检验标本的采集与运送规范（护理）
一、血液常规采集与运送规范
（一）、常用真空采血管的种类
1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、
血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。
2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为
1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。
3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定
的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。
4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐，
适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。
（二）多管采样时采集次序
多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。
多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。
（三）各种血标本的采集及注意事项
1、血常规检验标本
一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。
采血注意事项：
1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。
2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
采血后应尽快送检（为保证结果准确需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2h WBC形态会发生改变）。
2、凝血检测（PT、APTT 、TT 、FBG ）标本
静脉采集抗凝血（最好真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂：全血= 0.2：1.8 ）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝绿色帽）。采血注意事项：
1)空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；
2)采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT
明显缩短）；
3)应单独1管血,必须准确采血至刻度线2ml；
4)血后应立即上下颠倒混匀5～10次，不可有凝块；
5)采血后应尽快送检（必须2h内检测）。
3、血型与血交叉标本
用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O)1.5-2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血（EDTA抗凝管有2ml和5ml两种规格）。
采血注意事项：
1)按抗凝管刻度准确采静脉血,采血量分别为2ml（血型）和5ml（交叉配血）；
2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次），不可有凝块，且不可用强力振荡，
以免造成溶血。最好血型与血交叉各采1管血，便于标本保存。
4、红细胞沉降率（血沉，ESR）检验标本
静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血,黑色帽）。
注意事项：
1)单独采1管血，按抗凝管刻度准确采血至1.6ml（抗凝剂：全血= 0.32 ：
1.28）；
2)采血后立即上下颠倒混合5～10次,不可用强力振荡；
3)采血后应尽快送检（为保证结果准确,必须2h内检测）。
5、临床生化/免疫检验标本
临床生化/免疫检验多用非抗凝血标本，应使用真空负压采血管。临床生化
检验血标本采集主要注意事项是：
1)多项临床生化/免疫检验一般各采1管血，生化检验1管，免疫检验1管；
2)采血量视检查项目多少不同而异，单管通常为4.0～5.0ml；
（四）真空采血操作顺序
1、使用扎脉带，嘱病人握紧拳头;
2、皮肤消毒后将采血针刺入静脉;
3、见回血后，用穿刺针穿真空管胶塞，血液自动流入试管;
4、血液一流入管中，便解开扎脉带;
5、采血完毕后，先拔出采血针，待滴血停止后再拔出试管端穿刺针;
6、如需多管血样，待第一管采集完，将试管端穿刺针拔出刺入另一真空管即可。
7、如管内有抗凝剂，需立即颠倒混匀5～10次，防止血液凝固，其余各管依次
按本要求操作。
（五）真空采血注意事项
1、胶塞穿刺针上的乳胶套能防止滴血，采血时不能取下;
2、穿刺针需从真空管胶塞中心垂直穿刺;
3、多管采血时，枸橼酸钠管需第一管采血;
4、采血针软管的容积为0.4ml，采血时可酌情提前拔出采血针;
5、抗凝管采血后需及时上下颠倒5～10次，颠倒动作应轻缓;
6、采血针刺入静脉后，如穿破静脉，回血撤回，此时不必惊慌，可将采血针顺
原路缓慢退回，见回血即可。
（六）抽血时应注意的事项
1、要注意选择部位：选择易见易触的大血管采血；
2、病人的姿势要合适；
3、采血前应向患者耐心解释，以消除不必要的疑虑和恐惧；
4、为了避免淤血和浓缩，压脉带压迫时间不可过长，最好不超过１分钟；
5、抽完血液后，必须先松开止血带，松开拳，再拔出针头，以免血液流到皮肤
上；
6、部分肥胖或全身浮肿患者，浅在静脉难于发现或触摸不到时，可根据解剖部
位进行穿刺；
7、老年人因皮下脂肪少，皮肤松驰，血管易于滑动，针头不易刺入，可采用先
刺入皮下，再刺入血管的方法。
（七）抽血时常遇到的障碍
1、注射器或采血针漏气；
2、针头太细，抽血不畅，时间长，致血液容易凝固在针头中；
3、针头位置未固定，抽血中途脱出血管；
4、针头刺入皮下太深，刺入血管下面的组织，常因左手拉皮不够紧，血管未
固定之故；
5、针头斜面一半刺入血管腔，一半在皮下，虽可抽出血但不顺畅，有时可形
成血肿；
6、血管清析，穿刺亦正常，但就是抽不出血，常见于局部抽血或注射次数太
多，血管壁增厚腔变小所致；
7、标本溶血（原因很多）。
（八）血液标本常见溶血原因
1、注射器、针头或容器不干燥；
2、压脉带捆扎时间太久，淤血过久；
3、穿刺不畅，损伤组织过多；
4、抽血速度太慢或太快；
5、血液注入容器时未取下针头；
6、抗凝血混合时，振荡力量过大；
7、血液未完全凝固前进行振荡；
8、血液存放时间过长；
9、静脉采血时，为增加血流而挤压采血部位；
10、血液标本在送检验或运输过程中，挤压或振动过大等。
（九）常用血液标本的采集量及送检时间
项目采血量送检时间完成检验时间
血常规分析等２ml 及时送检2小时内凝血试验２ml 及时送检4小时内
血液流变学５ml 及时送检4小时内
血沉 1.6ml 立即送检2小时内
临床化学标本１
（含肝肾功、血脂4-5ml 及时送检4小时内
肿瘤因子等）
临床化学标本２
（含血钾、血糖、4-5ml 立即送检2小时内
心肌酶等）
免疫学标本4-5ml 及时送检4小时内
（十）特殊血液标本的采集与送检
1、血气标本的采集与送检
血气标本可采动脉血、静脉血、混合静脉血及动脉化毛细血管血，但因后三者不能真实地反映患者的血气水平，故一般推荐动脉采血法。
采血部位：股动脉、肱动脉、桡动脉等，一般采肱动脉或桡动脉。
应用器材：注射器（0.5ml玻璃或塑料均可）、针塞（用橡皮或木塞，使针尖密闭）、冰水（作冷却标本用，若30分钟内送检则不需要）、肝素或肝素钠（作抗凝用）、利多卡因（局部麻醉用）、其它消毒用品。
