无菌生理盐水棉签,自肛门周围皱襞处拭取,置于试管内,塞好管口送检。 方法二:嘱患者于睡前或清晨尚未起床前将留取标本用的透明胶布贴于肛门外围处(蛲虫常在午夜或清晨时爬到肛门处产卵)。起床后取下透明胶布粘有虫卵的一面贴于载玻片上或将透明胶布对合(粘有虫卵的一面在内)后立即送检。 7采集检查阿米巴原虫的粪便标本:在收集标本前三天,停服钡剂、油质或含金属的泻剂,以免影响阿米巴原虫卵或胞囊的显露。采集标本时将便盆加温至接近人体的温度,便后连同便盆立即送检。 【结果标准】 1.患者/家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。 2.标本留取方法准确。 3.标本送检及时。 【操作流程及要点说明】 与粪便常规及潜血标本采集流程同。

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 (1)采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 1)空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 2)餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3)急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK )达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4)血清淀粉酶起病后6~12小时开始升高,12~24小时达到高峰,一般持续3~5天后下降,超过500U (Somogy 法)即有确诊价值。 5)留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 (2)采血部位 1)动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2)静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 3)毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 (3)采血器材:a, 注射器, B ,真空采血器: (4)标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 1)全血:用抗凝剂。 2)血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 3)血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交叉配血等。 (5)操作重点 1)止血带的应用,一般止血带捆扎不要超过1分钟,时间过长,将影响结果。 2)当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本,以免影响检验的真实结果。 3)注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4)操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5)有抗凝剂的血标本要充分摇匀,防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法: (1)导尿法:用导尿管导尿,取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法:是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1:1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮冲洗,用1:1000新洁尔灭消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20毫升于无菌容器内,立即加盖送检。 尿标本采集注意事项: (1)尿常规,妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜,因为较浓缩,条件恒定,便于对比,故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。

(精选)痰标本采集操作标准

一、【目的】 1. 评估患者痰液的量、颜色、气味及浓稠度。 2. 了解疾病进展和治疗成效。 3. 收集患者痰液做细菌培养、细胞学检查,协助诊断。 二、【操作前准备】 1. 评估: (1)患者病情、年龄、治疗、排痰情况和配合程度。 (2)评估患者口腔粘膜有无异常。 (3)观察痰液的颜色、性质、量、气味、粘稠度。 (4)解释留痰目的、方法、注意事项。 2. 护士准备:洗手、戴帽子、口罩。 3. 用物准备:化验单、痰标本容器(留取痰培养标本时需备无菌标本容器及漱 口液)、吸痰用物一套(一次性痰液收集器、无菌手套、生理盐水、负压吸引器一套)。 三、【操作步骤】 1. 双人核对医嘱,打印条码。 2. 按医嘱备痰标本容器,容器上贴好条形码。 3. 洗手,戴口罩、手套。 4. 携用物至患者床旁,再次核对患者姓名、住院号,向病人解释,取得配合。 5. 指导或帮助患者按要求排痰: (1)常规痰液标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于清洁容器内。标本不小于1ml,痰液内禁止混入漱口水和食物残渣。 (2)痰培养标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于无菌容器内。 (3)难于自然咳嗽、不合作或人工气道患者痰液采集法:取舒适卧位,先叩击患者背部,戴无菌手套连接集痰器与负压吸引装置,抽吸痰液2-5ml 于集痰器内。 (4)24 小时痰标本采集法:在广口瓶内加少量清水患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取,至次晨进食前漱口后最后一口痰结束,全部痰液留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性状。(须在容器上注明起止时间) (5)咽试子采集法:患者用清水漱口,取出无菌试子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧鄂弓、咽、扁桃体的分泌物,避免咽试子触及其他部位;迅速把咽试子插入无菌管内塞紧。 6. 脱手套,消毒双手,再次核对,整理床单位,协助患者取舒适体位。 7. 观察痰液的色,质,量。 8. 处理用物,洗手。 9. 按要求将痰标本及时送检。 四、【注意事项】 1. 除24 小时痰标本外,痰液收集时间宜选择在清晨。 2. 查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检,也可用95%乙醇或10%甲醛固定 后送检。 3. 避免在进食后2 小时内留取咽拭子标本,以防呕吐,棉签不要触及其他部 位以免影响检查结果。

