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标本采集

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标本采集

检验常见的标本一般包括血液(手指血,静脉血)、尿、粪便、脑脊液、胸水、腹水、前列腺液、精液、阴道分泌物等,这些标本收集的时间、方法和保存都有一定的要求。

标本采集的原则

(一)遵照医嘱(二)充分准备(三)严格查对

(四)正确采集如细菌培养:用无菌容器,一般在使用抗生素前采集(五)及时送检

一、血液标本采集

除了急诊或其它特殊情况外,一般主张在禁食8小时以后空腹采血,,采血的前一天避免吃高脂肪、高蛋白类食物,避免饮酒。血脂(包括生化检验)检验最好是保持正常低脂饮食一周,早晨空腹时采集标本。一般主张抽血前24h内不做剧烈运动。

一. 采血部位

成人一般取肘部静脉,肥胖者可用腕背静脉;婴儿常用颈部静脉、股动脉或前囟静脉窦;刚出生的婴儿可收集脐带血;血气分析一般采动脉血;检验只需微量全血时,成人从耳垂或指尖取血,婴儿从大脚趾或脚跟取血。外周血一般选取左手无名指内侧采血,该部位应无冻疮,炎症,水肿,破损。如该部位不符合要

求,以其他手指部位代替。对烧伤病人,可选择皮肤完整处采血。冬季患者从户外进来,应先按摩采血部位,使局部血液循环恢复常态后才能采血。

采血部位不当,这是临床常见的采血问题。输液病人在不能停止输液的情况下静脉采血一定要注意远端原则。输液病人采血应避免在输液的肢体采血。也就是说手上输液时,要在对侧手静脉采血。如同时两只手都在输液,可以采脚端。由于临床常用手部输液,而静脉是从远端向心脏回流,所以同侧的肘静脉总是在滴注位置的下游,因此同侧采血都有问题。实在不行也可以在滴注位置的上游采血。由于指尖血是末梢血,因此影响较小。至于影响的大小与输注液体、输注方式以及待测项目有关。

二.采血操作及送检的注意事项

1 采血器械:采血用的注射器、试管必须干燥清洁。注射器及针头不宜用酒精消毒。目前多用一次性注射器及真空负压采血管。

2 采血操作:必须按无菌操作,采血部位皮肤必须干燥,止血带不可缚扎过久,抽血时速度不可过快,以免血细胞破裂,采血后应卸下针头再将血液沿管壁徐徐注入试管内。

3采动脉血(常用作血气分析),应防止气体逸散:采集血气分析样本,采血部位多选用桡动脉、肱动脉、股动脉。抽血时注射器内不能有空泡,抽出后立即用小橡皮密封针头,隔绝空气。因空气中的氧分压高于动脉血,二氧化碳分压低于动脉血;作二氧化碳结合力测定时,盛血标本的容器亦应加塞盖紧,避免血液与空气接触过久,影响检验结果。

4 防止分解及自身变化:采血后应尽快送检。因血液中有些化学成份于离体

后极易分解,使其含量改变,如血糖及酶类测定,时间过久,血细胞酵解可使血糖下降,酶活力变化等。有些化学成份在细胞内外相差悬殊,离体时间过长,细胞内外浓度会发生变化,影响测定结果。如肌酸激酶、乳酸脱氢酶、电解质等。

5 防止污染:有些检查项目要求极严格,其采血器具及标本容器必须经过化学清洁。如血氨、铜、锌、铁等项目,因其含量极低,稍有污染即影响结果。标本避免光直接照射。

6 防止溶血:作各类生化检验,要防止血细胞破裂溶血,因溶血引起细胞内外浓度改变,可使钾、丙氨酸氨基转移酶(ALT)、门冬氨酸氨基转移酶(AST)和乳酸脱氢酶(LDH)等升高,钠、钙等降低,同时溶血对某些实验的反应过程亦有干扰。止血带使用应少于1分钟,以免引起血液淤滞,造成血管内溶血或血液某些成分改变。影响溶血的因素有:用止血带时间过长;抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡;容器污染;血液中泡沫注入试管;标本放置时间长或突然冷却和受热;离心力过大等等。