采血前的准备：
1)用注射器吸取0.3ml抗凝剂（肝素或肝素钠），浸润注射器内壁后，除残留于
死腔部分外，尽量排出抗凝剂．
2)必要时在采血部位作局部麻醉，但注药不能过多，否则不易触及搏动．
采血（股动脉）：
1)腹股沟内侧能触及股动脉搏动处用皮肤常规消毒．
2)穿剌者戴无菌手套，铺无菌洞巾，并将股动脉固定于左手中指和食指之间．右
手持注射器，其针尖斜面向上，以垂直或与股动脉45°角方向进行穿剌．以右手指固定穿剌针的方向及深度，严防针头或穿剌移动，左手拉动筒栓至所需血液量．迅速拔出针头，并用无菌纱布压迫针眼片该，以防出血．
3)如果注射器内进入少量空气，应尽快将注射器针头垂直向上排出气泡，并将
针头剌入针塞，及时送检．
（十一）、葡萄糖耐量试验的标本的采集与运送
1、患者准备：
1)试验前应禁食12小时；
2)试验前三天，禁服影响试验的药物，停用胰岛素治疗；
3)整个试验过程中，患者不得喝茶、喝咖啡、抽烟、进食。
2、标本采集：
1)清晨空腹抽血2ml作空腹血糖测定；
2)将75g无水葡萄糖溶于200-300ml水中，５分钟内饮完，对儿童可按1.75g /
公斤体重计算葡萄糖用量；
3)服糖后准确于30min、1h、2h和3h各取静脉血２ml立即送检，测定血糖浓
度；
4)将各标本测定结果，绘成曲线与正常曲线比较
二、尿液标本的采集与运送
（一）尿液标本的种类
1、晨尿标本：留取清晨第一次尿，经长时间睡眠后，尿液趋向于浓缩和酸化，
各种有型成份相对集中，且不受饮食、药物、运动等的影响，故最适合于尿常规检查。特别适合于住院患者和肾脏患者及泌尿系统疾病的动态观察和早期妊娠试验、本周氏蛋白测定等。
2、随意尿标本：留取随时自然排尿标本，适用于尿液一般定性检查，为门诊急
诊患者所常用。易受饮食、药物、运动等的影响，能使低浓度或临界浓度的病理性物质和有型成份漏检，并可出现饮食性糖尿。
3、１２小时尿标本：患者可正常进食，晚上８点排尿，弃去。以后１２小时尿
液全部收集于一洁净容器内，常用于细胞、管型等有型成份的计数，如Addis 计数等（夏季应先加入1ml福尔马林于容器内防腐）。
4、２４小时尿标本：患者早晨８点排尿弃去，以后２４小时（包括次晨８时）
的全部尿液收集于一个带盖的洁净容器内，应在容器内加入适量合适的防腐剂（根据检验目的不同选择不同的防腐剂）。临床上常用于检测体内代谢产物，如肌酐、蛋白质、激素、电解质、17-羟、17-酮以及用于尿浓缩沉渣或检查培养结核菌等。
5、培养用尿标本：用于肾或尿路感染病人的病原微生物培养鉴定以及药敏试验
的尿液标本．要求避免污染，常采作：中段尿标本、导尿标本或耻骨上膀胱穿剌获得的尿标本。
（二）专用尿液标本的采集
1、体位性蛋白尿试验标本的收集：
在夜间入睡前先令患者排尿，使膀胱排空，此次尿液不要，次日起床后立即排尿，并将标本留检。再令患者站立及走动，两小时后再次排尿留检。若第一次标本蛋白呈阴性而第二次为阳性，则可确诊。
2、尿三杯试验：
取尿杯３个，标明1,2,3。嘱患者连续排尿，分别收集于３个尿杯中。第１杯和第３杯各收集10ml 即可，大部分尿留在第２杯中。尿要一次排出，中间不可间断。标本收集完后立即3送检。
（三）尿标本的送检及保存
1、尿标本除特殊规定外，一般需留取10ml左右．
2、尿标本收集后应及时送检，以免有型成分破坏和有机物质分解．
3、常用防腐剂：
甲醛（每100ml 尿加400g/L的甲醛0.5ml)：尿液有型成分，如３小时尿沉渣、１２小时尿沉渣（Addis计数）等。
甲苯（每100ml 尿加甲苯0.5ml) ：尿糖、尿蛋白测定。
盐酸（每1Ｌ尿加浓盐酸１０ml)：尿钙、17-羟、17-酮、儿茶酚胺。（四）尿液常规检查标本采集注意事项
1、新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；
2、尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；
3、避免混有经血、白带、精液和粪便；
4、尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿20～50ml（须记取24h尿液总量）。（四）尿常规检查标本的具体采集方法
1、尿常规
1)使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留
取新鲜尿液约20ml送检。
2)尿标本应避免经血、白带、粪便等混入。
3)标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。
2、24小时尿标本
1)准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000~5000mL。
2)病人于晨8时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿
液均留于容器中，包括次日晨8时所排最后一次尿。
3)测量尿液总量(ml)并记录，将全部尿液充分混匀后，取出20～50m1，置于清
洁干燥有盖容器中立即送检。
4)若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。
三、粪便标本的采集与送检
（一）患者的准备
1、患者应于治疗之前留取标本。
2、留作隐血试验的标本应于３日前禁食肉类及动物性食物，并禁服铁剂及维生
素Ｃ等药物。
（二）标本的采集与送检
1、自然排便采集法：自然排便后，挑取有脓血、粘液部分粪便2-3g，若稀水样
则应取约2ml，于适当容器中送检。若作虫卵检查则不少于20g。阿米巴或其它原虫滋养体检查，标本必须新鲜，立即送检，冬天尚需采取保温措施。
2、指肠指诊法：可由直肠指诊时所用手套取得粪便，于适当容器中尽快送检。
3、粪便掏管采集法：如不易获得粪便时或排便困难的患者及幼儿，可用采便掏
管采集。将清洁无菌干燥的玻璃掏管盲端小心插入肛门3cm-5cm深处，并转动掏管，或来回拉动掏管数次。抽出掏管，此时掏管的圆孔内室有粪便。（三）注意事顶
1、供各种检查用的粪便标本务求新鲜且不可混入尿液、消毒液及污水等，以免
有型成分破坏，病菌死亡和污染腐生性原虫
2、灌肠及服油类泻剂后的粪便常因过稀及混有油滴等影响检验结果，不适于作
检查标本。
3、标本采集后应于1-2小时内检查完毕，否则可因pH及消化酶等影响导致有
型成分破坏分解。
四、痰液标本的采集与送检
（一）自然咯痰法：
1、要求患者清晨刷牙漱中后，用力咯出气管深处的第一口痰于清洁干燥、无
菌的容器内，及时送检。主要用于一般常规检验、一般细菌检验及结核菌检验。
2、对于无痰或者少痰患者，可用45 0C加温的100g/L NaCl 水溶液雾化吸入或
改变体位，以使痰液易于咯出；对于小儿可用消毒棉拭剌激喉部引起咳嗽反射，用棉拭采集标本。
3、如用漂浮或浓集法查结核菌时需留取12-24小时痰液送检。
（二）上呼吸道标本：采用无菌棉拭子。
（三）气管洗涤液：取8 ～9 号消毒导管，从鼻腔插入气管内，缓慢注入灭菌蒸馏水 5 ml ，取出导管。留取病人在 3 小时内咳出的痰液，放入灭菌瓶内送检。
五、微生物标本的采集与送检
（一）微生物标本采集与送检原则
1、收集真正病灶处的标本，且不得受到邻近区域微生物的污染。例如作咽喉
溃疡的涂片与培养时，须小心地从溃疡处采集标本，不在受到口腔分泌物的污染。
2、采用灭菌地的器皿收集标本，并装于无菌容器内，标本处理后容器应尽
快灭菌。
3、收集“足量”的标本，譬如作脓液检查，最好收集数毫升，若用棉花拭
子收集时，最好多采取几根拭子。
4、不要直接以棉拭子运送标本到检验科。因拭子所能采集的标本量有限，
极易干燥，所以需将拭子装于特制的运送培养基中。
5、尽可能在患者服用抗生素或伤口治疗之前收集标本。若患者已服抗生
素，采集标本者应将其记录于检验申请单上。