传染性疾病标本采集方法

---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 传染性疾病标本采集方法 标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养: 医院内肺炎;留置中心静脉导管超过 72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程(一)消毒 1.培养瓶消毒程序: 用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序: 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达 5 cm 以上,待消毒液挥发干燥后(常需 30 s 以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。 近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 1 / 10

(三)注意事项 1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数: 对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4.细菌性心内膜炎: 在 24 h 内取血 3 次,每次间隔不少于 30 min;必要时次日再做血培养 2 次。 5.采血量: 以培养基与血液之比 10: 1 为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 采血量过少会明显降低阳性率。 成人每次每培养瓶采血 8~ 10 ml,婴幼儿每次每培养瓶采血 2 ml。 四、运送要求 1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在 2h 内。 如果不能及时送检,宜置于室温环境。 血培养瓶送到检验科放入培养箱前,不应暂存于冰箱内。

标本采集方法

标本采集方法 标本的定义:是指采取患者少许的血液、排泄物(粪、尿)、分泌物(痰、鼻分泌物)、呕吐物、体液(胸腔积液、腹腔积液)和脱落细胞(食道、阴道)等样品,经过物理、化学和生物学的实验室技术和方法对其进行检验,作为判断患者有无异常存在的依据。 本章重点: ●掌握标本采集的原则 ●掌握痰标本、咽拭子标本、血标本、尿标本、粪标本的采集方法 标本采集的意义 ●明确诊断观察病情指导制定治疗措施 标本采集的原则 ●遵照医嘱 ●充分准备: ● 1)患者准备 2)用物准备 3)护士自身准备 ●严格查对:检查项目、患者姓名、床号、住院号 ●正确采集:方法、时间、量、容器 ●及时送检 ●明确检验项目、检验目的及注意事项 ●标本的容器贴好标签,附上验单:患者的姓名、科室、床号、住院号、送检 目的、送检日期和时间等 ●每次采集血标本时应做到“三个一”:一患者、一化验单、一容器 ●一般培养标本的采集应在使用抗生素之前 各种标本的采集 一、痰液标本的采集 ★痰常规标本★痰培养标本★24小时痰标本 三种痰标本的区别 分类目的 痰常规标本痰液一般形状,涂片查细胞、细菌、虫卵等痰培养标本痰中的致病菌

24小时痰标本24小时痰液的量和性状 分类用物 痰常规标本普通容器,痰盒 痰培养标本无菌集痰器,漱口液 24小时痰标本500ml的广口玻璃瓶,内盛少量清水 分类采集方法 痰常规标本幻灯片 10 能自理的患者; 无法咳痰或不合作者 痰培养标本步骤基本同上。不同的是先用漱口液漱口,再用 清水漱口;无菌容器,无菌操作。 24小时痰标本从晨7时~次晨7时第一口痰结束。全部痰液留 在容器中送检。 能自理的患者: 1、晨起后用清水漱口 2、以清晨第一口痰为宜 3、深吸气后用力咳出气管深处的痰液 4、不可混入漱口液、唾液、鼻涕 无法咳痰或不合作者:用吸痰法收集(集痰器) 痰标本采集注意事项 1、如查癌细胞,应立即送检或用95%乙醇或用10%甲醛固定后送检 2、不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰液中 3、收集痰液宜在清晨,因此时痰量较多,痰内细菌也较多,提高阳性率。 二、咽拭子标本采集 目标:从咽部和扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离,协助诊断。 操作步骤及要点 操作前准备核对点燃酒精灯,指导患者张口发“啊”音,用长棉签蘸以敏捷、轻柔的动作擦拭两侧腭弓、咽扁桃体上的分泌物,取毕,将试管口及棉塞在酒精灯火焰上消毒后插入棉