7. 抗凝剂的选择

生化检验大部份项目都采用血清,但有些项目需用血浆或全血,采集的血液必须加入抗凝剂。抗凝剂的种类较多,如选择不当,亦会影响检验结果的准确性。

8.药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果,病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。如出、凝血功能的检测项目(如血小板计数,出血时间或凝血时间等)的检测,不宜服用抗凝、促凝药物,以免影响测定结果。

9.血培养标本采集。一般应在病人发热初期或发热高峰时或用抗生素之前采集,以无菌方法抽取静脉血,成人5—10ml,婴儿和儿童1—2ml,采血后立即接种于血培养瓶中混匀,送检培养。

10. 进食、运动、妊娠、情绪波动、体位、吸烟、昼夜变化等对检测结果的影响。如进食可显著影响血GLU(葡萄糖)、TG(甘油三酯)的结果;运动可增加血中肌酸激酶的含量;醛固酮的立卧位结果完全不同;妊娠可影响血生化、血常规等多个项目;皮质醇的昼夜结果差异也很大。因此采集标本时尽可能避免这些干扰,尽可能在清晨病人空腹的条件下采集,保持条件一致。

11. 采用一次性真空采血管,多项化验采血顺序应首先将血注入抗凝管,最后是非抗凝管。有多项检查时,请按兰、紫、黑、红、黄的秩序采血,抗凝血应立即颠倒轻轻混匀。抗凝管及血培养瓶需轻柔地颠倒混匀数次。

附:真空采血管采集血液标本一览表

造成不合格标本的常见原因

1)未询问病人姓名,未核对标签,抽错标本。

2)在输液时抽血,造成血样污染或被稀释。

3)抽血时压脉带使用时间过长,病人攥拳太紧,部分抽血困难,采血后未卸下

注射器针头直接快速注入试管,甚至注入气泡,造成溶血,这些都将影响检测结果。

4)抽血量少或量不准,需要加抗凝剂的标本未按血液和抗凝剂比例抽血,甚至

没有及时颠倒混匀,造成标本明显凝固而失效。

5)错过最佳采血时间:如血药浓度,肌酸激酶,皮质醇(Am8:00、Pm4:00),

疟原虫(发作时采血),微丝蚴(安静状态下晚上9:00-11:00),血培养应在抗菌药物应用前或无法停药时下次用药前并在发热时采集,且需多次采集等。

6)抽动脉血气前未准备好橡胶塞,抽时未推完针筒里的肝素,抽后没有将针头

及时插入橡胶塞,忘了马上来回搓动针筒混匀标本,造成部分血液凝固。

二尿液标本的采集

同血标本一样,尿液标本受饮食、运动、药物量等因素的影响也较大,特别是饮食的影响,故一般来说晨尿优于随机尿。晨尿是指清晨起床后的第一次尿标本,较浓缩和酸化,有形成分(如血细胞,上皮细胞,管形)相对集中便于观察。随机尿即随意一次尿,留取方便,但受饮食、运动、药物影响较甚,易于出现假

阳性和假阴性结果,如饮食性蛋白尿、饮食性糖尿、维生素C干扰潜血结果等。尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。一般留尿常规早晨第一次尿液10-50ml。清洁中段尿多用于尿细菌培养,要求无菌,冲洗外阴后留取标本。

三、粪便标本的采集

粪便标本的检测对判断消化系统疾病有重要参考价值。采集时要求用干净的竹签选取含有粘液、脓血等异常病变成分的粪便,对外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材。大便常规一般采集5g,约蚕豆大小。不宜用棉签蘸取粪便送检。

粪便检验应取新鲜标本,容器要清洁,及时送检,所有粪便标本采集后1小时内应送检,以防止有形成分受消化酶及pH的破坏。粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便,灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而不适于作检查标本。隐血试验(化学法),试验前3日禁食肉类及含动物血食物,并禁服铁剂,维生素C等。

四痰液标本的采集

患者晨起刷牙或用清水漱口数次后,用力咳出气管深处痰液,盛于清洁有盖容器内立即送检。对于无痰、少痰或痰脓不易吸出者,可用45℃加温生理盐水雾化吸入,以使痰液易于咳出,对于小儿可轻压胸骨柄上方以诱导咳痰。