6、不要在标本中添加任何防腐剂，以免干扰病原菌的分离。
7、尽可能取原标本作直接涂片。
8、装标本的容器上须贴上标签，包括患者姓名、住院号、标本来源、收集
时间以及有关的诊断及用药等。
9、收集标本时，须小心避免他人受到感染。
10、即刻将标本送至检验室，不可拖延。标本收集时间应加以准确记录，使
检验人员接种时能判断标本是否延误。
（二）微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项
1、标本采集
1)申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、
采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；
2)尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率；
3)标本采集应严格执行无菌操作；
4)咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；
5)痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；
6)采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。
2、标本运送
1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；
2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。
3、标本验收
1）实验室只能接受和处理合格标本；
2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。
（三）微生物学检验标本采集和处理
1、尿液标本采集和处理
通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；尿液微生物学检验标本采集方法如下。
1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌容器中留取中段尿液5～10ml。
2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送
检）
3）集尿法：怀疑结核分枝杆菌感染时，于清洁盛器中留取24h尿液，取其沉渣10～15ml送检；
2、粪便标本采集和处理
1）采集时间：
①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；
②伤寒患者于发病2天以后采集粪便；
③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。
2) 采集方法：
①自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；
②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。
3、痰及下呼吸道标本采集和处理
1）自然咳痰法：
清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用洁口液，再用清水漱口，以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，痰量极少可用45℃10%氯化钠溶液雾化吸入导痰。
2）建立人工气道，如气管切开或气管插管者，戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管，一头缓慢插入气管致隆突（叶支气管）水平，一头接电动吸引器，螺旋式抽吸，吸引痰液。
注意事项：
以清晨第二口痰为佳；防止唾液及上呼吸道分泌物污染；在抗生素使用前采集价值高。连续采集3～4次,采集间隔时间>24h。
4、血培养标本采集与运送
1）采集方法
a)培养瓶消毒程序：消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
b)皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm
以上，待消毒液挥发干燥后采血。
c)静脉穿刺和培养瓶接种程序：用真空采血针无菌穿刺，采血直接注入血培
养瓶，先采血10ml于厌氧培养瓶，再采血10ml于需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固或严格按厂商推荐的方法采血。
2）注意事项
a)血液标本采集后应立即送检，不能及时送检者应置室温暂存，勿放冰箱。检
验单需注明抗菌药物（特别是磺胺、青霉素）使用情况，采集时间和部位（如左臂等），可疑的诊断。
b)采血部位：通常为肘静脉，疑为细菌心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，
切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助区分是病原菌还是污染菌。在不同部位取血，2次分离出同样菌种才能确定是病原菌。不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被固有菌群污染。
c)采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热
前半个小时为宜或在停用抗生素24小时后。
d)采血次数及间隔：对需马上做抗菌治疗的急性发热性疾病（如脑膜炎、细菌
性肺炎）或需紧急手术的患者，如（急性骨髓炎、化脓性关节炎等），应立即从两臂分别取2份标本。对感染性心内膜炎患者，在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养两次。对发热原因不明者两次抽血间隔60min；必要时于24~48小时后再抽血2次。因为1次血培养不足以说明问题，且会遗漏阳性结果。国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%，2次检出90%，3次检出99%。国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%，18家医院2次以上血培养阳性率14.8%
e)采血量：成人菌血症或败血症的血液中含菌量较少，平均1~3ml血液中仅有
1个细菌。所以采血量一定要足够。以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗生素、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次每培养瓶采血10ml（含100ml培养基），婴幼儿每次每培养瓶采血5ml （含50ml培养基）
f)将血注入培养基前不需要更换针头，用无菌干棉球按压瓶塞，并尽可能避免
血培养瓶橡皮塞上的残留消毒液影响结果。
g)每日每例采血至少两次，间隔0.5～1h。
5、脑脊液培养标本
1）采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。
2）采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌小瓶中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。
3）注意事项：
a)用于细菌检测：收集脑脊液后15分钟内送检，脑脊液不可放冰箱保存。
b)用于病毒检测：脑脊液标本应放置冰块，在4℃15分钟内送检。
c)行腰穿过程中，严格无菌操作。
6、穿刺液培养标本
1) 采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。