(精选)痰标本采集操作标准

一、【目的】 1.评估患者痰液的量、颜色、气味及浓稠度。 2.了解疾病进展和治疗成效。 3.收集患者痰液做细菌培养、细胞学检查,协助诊断。 二、【操作前准备】 1.评估: (1)患者病情、年龄、治疗、排痰情况和配合程度。 (2)评估患者口腔粘膜有无异常。 (3)观察痰液的颜色、性质、量、气味、粘稠度。 (4)解释留痰目的、方法、注意事项。 2.护士准备:洗手、戴帽子、口罩。 3.用物准备:化验单、痰标本容器(留取痰培养标本时需备无菌标本容器 及漱口液)、吸痰用物一套(一次性痰液收集器、无菌手套、生理盐水、 负压吸引器一套)。 三、【操作步骤】 1.双人核对医嘱,打印条码。 2.按医嘱备痰标本容器,容器上贴好条形码。 3.洗手,戴口罩、手套。 4.携用物至患者床旁,再次核对患者姓名、住院号,向病人解释,取得配合。 5.指导或帮助患者按要求排痰: (1)常规痰液标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于清洁容器内。标本不小于1ml,痰液内禁止混入漱口水和 食物残渣。 (2)痰培养标本:晨起清水漱口后,深吸气用力咳出呼吸道深部第二口痰液,置于无菌容器内。 (3)难于自然咳嗽、不合作或人工气道患者痰液采集法:取舒适卧位,先叩击患者背部,戴无菌手套连接集痰器与负压吸引装置,抽吸痰液 2-5ml于集痰器内。 (4)24小时痰标本采集法:在广口瓶内加少量清水患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取,至次晨进食前漱口后最后一口痰结束,全部痰 液留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性状。(须在容器上注明 起止时间) (5)咽试子采集法:患者用清水漱口,取出无菌试子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧鄂弓、咽、扁桃体的 分泌物,避免咽试子触及其他部位;迅速把咽试子插入无菌管内塞紧。 6.脱手套,消毒双手,再次核对,整理床单位,协助患者取舒适体位。 7.观察痰液的色,质,量。 8.处理用物,洗手。 9.按要求将痰标本及时送检。 四、【注意事项】 1.除24小时痰标本外,痰液收集时间宜选择在清晨。 2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检,也可用95%乙醇或10%甲醛固定 后送检。 3.避免在进食后2小时内留取咽拭子标本,以防呕吐,棉签不要触及其他 部位以免影响检查结果。

痰标本采集操作流程及要点说明

痰标本采集操作流程及 要点说明 The manuscript was revised on the evening of 2021

二、粪便培养标本的采集 【护理目标】 操作规范,无污染标本,保持无菌操作。 【操作重点步骤】 1.核对医嘱与患者。 2.评估患者的病情、抗生素使用及排便情况。 3.告知患者/家属粪便标本采集的目的和配合方法。 4.标本采集: 将检验标签贴在容器上,注明科室、床号、姓名、检验项目。屏风遮挡,患者排便于清洁干燥便盆内,护士用消毒棉签取粪便带脓血、黏液的异常部分(成形约5 g,水样便约3 mL)置于培养试管中,放置前后均用酒精灯火焰消毒管口及管塞后及时送检。 如患者无便意,护士戴一次性橡胶手套后,用棉签蘸无菌生理盐水,由肛门插入直肠5~7 cm,沿肠壁轻轻旋转一周,擦取直肠表面的黏液后取出,置于培养试管(或保养液)中,常规消毒管口与管塞后,塞紧瓶塞,立即送检。 切勿粪尿相混,影响阳性检出率。 【结果标准】 1.患者/家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。 2.标本留取方法准确,标本无被污染。 3.标本送检及时。 【操作流程及要点说明】 与粪便常规及潜血标本采集流程图同。

三、寄生虫及虫卵标本的采集 【护理目标】 标本合格,采集后送检及时。 【操作重点步骤】 1.核对医嘱与患者。 2.评估患者的病情、抗生素使用及排便情况。 3.评估留标本时的室内外温度。 4.告知患者/家属粪便标本采集的目的和配合方法。 5.标本采集: 将标本标签贴于容器上,注明科室、床号、姓名。 患者排便于清洁便器后,用棉签在粪便不同部位采取带血或黏液部分、蚕豆大(约5 g)的粪便放人清洁防渗漏容器(水样便可盛于大口清洁容器)中送检。 腹泻患者应取脓、血、黏液等异常部分。 服用驱虫剂、作血吸虫孵化检查时,留取全量粪便送检。 6.采集检查蛲虫的粪便标本: 方法一:在晚上23:00左右,患者感觉肛门周围发痒时,用无菌生理盐水棉签,自肛门周围皱襞处拭取,置于试管内,塞好管口送检。 方法二:嘱患者于睡前或清晨尚未起床前将留取标本用的透明胶布贴于肛门外围处(蛲虫常在午夜或清晨时爬到肛门处产卵)。起床后取下透明胶布粘有虫卵的一面贴于载玻片上或将透明胶布对合(粘有虫卵的一面在内)后立即送检。 7采集检查阿米巴原虫的粪便标本:在收集标本前三天,停服钡剂、油质或含金属的泻剂,以免影响阿米巴原虫卵或胞囊的显露。采集标本时将便盆加温至接近人体的温度,便后连同便盆立即送检。 【结果标准】 1.患者/家属对所做的护理操作和解释表示理解和满意。 2.标本留取方法准确。 3.标本送检及时。 【操作流程及要点说明】 与粪便常规及潜血标本采集流程同。