痰液培养杯本按以上方法采集,但须盛放于无菌容器内加盖后送检。清晨痰量相对较多。可嘱病人于清晨先漱口,以除去口腔中细菌,再用清水漱口后,深吸气后用力咳出的痰标本于无菌痰杯中。对痰少者可嘱其保持头和肩低于胸部水平的姿势10分钟或雾化吸入15%NaCL溶液诱导痰液咳出。必要时可用婴儿吸痰器留置标本。

血液标本采集流程

注意事项: 1、 根据医嘱采集标本,根据检验目的与要求确定采集时间、方法和试 管,并通知患者准备。 2、 落实双人核对检验项目、检验时间、试管、电子条形码上的科室、 床号、姓名、年齡、住院号。标本容器准备:应根据真空采血对照表准备 核对试管 血液标本采集流程 试管准备 査对 1、 核对医嘱/执行本,检验单、患者。 2、 根据检查项目准备核对试管、检查试管质量并贴好试管上的标 签,不能遮挡试管中的刻度。 1、 操作者着装整洁、洗手、載口罩,掌握正确采集血液标本的方法。 2、 操作用物准备齐全,环境符合操作要求。 1、 查对床号、姓名。 2、 患者病情、意识状态、生命体征、正在进行的治疗。 3、 肢体活动情况和静脉充盈情况。 4、 穿刺部位皮肤情况:有无水肿、结节、疤痕、伤口等。 5、 患者的心理状态,沟通、理解及合作能力,需求等。 1、采血的目的和配合方法。 2、采血前后的注意事项。 需空腹采血应提前通知患 者,避免因进食而影响检验 采血 査对 ^=> 1、 核对床号、姓名、检验单检验项目、采血量、试管。 2、 选择合适的静脉、穿刺点,上止血带,常规消毒皮肤,嘱患者握 拳。 3、載手套T 穿刺T 固定头皮针T 接采血真空试管T 根据目的采集 所需血量T 反折针头,拔 /换采血管T 松止血带、松拳T 迅速拔 出头皮针T 用干棉签按压穿刺点 1?2mi n. T 脱手套。 整理送注意事项: 1、 再次认真查对,询问并观察患者反应,交代注意事项。 2、 整理床单位及用物,医疗废物按有关规定处置。 3、 标本及时送检。

3、应严格执行无菌操作,严禁在正在输液或输血的肢体或针头、输液或输血穿刺点上方、皮管内采血标本,应在对侧肢体采血。标本不能溶血,因溶血会掩盖配血不合异常反应。 4、因右旋糖酐对配血有干扰,故应在病院输注前进行采血。 5、配血标本必须是输血前3天之内的,超过3天的标本不能代表当前病人的免疫学状态。特殊情况下(如妊娠、病人血管条件差、采血困难者) 也可例外,适当延长到5天。 6、如同时采多个项目的标本,采血顺序:血培养-不含添加剂的试管T凝血标本管T其他标本管,需抗凝的试管拔出后按要求轻轻摇匀。 7、采血后知道患者按压穿刺点5-10分钟,勿揉,凝血机制差的患者适 当延长按压时间。 8不合格标本拒收的条件:血量过少、溶血、非EDTA抗凝的血标本, 标签模糊、字迹不清、标本与《输血申请单》信息不符或对患者身份有怀疑等有输血安全隐患的情形。 (专业文档是经验性极强的领域,无法思考和涵盖全面,素材和资料部分来自网络,供参考。可复制、编制,期待你的好评与关注)