2) 采集方法：
①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；
②标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；
③标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；
④可在容器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml 肝素可抗凝5ml标本）
7、胃液及胆汁培养标本
抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。
8、化脓和创伤标本
1）标本采集
a)开放性感染：标本采集前清创创口，然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深部分
泌物于无菌管中立即送检。
b)闭锁性脓肿：无菌操作，穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。
2）注意事项
a)用药前采集标本，样本申请时，应该详细注明样本内容物，采集部位等。
b)如不能立即送检标本，放4℃保存，但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本
除外。
9、泌尿生殖道培养标本
1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。
2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。
3）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列腺液送检。
4）精液：受检者应5d未排精，清洗尿道口后手淫或体外排精法，射精于无菌容器内送检。
5）溃疡分泌物：灭菌生理盐水溶液清洗患处，用无菌拭子取其边缘或基底部的分泌物，置无菌试管中送检。
10、烧伤感染培养标本
烧伤12h后用无菌棉拭子无菌操做采集标本；要注意从多个创面取样；烧伤严重感染时易发生败血症，创面取样的同时应该采集血样送做血培养（最好同时做需氧菌培养和厌氧菌培养）。
11、厌氧菌感染培养标本
1）标本采集
①要注意避免标本污染和与空气接触，严格遵守无菌操作；
②用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽出脓液；
③抽出液体标本后，要尽快排除注射器内的空气。
2）标本运送
①标本采集后不得冰箱储存，必须尽快（半小时内）送实验室；
②运送方法：
a注射器运送（标本抽取后尽快排除空气）或接种到专门的运送培养基中直接运送；
b含运送培养基的无氧小瓶运送；
c厌氧罐运送（组织块）；
d 大量液体标本运送时要装满标本瓶并立即驱氧，加盖运送；
e一般不采用棉拭子法。
12、真菌感染培养标本
1）浅部真菌感染标本采集
①皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检；皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织；
②指（趾）指甲：消毒指（趾）指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6片，置无菌容器内送检；
③毛发：采集根部断折处，至少5～6根送检。
2）深部真菌感染标本采集
①血液：无菌采血8～10ml，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检；如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8～9h；
②脑脊液：采样量不少于3～5ml，分别注入两支无菌试管中送检（一管做真菌培养和墨汁染色；一管测隐球菌抗原和其他培养）；③呼吸道及泌尿生殖道深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。
封面
前言 医学检验的目的就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室依据。为确保实验结果的及时、准确、可靠，就必须保证分析前标本的质量，这就要求广大医护工作者及就诊患者了解各类标本采集、运输等方面的知识和要求。为此，医学检验科、护理部、感染管理科共同制订《检验标本采集运输指南》手册，供全院医务人员使用，以确保实验室分析前的标本质量，并真诚希望广大医务人员在使用本手册的过程中多提宝贵意见，以利于进一步的提高和完善。 宾阳县人民医院 检验科、护理部、感染管理科 2016年8月4日
目录 第一部分检验科各检测项目标本采集要求 (4) 第二部分检验标本采集运输要求 (5) 第三部分患者采血前的准备 (6) 第四部分检验标本采集运输作业指导书 (6) 一、静脉血液采集运输作业指导书 (6) 二、末梢血采集运输作业指导书 (8) 三、动脉血液采集运输作业指导书 (9) 四、尿液标本采集运输作业指导书 (10) 五、粪便标本采集运输作业指导书 (11) 六、前列腺液采集运输作业指导书 (11) 七、精液采集运输作业指导书 (12) 八、脑脊液标本采集运输作业指导书 (13) 九、浆膜腔积液（胸水）采集运输作业指导书 (14) 十、浆膜腔积液（腹水）采集运输作业指导书 (15) 十一、骨髓采集运输作业指导书 (16) 十二、临床微生物标本采集运输作业指导书 (18) 第五部分标本采集运输流程 (20) 第六部分检验标本的接收、拒收标准及流程 (21) 1 . 检验标本的接收标准: (21) 2 . 不合格标本拒收标准: (21) 3 . 检验标本接收流程: (22) 4 . 不合格标本拒收流程: (23)
大庆市第二医院检验标本采集手册 （第一版） 主编：刘然李惠 编订日期：
使用说明 接着《临床实验室管理办法》的相关标准及要求，大庆第二医院检验科对检验标本的采集运送及处理等相关内容整理编辑，出版2015年（第一版）《大庆市第二医院检验标本采集手册》，用于指导临床护士、医生、病人正确采集、留取、运送及处理检验标本，实现检验标本分析前的质量控制以确保检验结果的准确。该手册内容包括各种检验标本容器说明、追加检验项目原则、“危急值”报告原则及常见问题指导说明。同时提供了检验科目前开展的检验项目于等相关信息，供临床医生、护士、护理员及病人参考。
目录 第一章：分析前质量控制-------------------------------------------------4 第二章：各类才学容器使用说明---------------------------------------5 第三章：检验标本采集作业程序---------------------------------------7 1、静脉采血程序 2、一般尿液标本 3、一般粪便标本 4、脑脊液标本的采集 5、胸腔液、心包膜液及腹腔液等检验标本的采集 6、关节液采集 7、精液标本的采集 8、痰液标本采集 9、各类细菌检验标本采集 10、骨髓标本采集 第四章：检验标本的包装、运送及核对----------------------------17 1、检验标本的正确包装 2、检验标本运送实效和保存条件 3、各单位检验标本运送作业流程 4、检验标本拒收退检原则 5、假阳性结果 6、追加检验项目原则 第五章：主动通知项目---------------------------------------------------21 1、“危急值”主动报告流程 2、特殊检验项目主动报告 3、急诊报告时限及项目 第六章：检验项目参考值及临床意义-------------------------------24 生化检测项目 免疫检测项目 临检检测项目 微生物检测项目