痰标本采集护理操作流程及评分标准

痰标本采集护理操作流程及评分标准科室姓名考试日期考核人得分流程操作要求分值扣分 职业1 符合护士职业规范要求 2 规范 (1)护士洗手,核对,解释 4 (2)患者一般情况、临床诊断及目前治疗情况 2 2 评估 (3)患者口腔黏膜及咽部情况 2 (4)患者理解能力及配合程度 2 (1)护士:洗手,戴口罩 2 (2)用物:备齐并检查用物,将检验单附联贴于标本容器上 2 3 准备 (3)患者:理解并配合操作 2 (4)环境:整洁、安全 2 (1)携用物至患者床前 2 (2)核对,解释 4 (3)标本采集 常规标本(36分):?晨起协助患者清水漱口;?指导患者深吸气,36 用力咳出气管深处痰液留于清洁容器 24小时痰标本(36分):?在容器上注明留取的起止时间;?指导36 患者将24小时痰液全部留于容器中 4 操作痰培养标本(36分):?协助患者晨起用漱口液和清水先漱口,深36 吸气;?用力咳出气管深处痰液,留于无菌容器中 (4)婴幼儿、昏迷患者咳嗽反射消失,不能将痰液吐出者,协助4 患者取适当体位,由下向上叩击患者背部,应用痰液收集器按吸痰 法收集标本

(5)根据患者需要予以漱口或口腔护理 4 (6)协助患者取舒适卧位,整理床单位 4 (7)核对,标本立即送检 4 5 指导正确指导患者/家属 4 6 处置用物、生活垃圾、医疗废弃物分类正确处理 2 7 洗手流动水洗手 4 8 记录观察患者病情、痰液情况并记录 4 (1)操作规范、熟练、节力 2 (2)痰液标本符合要求,未混入唾液、漱口书及鼻涕 2 9 评价 (3)体现人文关怀 2 (4)患者/家属知晓告知事项,对服务满意 2 10 得分 (准备+评估+操作程序+提问)得分×整体评价得分 痰标本标本采集集护理操作术 【目的】根据医嘱采集患者痰标本,进行临床检验,为诊断和治疗提供依据。【用物准备】治疗盘内放痰盒、无菌集痰器、24小时痰标本、化验单、温水、漱口水,昏迷患者或不合作患者另备吸引器、特殊无菌瓶、吸痰管、胶布、生理盐水、无菌手套,必要时备开口器、压舌板。 【指导内容】 1.告知患者检查目的、采集方法、采集时间。 2.指导患者痰标本采集的方法、注意事项及配合方法。 【注意事项】 1.护士在采集过程中要注意根据检查目的选择正确的容器。 2.患者做痰培养及痰找瘤细胞检查时,应及时送检。 3.痰标本采集应选择在晨起饭前进行,要求留取气管深部的第一口痰液,以保障标本质量。

痰培养标本的采集

痰培养标本的采集 一、痰液的形成:人的气管和支气管的黏液腺体及杯状细胞经常分泌些液体,用以湿润黏膜和粘附空气中的灰尘及微生物。正常人每天分泌100ml。 气管黏膜上皮细胞的纤毛不断的向外扇动将气管的分泌液扇到咽腔,随唾液吞进入胃,通常无咳嗽。 当气管和支气管受到刺激,甚至发炎,则分泌液大量增加,已非上皮细胞纤毛所能扇走,则形成痰液,借以通过咳嗽的动作咳出来。 二、痰标本采集的意义: 1、明确诊断真正致病菌 2、病情追踪 3、指导制定治疗措施 4、抗生素的选择与更换 5、观察疗效和预后判断 6、减少细菌耐药性 三、采集方法 1、自然咳嗽:于清晨醒后用冷开水漱口数次,深吸气后用力咳出深部第一口痰,留于容器中,标本量不少于1ml,尽量避免或减少唾液和鼻咽部分泌物的混入。 2、诱导排痰法:用3%NS(10%NS 3支+灭菌注射用水70ml)5ml雾化吸入约5min后,辅以胸部叩击留取痰液。