检验标本的正确采集及注意事项

检验标本的正确采集及注意事项 血液标本采集的注意事项 注意要将患者姓名、床号、住院号标记清楚 实行一人、一针、一管、一带、一垫,防止交叉感染。 压脉带捆扎时间不能过长、不能超过2分钟、见到回血应立即松开止血带。 需要重新采血时,在止血带束缚时间太长的情况下,应当在对侧手臂重新采血。 抽完后,应将真空管轻轻颠倒混匀。 临床化学检查为什么需要早晨采空腹血? 正常人血液中的部分生物化学成分的含量,除因年龄、性别等的影响外,还可受饮食、运动、精神、用药等因素的影响而使血液成分发生变化。而晚饭后,进餐的食物经十几个小时消化,基础状态平稳,所以测**果较为真实可靠如果在进食后采血,因受所进食物成分的影响,血液中会出现血糖、钾、钠、氯、钙磷等浓度升高,对各种酶类、脂类的实验结果均有影响,所以,有些临床化验检查常常需要早晨采取空腹血为宜。 怎样才算空腹 具体要求是:抽血的前一天晚上,病人保持平时的生活习惯,正常饮食;饭菜宜清淡,不要喝酒;饭后不喝咖啡、浓茶;休息好。第二天早晨起来后,不吃早餐,少喝或不喝水,不做早锻炼运动,平静地到医院等候采血,这样的血标本才是反映真实情况的好标本。 有些病人的甘油三酯特别高,以至于血清像牛奶一样,影响了其他血酯项目化验结果的准确性。这时,医生会要求他们吃几天素食,不吃肥肉,让血清清一点,再做空腹抽血化验。 输液病人应怎样采血? 这是临床常见的采血问题。输液病人在不能停输的情况下静脉采血一定要注意远端原则。也就是说要在对侧手静脉采血。如果两只手都在输液,可以采脚端。实在不行也可以在滴注上流采血。由于指尖血是末梢血,没什么影响。由于临床常用手部输液,而静脉是从远端向心脏回流,所以同侧的肘静脉总是滴注的下流,因此同侧采血都有问题。至于影响的大小与输注液体输注方式以及待测项目有关。 尿液标本的采集 尿液标本的种类

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标本的采集管理程序-程序性文件 2011-05-05 22:01:57 作者:检验在线来源:本站原创 一.目的:正确采集标本,保证检验结果准确可靠。 二.适用范围:适用采集标本和实验室人员接收标本。 三.职责:实验室工作人员须熟知标本的采集,处理贮存,安全处理等全过程。并有责任向临床医护人员进行宣传培训 一.目的:正确采集标本,保证检验结果准确可靠。 二.适用范围:适用采集标本和实验室人员接收标本。 三.职责:实验室工作人员须熟知标本的采集,处理贮存,安全处理等全过程。并有责任向临床医护人员进行宣传培训如项目选择,标本采集,运送,处理等技术要求和注意事项。采集标本必须严格按无菌操作,避免交叉污染,防止假阳性和假阴性结果出现,保证实验结果准确可靠。 四.采集操作步骤: 一、血液标本采集法 (一)毛细血管采血法 一般常规检验用毛细血管采血法,这种采血法由检验人员执行,血清生化及细菌培养等检验因需要较多量的血液,一般由护理人员协助采血。目前不少生化项目检验已采用微量测定法,故也可采用毛细血管采血法采标本。 (二)静脉采血法 1.用物同静脉注射法,备干燥注射器(5-10ml),7号针头,标本容器(按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶),酒精灯,火柴等。 2.操作方法 (1)备齐用物,贴好标签,核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量,立即卸下针头,将血液沿管壁缓慢注入试管内,切勿将泡沫注入,避免震荡,以防红细胞破裂而造成溶血。因血液中细胞的内外成分有很大差异,如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍,细胞内的某些酶含量也较细胞外高,如发生溶血,则直接影响检验结果的准确性。 (2)如需全血、血浆,可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内,立即轻轻摇动,使血液和抗凝剂混匀,以防血液凝固。血液常规检验标本使用含EDTA2K的抗凝试管,抽血需要快速,避免血液凝固,打入抗凝管后需立即颠倒混匀,但不能过于用力,避免溶血。对于血小板少或者有其他血小板疾病的,需要尽快检测,最好不要超过10分钟,以免影响血小板结果。如需作二氧化碳结合力测定时,抽取血液后,应立即注入有石蜡油的抗凝试管中,注入时针头应插入石蜡油面以下,以隔绝空气,立即送验。否则血液中二氧化碳逸出,使检验结果降低,影响准确性。 (3)采集血培养标本时,应防止污染。静脉采血后,将血液注入培养瓶内,瓶内盛培养液约50ml,经高压灭菌,使用时将盖打开,用2%碘酒和70%酒精消毒瓶盖,更换针头将抽出的血液注入瓶内,摇匀后送验。一般血培养取血5ml,亚急性细菌性心内膜炎病人,因血中细菌数目较少,为提高细菌培养阳性率,应取血10-15ml。