检验标本的采集运输指南 一、医生申请 ?遵循有效性、时效性、经济性的原则正确填写相应的检验申请单?申请单内容包括：姓名、性别、年龄、住院号、科别、床号、临床诊断、标本种类、申请医师姓名、日期、检验项目 ?临床医生正确填写申请单，字迹清晰 二、患者采集前准备 ?患者状态：一般要求处于安静、休息状态，晨起是大部分标本采集的最佳时间。 ?饮食：多数试验要求采血前禁食8-12h ，饮食中的不同成分可直接影响检验结果。餐后血液中ALT、GLU、BUN、Na+等均可升高 ?药物：化学影响和物理影响 三、标本采集 1血液标本的采集注意事项 ?尽量采集早晨7-9时的空腹血。 ?采血管上正确标明患者的姓名、住院号、科别等信息，切勿混淆。?采静脉血避免止血带结扎过久，结扎时间过久可导致某些指标产生变化，如血浆总蛋白、胆固醇、胆红素等
?避免溶血，溶血影响多项检测项目的结果，会使血清中钾、ALT、AST、LDH等升高，钠、氯、钙等降低。 ?要特别注意不能在输液的同侧采血，更应杜绝在输液管内采血。?输注脂肪乳，6小时内影响检验结果。 ?采血后立即颠倒混匀，避免剧烈震荡。 2、常规尿液标本的采集 ?晨尿：即清晨第一次尿，适合住院病人，较浓缩、条件恒定，能真实地反映肾脏病情况。 ?随机尿：适于门诊、急诊病人，但受多种因素的影响，有形成分的浓度较低。 ?24h尿：适于代谢产物24h定量测定，如尿蛋白、钠、钾、等。应准确的收集24h尿液送检，根据检验目的加入适当防腐剂。 尿液标本的采集、送检注意事项 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息 ?收集尿标本的容器必须清洁、干燥，防止混入异物 ?尿常规与一般定性检查留取量至少要在尿标本收集管的中间刻度线以上。 ?尿常规标本应尽量在1小时内送检；尿液红细胞形态标本尽量在2小时内送检；其它项目标本应在留取后尽快送检，不能超过4小时。 3、粪便标本的采集 ?在容器上标明患者姓名、住院号等信息
检验标本采集规范 一、常规标本采集规范 （一）静脉血标本采集规范 1．真空采血标本对应真空管 真空管项目备注 血培养瓶血培养 儿童1-2ml 成人8-10ml 枸橼酸抗凝管（1：9抗凝）（蓝帽） 凝血全项 （PT、APTT、FIB、TT、D-D、FDP、 AT3） 标本采集2ml （不能多不能少） 枸橼酸抗凝管 （1：4）抗凝（黑色）血沉 至刻度线 （不能多不能少） 促凝剂管（黄帽）生化全项、肝功能、肾功能、血糖、血 脂、心肌酶、电解质、RF、ASO、血 清铁、血清同型半胱氨酸、淀粉酶 标本采集量4-5ml 促凝剂管 （黄帽） 肌钙蛋白I、人绒毛膜促性腺激素标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） 乙肝三系、病毒四项标本采集量4-5ml 无添加剂管甲状腺激素五项，雌激素五项，甲胎蛋标本采集量4-5ml
（红帽）白、癌胚抗原、CA125、CA19-9、CA15-3 总前列腺特异性抗原 无添加剂管 （红帽） 结核抗体、肺炎支原体标本采集量4-5ml 无添加剂管 （红帽） PCR 标本采集量4-5ml EDTA-2K 抗凝管（红帽）血常规、血型、CRP 标本采集量2ml 可以使用同一管 血 网织红细胞计数 外周血涂片 糖化血红蛋白标本采集量2ml 交叉配血标本采集量2ml 2．理想的采集血标本的时间是早晨7∶00～8∶00。 3．采血部位和数量成人首选肘部血管：正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 4．采血顺序 为血培养管→凝血项目管（蓝帽）→血沉管（黑帽）→促凝剂管（黄帽）→无添加剂管（红帽）→EDTA管（紫帽） 5．在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，血培养优先考虑需氧瓶，其他管应首先考虑凝血（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因为这2种标本对血量要求最严格，且二者抗凝剂均为枸橼酸钠。 6．检验申请条码贴在采血管上时，请注意不要将采血管完全包裹，应留出空白，以便观察液面高和血液状态，若未打印条码，请将采血管上的
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。
7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 （2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。
检验标本的正确采集及注意事项 血液标本采集的注意事项 注意要将患者姓名、床号、住院号标记清楚 实行一人、一针、一管、一带、一垫，防止交叉感染。 压脉带捆扎时间不能过长、不能超过2分钟、见到回血应立即松开止血带。 需要重新采血时，在止血带束缚时间太长的情况下，应当在对侧手臂重新采血。 抽完后，应将真空管轻轻颠倒混匀。 临床化学检查为什么需要早晨采空腹血？ 正常人血液中的部分生物化学成分的含量，除因年龄、性别等的影响外，还可受饮食、运动、精神、用药等因素的影响而使血液成分发生变化。而晚饭后，进餐的食物经十几个小时消化，基础状态平稳，所以测**果较为真实可靠如果在进食后采血，因受所进食物成分的影响，血液中会出现血糖、钾、钠、氯、钙磷等浓度升高，对各种酶类、脂类的实验结果均有影响，所以，有些临床化验检查常常需要早晨采取空腹血为宜。 怎样才算空腹 具体要求是：抽血的前一天晚上，病人保持平时的生活习惯，正常饮食；饭菜宜清淡，不要喝酒；饭后不喝咖啡、浓茶；休息好。第二天早晨起来后，不吃早餐，少喝或不喝水，不做早锻炼运动，平静地到医院等候采血，这样的血标本才是反映真实情况的好标本。 有些病人的甘油三酯特别高，以至于血清像牛奶一样，影响了其他血酯项目化验结果的准确性。这时，医生会要求他们吃几天素食，不吃肥肉，让血清清一点，再做空腹抽血化验。 输液病人应怎样采血？ 这是临床常见的采血问题。输液病人在不能停输的情况下静脉采血一定要注意远端原则。也就是说要在对侧手静脉采血。如果两只手都在输液，可以采脚端。实在不行也可以在滴注上流采血。由于指尖血是末梢血，没什么影响。由于临床常用手部输液，而静脉是从远端向心脏回流，所以同侧的肘静脉总是滴注的下流，因此同侧采血都有问题。至于影响的大小与输注液体输注方式以及待测项目有关。 尿液标本的采集 尿液标本的种类
临床标本采集与运送规范 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤，要求规范采集并正确送检，特制定本规范。一、尿液标本的采集规范 (一)尿常规检查标本 1、使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液约20ml送检。 2、尿标本应避免经血、白带、类使等混入。 3、标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖。 (二)尿培养标本 1.需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 2.病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，弃前段尿，用无 菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 3.患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 4.尿中应加入防腐剂。 (三) 24小时尿标本 1、准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000-5000mL。 2、病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次尿。 3、测量尿液总量(mI)并记录，将全部尿液充分混均后，取出20- 50m1，