3、纤维支气管镜抽吸法:通常用于给患者行纤维支气管镜检查时顺便抽取,包括支气管镜直接吸引,支气管镜肺泡灌溪,防污染样毛刷采集。 四、影响痰培养正确性的因素 1、痰培养污染:口腔定植菌 2、痰标本采集后不能及时送检 3、痰培养采样质量低下 4、痰培养阳性检查率低 5、样本量不足 6、药物对培养的影响 五、痰标本采集的一般原则: 1、尽量在使用抗菌药物前收集标本 2、专用的无菌痰培养杯,避免污染 3、痰标本应足量>1ml 4、收集真正病灶部位的标本,避免周围共生微生物污染 5、采集过程应有医生或护士指导 6、标本在0.5h内送检,不超过2h,保存标本24h内送检 六、痰标本采集流程 准备(护士、查对医嘱项目、用物准备)、评估解释、痰标本采集、整理床单位、洗手记录、及时送检。

痰液标本采集法

痰液标本采集法 操作内容标准分一、操作目的根据医嘱采集痰标本,进行临床检验,为诊断和治疗提供依据。 5 二、评估患者1、询问、了解患者身体状况,评估病人能否自行咳嗽咳痰; 2、观察患者口腔粘膜有无异常和咽部情况,向病人作好解释,取得病人合 作。 三、操作要点65 1、仪表:符合要求 4 2、操作用物:治疗盘、痰液收集器、化验单、一次性无菌手套、温开水、 6 纱布、手电筒、治疗巾、胶水或胶布、弯盘。 3、操作步骤: 1)核对医嘱,准备用物。 4 2)核对患者床号、姓名,评估患者。10 3)洗手、戴口罩。 2 4)携用物至病人床旁,再次核对。 3 5)协助患者清洁口腔,取合适体位。 3 6)取治疗巾置于患者颌下。 2 7)采集痰标本: ①能自行留痰者:戴手套。嘱病人用温开水漱口,观察有无食物残渣,帮 助患者拍背,嘱患者深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液于无菌痰液收 10 集器内,盖好瓶盖。 ②人工辅助呼吸者:戴无菌手套,将痰液收集器连接在负压吸引器上,打 开吸引器开关,将导管插入咽喉深部,留取痰液标本5~10ml后加盖。 8)再次核对,将化验单副联贴于痰液收集器上,注明留取时间。 5 9)用纱布擦净患者口唇,脱手套。 3 10)整理床单位,协助患者取舒适体位。询问患者需要。 3 11) 洗手,取口罩。 3 12)记录。 4 13)按要求将痰标本送检。 3 4、操作速度:完成时间限7分钟以内 四、指导患者1、告知患者检查目的、采集方法、采集时间。 2、指导患者正确留取痰标本,告知患者留取痰液前要先漱口,然后深吸气, 20 用力咳出第一口痰,留于容器中。 3、告知患者不可将唾液,漱口水,鼻涕等混入痰中。

痰标本采集技术操作流程及评分标准

痰标本采集技术操作流程及评分标准科室——姓名——分数——日期—— 项目操作要领评 分 扣分标准 扣 分 仪表2分着装符合要求:仪表端庄,无长指甲, 洗手, 戴口罩 2 一项不符合要求扣1 分 操作前准备8分1.核对医嘱,检验项目与容器是否 相符 2.物品准备齐全,放置合理、有序 治疗车上层用物:化验单和根据检 验项 目;隹备的容器。①痰盒(用于常规 痰标 本);②容器为500ml的清洁广口瓶 (用 于24小时痰标本);③无菌培养盒 (痰培 养标本)、吸痰用物(吸引器、吸痰 管)、 生理盐水、无菌手套、弯盘、漱口 7 7 物品缺一件扣1分 其余一项不符合要求 扣1分 未口述扣1分