置于清洁干燥有盖容器中立即总检。 4、若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 二、血液标本采集规范 1、理想的采集血标本的时间是早晨7: 00~8 : 00。 2、采集血液标本的真空采血管与容器注射器应干燥，针头不能过细， 3、血培养标本应在发热初期或发热高峰期采血。一般要求选择在应用抗生素治疗前采血，对已用药而不能终止的患者，也应在下次用药之前采血。 4.采血部位和数量成人首选肘部血管:正中静脉、贵要静脉、头静脉等，婴幼儿可采用大隐静脉、颈外静脉、股静脉等。 5、禁止在静脉输液的同侧肢体采集血标本。 6、采集血液标本时应根据检验日的及要求，准确采集标本量。 7、分装血液标本时应取下针头，将血液沿试管壁缓慢推入试管或其他相应容器。 8、对于抗凝的标本，要温和地使血液与抗凝剂混匀，防止剧烈摇动使细胞损伤。 9、标本送检:血液标本采集后应及时送检，血气分析应在30min内检测，慢则会因为全血中RBC的代谢，不断地耗02产生CO2，致使pHPO2降低PCO2 升高，而影响结果的准确性 血标本采集后应尽快送检，时问最好不超过2 h ①建立标本传送系统，加强对送检人员的培训、教育及监督。
检验标本的采集与运送规范（护理） 一、血液常规采集与运送规范 （一）、常用真空采血管的种类 1、促凝管／分离胶促凝管（橙色／黄色）：用于医学检验中生化学、免疫学、 血清学、各种病毒检测及血库检查血液标本的采集与盛装。管壁经特殊处理，防止挂壁及溶血现象。 2、枸橼酸钠１:９（蓝色）管：用于凝血机制等检查，按抗凝剂与血样体积比为 1：9设定的真空采血管，具有准确的血液量与抗凝剂总量，配比精度较高。 3、肝素钠／锂（绿色／墨绿色）管：用于急诊生化、血液流变学、全血铅测定 的血液标本采集。对血液成份干扰少，不影响红细胞体积，不引起溶血。具有血浆分离速度快，与血清标本指标兼容性强等优点。 4、EDTA（紫色）管：抗凝剂为乙二胺四乙酸（EDTA，分子量292）及其盐， 适用于一般血液学检验，不适用于凝血试验及血小板功能检查，亦不适用于钙离子，钾离子，钠离子，铁离子，碱性磷酸酶，肌酸激酶和亮氨酸氨基肽酶的测定及PCR试验。 （二）多管采样时采集次序 多管采血时一般按下列顺序：凝血试验→血沉→血常规→其它。以防止凝血因子活化，或者血小板聚集而影响检验结果。 多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管或促凝管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d．草酸盐/氟化钠管。 （三）各种血标本的采集及注意事项 1、血常规检验标本 一般用EDTA-2K(EDTA-K2?2H2O) 1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。 采血注意事项： 1)应按抗凝管刻度准确采静脉血至2ml。 2)采血后立即上下颠倒混匀（5～10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；
检验科标本采集SOP 来源：检验医学专题网加入日期：2008-09-23 1.目的： 为保障送检标本质量，使送检标本具有代表性，保证检验结果的可信度和有效性 2.适用范围： 标本采集的准备 3.责任人： 检验科全体工作人员，临床医护人员及患者 4.程序：标本采集，这是分析前阶段质量保证关键的一步。要重视下列环节的控制： 4.1采样时间的控制，选择最佳采样时间的原则是： 4.1.1最具“代表性”的时间：原则上晨起空腹时采集标本。其主要原因有： 4.1.1.1尽可能减少昼夜节律带来的影响。许多血液成分昼夜间变换很大，如血钾数值，在高峰值期比低值期增加5％～10％，血红蛋白增加8％～15％，促甲状腺素增加5％～15％血管紧张素可增加120％～140％。为减少昼夜节律带来的影响，使不同患者间，或同一患者不同时期之间检测结果的可比性，除特殊情况外，一般早晨空腹时采集标本； 4.1.1.2病人处于平静状态，减少病人由于运动带来的影响；并减少饮食的影响； 4.1.1.3易于与正常参考范围作比较；
4.1.1.4便于组织日常工作。 4.1.2检出阳性最高的时间：如细菌培养应尽可能在抗生素使用前采集标本；尿常规检查应采集早晨第一次尿；早孕试验应在孕后35天后送检，此时阳性率达高峰。 4.1.3对诊断最有价值的时间：如急性心肌梗死时，cTnL或cTcT的测定在发病后4～6小时采样较好：病毒性感染抗体检查，在急性期及恢复期，采取双份血清检察对诊断意义较大；药物监测应根据药物峰值效应，在药物分布结束后监测（通常在药物输液结束后2～4小时进行，而地高辛、毛地黄毒甙在输液后6～8小时进行）。 4.2采取具代表性的标本如大便检查应取脓、血部分：脊髓穿刺、脑脊液穿刺应防止外伤性血液的进入；留取痰标本应防止唾液的混入，静脉采血时，患者的姿势（卧位、坐位或立位）及止血带的松紧都可影响某些监测结果，通常规定患者卧位或是坐位采血，止血带使用后1分钟内采血，见回血后立即松开，通过这些措施来保证血标本的质量。 4.3采取最合乎要求的标本主要控制下列三点： 4.3.1抗凝剂的正确应用：血标本如需抗凝，究竟用何种抗凝剂（EDTA）、草酸钠、拘橼酸钠、肝素等），根据监测要求而选定。抗凝剂的用量与血标本的比例必须准确无误； 4.3.2防溶血、防污染要防止由于容器不洁、化学物质引起的污染；细菌培养时，非病原菌的污染。有时还需防止标本接触空气（如血气分析、厌氧菌培养等）在生化测定中溶血、乳靡及黄疸是影响准确性三个常见的主要因素。其中尤以溶血最为常见，许多物质在红细胞内和血浆中的含量不一样，某些物质，如钾
检验标本的采集、储存、转运和处理制度 检验标本的采集 一、血液标本的采集 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1?．采血步骤 采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2?．注意事项 （ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （二）动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成 60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。 （三）真空采血法 双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 4.1样本采集要求: 4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 4.1.2:采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:
(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 4.2运输要求:
检验科标本采集、运送及管理制度 1、制定《标本采集手册》，对检验、医护、运送等相关人员 进行教育和培训，避免由于标本采集、运送、管理等因素而影响检 测质量及生物安全。 2、标本采集前应告知患者注意事项，以减少因运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟等因素对检验结果的影响。 3、采集时核对患者基本信息、检验项目、标本类型、容器、抗凝剂选择、采集量等，按照正确的标本采集途径，规范的操作方法， 采集合格的标本。 4、标本采集后应在规定的时限内及时送检，避免因暂存环 境和时间延缓等因素，而影响标本检测结果的准确性。不能及时送 检的标本，要按规定的贮存条件及方式妥善保管。 5、建立标本验收、登记、处理的工作程序。接收标本时须 认真核对患者基本信息、标本类型、标本量、容器、标识、检验目 的等，对不符合采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员，明确处理意见，做好记录。不合格标本不得上机检测，更不能 将明知是“失真的”检验结果签发报送临床，危及救治质量和患者 安全。 6、标本接收后应及时处理，防止标本中被测成分降解或破坏。缓检标本应核对后妥善保存。 7、向外单位送检或接收外单位送检的标本应专人负责并有
记录，医院其他科室使用检验标本从事科研时，必须征得专业主管、科主任同意，并作详细记录备案。 8、检验后的标本应按规定根据不同要求和条件限时保留备查，特殊标本特殊保存。 9、标本采集、运送及检验人员须严格执行生物安全防护要求，使用合格的标本输送箱，加盖封闭运送，检验申请单不得与标本容器卷裹混放。接触标本时须佩带防护手套，工作完毕后，按要求彻底清洗双手，防止感染。 10、废弃标本应严格按照实验室感染性材料和废弃物管理相关规定处理。 保持门窗干净、无尘土、玻璃清洁、透明。
临床检验标本的采集规范
第一部分各类检验标本容器类型及要求
第二部分患者准备 2.1 病人在采血前24h 内应避免运动和饮酒，避免情绪激动，注意合理饮食除了急诊或其它特殊原因外，一般主张正常饮食3 天后采血，应避免暴饮暴食及刻意控制饮食。静脉血 标本采集最好在起床后1h 内进行。应在空腹10～14 小时后第二天清晨采血。餐后或延长空腹时间（饥饿）均可引起血液化学成分的改变。门诊病人提倡静坐15 分钟后再采血。另外饮食的量及质对检验结果也有影响，如高蛋白饮食可使血清尿素氮、血氨、尿酸升高；高脂肪饮食引起乳糜微粒血症，导致血清脂血（混浊）；饮水过多或过少可使血清稀释或浓缩；含咖啡因的饮料可使儿茶酚胺释放等。 2.2 采血时间：有些血液成份日间生理变化较大，因此应相对固定采血时间，一般以清晨空腹抽血为宜〈急症项目除外〉。 2.3 患者体位：体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、Tch 及TG 等浓度增高；Hb、HCT、RBC 等亦可增加。由于体位的因素，在确立参考值时，应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异，故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的相对一致性。
2.4 药物影响：很多药物进入人体后可使某些化验项目的结果增高或降低，如咖啡因可使血糖和胆固醇增高；冠心平可使 甘油三酯和乳酸脱氢酶降低；维生素C 可使乳酸脱氢酶降低；口服避孕药可使转氨酶升高等。故病人在化验前应尽可能停服对检验有干扰的药物。 2.5 输液的影响：不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采 血。输液时应在输液的另一侧手臂取血。 2.6 生活方式的影响：烟、酒、咖啡及高脂、高糖饮食，可使血液中某些成份高于正常，需与一般病理情况相区别，取血前几日应注意避免。 2.7 生理差别的影响：不同年龄组的个体及妇女的妊娠期、月经期，血液成份有一定的生理差异，应注意与病理情况区别。 第三部分标本采集及注意事项 1. 静脉血液采集 1.1 采血注意事项：严格按照无菌技术操作，无论医生、护士、检验人员除穿戴工作服外，还应戴帽子、口罩和一次性医用乳胶手套，同时严格做好采血者手和患者采血部位的消毒，防止患者采血部位感染。保证一人一针一管一带，杜绝交叉感染。真空采血过程如有血液外溢和污染，立即用0.2%消毒灵或其它消毒液进行消毒处理。对所有的采血材料严格执行使用前再次检查，保证安全。采血人员对所采集的标本做好
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理 正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等 关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。 一、标本管理的安全警示 1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。 2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。 3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。 4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。 5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。 6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在 厌氧环境中25℃不超过24小时）。 7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。 二、标本的处理和要求 1．血液和骨髓： 1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中 立即送检置于孵箱内培养 2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养 3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养 4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养 5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。 2．脑脊液： 脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。每种检验最小需 要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml. 3．尿液： 1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。尿量不少于1ml. 2）直接插导管采尿：一般插入导管后先让尿流弃15ml再留取培养标本。尽量不采用此法，极易将尿道细菌丛进入膀胱增加医源性感染危险。 3）滞留导管采集尿：用75%酒精消毒导管口，用针筒抽取5—10ml尿置于无菌容器中立即送检，滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。 4）尿液采集后2小时内必须送检，立即处理。规定每日一次。 5）若同一份标本检到3种以上不同细菌则认为标本污染。一般认为革兰氏阴性杆菌菌落计数大于105cfu/ml,革兰氏阳性球菌菌落计数大于104cfu/ml,方有诊断意义。 4．痰液： 1）先用冷开水漱口清洗咽喉，用力咳出痰液置于无菌容器中立即送检，2小时内接种。 2）符合要求的痰液应在低倍镜视野中鳞状上皮≤10个，白细胞≥25个。
标本采集运输指南 1目的 对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以 及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样 品的质量。 2 范围 适用于检验科受理的标本。 3 职责 3.1临床医师负责检验的申请。 3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。 3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留 取标本。 3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。 3.5医院指定的标本收集人员负责定时到临床各科室 收集标本和运输。 3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。 4 工作程序 4.1检验申请 4.1.1 检验项目选择
临床医师根据病人病情需要和检验项目的敏感度、特 异性来正确选择检验项目。检验科人员可为其提供检验项 目的咨询，监督实验室服务对象选择的检验项目是否明确，实验室检验项目能否满足实验室服务对象的要求。 4.1.2检验申请表 本实验室的检验申请表包括以下内容： a)患者的唯一性标识，如门诊病人的诊疗卡号、住院 病人的住院号； b)患者的姓名、性别、年龄； c)患者就诊或住院的科别、床号； d)样品的类型和原始解剖部位，如静脉抗凝血等； e)申请的检验项目或项目的组合； f)临床标本采集日期和时间； g)实验室收到样品的日期和时间； h)申请者姓名； i)申请日期。 4.2病人的准备 为了使检验结果有效地用于临床，临床医护人员和检 验人员应了解标本收集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对标本 采集的影响。提出要求病人予以配合和服从的内容，采取 切实措施，保证采集的标本符合疾病的实际情况。
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。 3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送
（一）血液标本采集，运送 1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征
检验标本手册 一．标本采集注意事项 1．所有标本均须标有标本和化验单识别标志，可以用笔标记或者贴上条码标签。 2．危、急、重要化验须标明“急诊”字样。 3．贴标签时用适量糨糊或胶水，以防标签脱落或糨糊太多粘粘。 4．标签最好不要遮挡住血液水平面，便于检验人员操作。5．真空采血管均有编号，小编号标签贴在化验单上，空白标签直接写上患者姓名、科室即可。 1
6．明确急诊检验范围：K+、Na+、Cl-、Ca++、CO CP、血糖、 2 尿素氮、肌肝、心肌酶谱、血气分析、胆碱酯酶、血、尿淀粉酶、血凝四项、血常规、血型、大便常规及潜血、尿常规、脑脊液（胸腹水）常规和生化、D-二聚体和术前传染病。７. 任何标本都应避免剧烈振荡，以免造成溶血，影响检验结果。 ８. 输入脂肪乳或高营养液体的病人，应在输完液体4小时后采集血液，以免造成脂血影响检验结果。 ９. 严禁在输液同侧或者是输液部位采集血液，否则会影响检验结果。 2
10. 需要做电解质的标本严禁抽在含有EDTA-K 、枸橼酸钠、 2 肝素钠抗凝剂的试管中，否则会造成K+、Na+升高，严重影响检验结果。 11. 任何需要抗凝的血标本，绝对不能有凝集现象，否则将严重影响结果和损害检验仪器。 12. 生化项目：肝功、血脂、血糖、肾功、心肌酶谱、微量元素、急性心肌梗死全定量检测、钠尿肽、C-反应蛋白、电解质、二氧化碳、胆碱脂酶、血淀粉酶、血凝四项、D-二聚体、尿β-2微球蛋白、尿微量白蛋白、糖化血红蛋白、血气分析。 3
13. 免疫项目：乙肝六项、术前三项（HBsAg、抗-HCV、抗-HIV）、甲肝抗体、梅毒抗体、优生八项、ENA谱、抗双链DNA抗体（抗ds-DNA）、ANA、抗心磷脂抗体、麻疹抗体、抗精子抗体、抗子宫内膜抗体ASO、RF和肥达氏反应。 14．发光免疫项目：甲状腺功能、内分泌六项、人绒毛膜促性腺激素测定（β-HCG）、胰岛素测定、C-肽测定、胰岛素抗体测定、甲胎蛋白、癌胚抗原、铁蛋白、糖类抗原 (CA-125、CA-153、CA-199、CA-724、CY-211)、前列腺特异性抗原（PSA）、乙肝DNA、丙肝RNA、皮质醇测定、醛固酮测定、心钠素测定。 4
微生物检验标本采集运送程序 1．目的 规范微生物检验标本采集、运送，保证实验检测前标本质量。 2．范围 微生物检验标本。 3．职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医师采集。 3.3 标本运送人员负责及时送到检验科细菌室，急诊检验标本和值班采集的标本由临床科室相关人员直接送到细菌室（备注：周一至周五8：00AM～5：30PM、节假日8：00AM-12：00AM 送细菌室，余下时间送门诊检验室）。 4．程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作。包括核对医嘱，打印条形码，选择合适的标本容器，粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请是否一致，严防差错。 4.3 选择正确的解剖部位，采用适当的技术和设备来采集标本，注意避免自身正常菌群的污染，各标本采集技术、设备和方法参见微生物标本采集指南。 4.4 采集厌氧菌培养标本时一般情况下不要使用拭子，最好选择活检或抽吸物；厌氧菌培养标本的运输应避免接触空气，立即送检，切不可冷藏；厌氧标本采集与需氧标本采集均参见微生物标本采集指南。 4.5 收集足够量的标本，量少可能导致假期阴性结果。 4.6 在每份标本容器上贴上条形码标识，标识中包含有病人基本信息与检验项目，有时还需标明标本来源、采集部位、采集时间。 4.7 将标本放置于合适的密封容器中。 4.8 采集样品所用材料需按照废弃物处理程序处置，参见《废弃物处理程序》）。 4.9 采集标本后，运送人员及时送到检验科细菌室。 4.10 标本运送人员收集标本时，需核对标本数，用硬质、密闭防泄漏的二级容器将标本安全送抵细菌室，参见微生物标本采集指南。
检验标本采集、运送规章制度 一、检验科制定标本采集规范，包括对患者的准备要求、标本采集的方式与途径、标本处理、运送、保存环境等内容，要对相关医务人员进行教育与培训，使员工能知晓和遵循，避免由于标本采集环节因素而影响分析前的质量控制。遵循，避免由于标本采集环节因素而影响分析前的质量控制。 二、标本采集前做好事前向患者告知，正确识别患者无误，按照正确的标本采集途径、规范的操作方法、采集合格的标本。 三、采集到的标本应有唯一性的识别标志，条形码识别系统。 四、标本应在规定的时限内及时送达检测，避免因采集不当、暂存环境与时间的延缓，而影响标本检测结果的真实性，不得将明知是可能是“失真的”检验标本送检。 五、建立标本验收、登记、处理的工作程序，对不符合标本采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员明确处理意见，不得上机检测，更不得将明知是“失真的”检验结果签发报送临床，危及救治质量与病人安全。 六、为确保生物安全性与严防医院感染，应当使用密闭容器收集标本，开放型容器收集标本应当使用加盖的标本运送箱，加盖封闭放置标本及运送，符合生物安全性要求。应当根据不同的检查项目将标本分开
放置于标本箱内，避免混淆，血、尿标本分开放置，盛放标本工具应当加盖密闭，检查申请单不得与标本容器卷裹混放。 七、具有高危传染性标本、传染病医院的标本以及急诊抢救病人的标本，在采集后应由专人用专门盛具及时送检。 八、标本运送人员在拿取标本时必须佩带防护手套，接触标本后，按要求彻底清洗双手，防止污染。 九、各类标本在采集、暂存与运送过程中发生标本洒漏、标本容器破损等紧急意外事件，有紧急处理的程序与措施。