溶液、 快速手消毒液 治疗车下层:医用垃圾桶 3.检查并口述所需物品安全、有效 操作步骤70分1.再次核对医嘱与化验单,容器贴 标签,携 用物至床旁,核对患者 2.评估患者:了解患者的病情,观 察口腔和 咽部情况 周围环境应整洁明亮 3.指导患者 ①告知患者检查的目的、采集方法、 采集 时间 ②指导患者正确留取痰标本,告知 患者留 取痰标本前要先漱口,然后深吸气, 用力 咳出深部第一口痰,留于容器中 ③告知患者不可将唾液、漱口水、 鼻涕留 4 5 10 3 3 缺一项扣1分 未评估扣2分 指导内容漏一项扣2分 患者不舒适全扣 未查对扣3分

于痰中· 4.帮助患者取舒适卧位5,再次查对,解释6.采集痰液标本 (1)协助患者用清水漱口3遍。指导患者深 呼吸,有效咳嗽,必要时叩背,让患 者用力咳出深部一口痰液留于痰盒内 (2)24小时标本须在清洁广口瓶上注明 留取痰的起止时间,嘱患者将24小 时痰液全部置于容器内送检 (3)痰培养标本于清晨收集,护士戴口罩, 指导患者将痰液吐于无菌培养盒内, 加盖立即送检 (4)为人工辅助呼吸者吸痰时,戴无菌手10 10 10 10 5 缺一步扣2分 未注明起止时间扣5分 缺一步扣2分 污染扣5分 缺一步扣2分 缺一步扣2分 污染扣5分 未注明时间或送检不 当扣2分

痰标本及血培养

痰液是气管、支气管、肺泡所产生的分泌物。正常情况下此种分泌物甚少,病理情况下如肺部炎症、肺结核、肿瘤时,痰量增加,并有性状、成份改变。唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内,但并非痰的组成部分。 痰液检查的意义:①辅助诊断某些呼吸系统疾病,如哮喘、支气管扩张等;②诊确某些呼吸系统疾病,如肺结核、肺癌、肺吸虫等;③观察疗效和预后,如痰量和性状变化等。 因此,痰液检查很重要,而检查结果的准确性又与痰标本的收集是否正确有着密切的关系。笔者在总结多年实际工作经验的基础上,参考了一些资料,现将采取痰标本的方法与注意事项整理如下: 1 根据检查目的收集容器,常用的容器有无色透明的塑料痰杯和广口玻璃瓶,而不应用纸盒或者有色的玻璃瓶或脏玻璃瓶。容器应洁净、干燥,不应有异物、污水等。如收集24小时痰液时,宜使用装有防腐剂的广口玻璃瓶,如留痰涂片作细菌学检查或留取痰培养时,应用消毒过的容器。容器外壁贴好标签,标明患者科别、床号、姓名等。 2 呼吸系统疾病中传染病较多,如肺结核、流感,主要通过空气、飞沫、尘埃传播。因此,护士应衣帽整洁,认真戴好口罩,做好自身防护,以免发生院内感染。 3 采集标本时要仔细核对申请项目、病员姓名、床号等,并向病人耐心解释检查的目的、重要性及留痰方法,以取得患者的信任和配合,否则是难以采取到合格的标本。 4 采集时间一般以清晨较好,且第一口痰的价值较大,因为经过一夜的蓄积,一般清晨痰量较多,痰内细菌、脱落细胞也较多,因而能提高检查的阳性率。 5 留痰时应嘱患者用清水漱口或刷牙后再用清水漱口,以减少口腔常存菌或杂物污染的机会。否则,有时未培养出真正的致病菌,反培养出杂菌,从而对诊疗产生误导。 6 留痰时嘱患者深吸气,在呼气时用力咳嗽,并嘱其尽量咳出气管深处的痰,护士可协助患者拍击其背部,使附在气管、支气管、肺泡壁的痰液松动、脱落,更易于排出。吐痰时,应尽量防止唾液及鼻咽部分泌物混入,并及时送检。 7 对于痰量少或无痰的患者,可将生理盐水加温至45℃左右后超声雾化吸入,使痰液稀薄、痰量增多而易于排出,常可达目的。 8 支气管扩张症或肺脓肿患者,留痰前可体位引流,根据病变部位采取不同体位。原则是使病肺处于高位,使其引流支气管开口向下,持续约15~30分钟,体位引流

微生物标本采集方法及注意事项

微生物标本采集方法及注意事项 微生物标本采集方法及注意事项 一、粪便标本采集和处理 (1)采集方法 1.自然排便法:取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分,2~3g或1~2m1,盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检; 若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(PH8.6)。 2.直肠拭子法:难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法,将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4~5cm(幼 儿2~3cm),轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出,盛于 无菌试管中或保存液中送检。 (2)注意事项 1.尽可能在抗生素使用之前采集标本。 2.所挑取的粪便不应接触其他部位(如便盆),粪便样本中不应混入尿液及其他异物,采集过程应尽量无菌操作。 3.不应用厕纸收集粪便。 4.对同一病人在同一天不宜重复送检。 5.宜在感染急性期(通常是5d-7d内)采集标本。 6.下列腹泻患者应连续3d送检标本 --社区获得性腹泻(入院前或72h内出现症状) --医院腹泻(入院72h后出现症状),且至少有下列情况之一:大于65岁并伴有内科疾病、HIV感染、粒缺(中性粒细胞<0.5)及疑似 院内暴发。 --怀疑肠道感染的非腹泻性表现。

7.肠炎和发热病人建议做血培养。 8.伤寒沙门菌感染时骨髓培养高出血培养。 9新鲜粪便标本应在采集后尽快送检,不应超过2h。 (3)标本拒收 干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便、明显污染的粪便、一日内重复送检的标本,应设法与临床医师联系,可要求重新留取 标本,并做好记录,在没有与医师沟通之前标本不应丢弃,仍按实 验室标本保存原则存放。 二、尿液标本采集和处理 (1)采集方法 1.中段尿采集法:清晨起床后用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用清水冲洗尿道口周围,然后排尿弃去前段尿液,收集中段尿5~ 10ml盛于带盖的无菌容器内立即送检,采集后于0.5h内进行接种。 2.耻骨上膀胱穿刺法:评估膀胱内细菌感染的“金标准”。培养结果与临床病情矛盾时可采用此法,一般较少应用。 3.导尿法:采用无菌技术用注射器经导尿管抽取尿液,导取 10~15ml尿液,置无菌容器中送检,尿液标本不能通过收集袋引流 管口流出的方式采集。长期留置导尿管的患者进行常规尿培养意义 不大,这些患者通常会培养出大量定植菌。 (2)注意事项 正常人的尿液是无菌的,除外尿道有正常菌群外,还有条件致病菌,而这些细菌又是尿路感染中常见的致病菌,故应该注意无菌采集。 (3)标本拒收 1.标本取自导尿患者尿袋。 2.标本送检时容器有渗漏。

痰培养标本采集与运送标准操作规程

痰培养标本采集与运送标准操作规程 目的:正确采集痰培养标本并运送内容: 一.标本来源:痰/气管抽吸物(TA)、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。 二.容器:洁净、广口、无菌、加盖、密封、防渗漏。不含防腐剂和抑菌剂,一次性使用。 三. 采集方法清晨痰量多,含菌量亦大,嘱病人先用洁口液,再用清水漱口,以除去口腔中细菌,深吸气后用力咳出1— 2 口痰于培养皿或瓶中,痰量极少可用45C 10% 氯化钠溶液雾化吸入导痰。 建立人工气道,如气管切开或气管插管者,戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管,一头缓慢插入气管致隆突(叶支气管)水平,一头接电动吸引器,螺旋式抽吸,吸引痰液。 四.注意事项 1 .以清晨第二口痰为佳。防止唾液及上呼吸道分泌物污染。2.在抗生素使用 前采集价值高。 3. 连续采集3?4次,采集间隔时间>24h。 五.结果判断 1 . 正常人体的下呼吸道是无菌的,上呼吸道有正常菌群栖居。 2. 合格痰的涂片镜检鳞状上皮细胞〈1 0个/低倍视野,白细胞〉25个/低倍视野,或两者比例小于1: 2.5。 3. 连续两次分离出相同的病原菌可认为是感染病原菌。 4. 经纤维支气管镜和人工气道吸引采集分泌物分离出的细菌可认为是感染病原菌。 5. 痰液与血液或胸水中分离到相同病原体,有诊断意义。 6. 痰培养常见病原菌为肺炎链球菌、乙型溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌、厌氧性球菌、结核分枝杆菌等。 7. 痰中的病原菌不少属于机会致病菌,应根据病情判断。 六.临床微生物标本送检的注意事项 1. 标本及时送检避免干燥,不能及时送检者可暂存4C冰箱。如在室温下放置

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