(完整版)标本采集试题

(一) A 型题 ()1. 防止血标本溶血的方法,下列哪项错误 A. 选用干燥无菌注射器 B. 采血后去针头顺管壁将血浆和泡沫注入试管 C. 避免过度震荡 D. 血培养标本将血液注入培养瓶 E. 立即送验 ()2. 尿常规检查需何时留取尿标本 A. 饭前半小时 B. 晨起第一次尿 C. 12 小时尿 D. 24 小时尿 E. 随时收集尿液 ()3. 留取中段尿的正确方法是 A. 尿量不宜太多,3ml 即可 B. 尿内勿混有消毒液 C. 女性患者须取坐位 D. 必须留取晨起第一次尿 E. 用干燥试管留取尿液 ()4. 检查粪便中的寄生虫卵应 A. 取中间部位的粪便 B. 取边缘部位的粪便 C. 取不同部位的粪便 D. 随机取少许粪便 E. 留取全部粪便 ()5. 采集痰培养标本时应用的漱口液是 A. 生理盐水 B. 1%~4% 碳酸氢钠溶液 C. 0.1% 醋酸溶液 D. 1%~3% 过氧化氢溶液 E. 朵贝尔溶液 ()6. 关于咽拭子培养,下列哪项错误 A. 采集咽部、两侧腭弓及扁桃体分泌物 B. 用无菌咽拭子培养管留取标本 C. 患者先漱口 D. 长棉签蘸无菌生理盐水擦溃疡面采集 E. 真菌培养须在口腔溃疡面采集 ()7. 患者伍某,持续高热,怀疑败血症,下列采集血培养标本哪项做法错误 A. 须放入消毒容器内 B. 检查容器有无裂缝 C. 检查瓶塞是否干燥 D. 检查培养基是否足够 E. 采集时严格执行无菌操作 ()8. 患者张某,急性细菌性心内膜炎,需作血培养检查,护士应给患者采血多少为宜A. 2ml B. 4ml C. 6ml D. 8ml E. 10ml ()9. 患者史某,查找痰中癌细胞,固定痰标本的溶液是 A. 3% 来苏儿 B. 5% 石炭酸 C. 95% 酒精 D. 0.2% 漂白粉 E. 0.2% 苯扎溴铵 ()10. 采集血标本测血糖含量,正确的是 A. 饭后2 小时采血 B. 标本容器用抗凝试管 C. 从输液针头处抽血 D. 采血后将针头靠近管壁缓慢注入 E. 血液注入试管后不能摇动 ()11. 下列关于血标本采集法的描述,错误的是 A. 血清标本应避免震荡,防止溶血 B. 全血标本采集后注入抗凝管,轻轻摇匀 C. 血气分析需用加盖抗凝管 D. 严禁在输血针头处采集血标本 E. 做二氧化碳结合力的测定时,用普通抗凝管,测定结果偏高

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 1 血标本采集方法及注意事项 (1)采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 1)空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 2)餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 3)急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK )达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值, 维持3-6d 。 4)血清淀粉酶起病后6~12小时开始升高,12~24小时达到高峰,一般持续3~5天后下降,超过500U (Somogy 法)即有确诊价值。 5)留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 (2)采血部位 1)动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 2)静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 3)毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 (3)采血器材:a, 注射器, B ,真空采血器: (4)标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 1)全血:用抗凝剂。 2)血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 3)血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交叉配血等。 (5)操作重点 1)止血带的应用,一般止血带捆扎不要超过1分钟,时间过长,将影响结果。 2)当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本,以免影响检验的真实结果。 3)注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 4)操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 5)有抗凝剂的血标本要充分摇匀,防止凝血。 2.尿标本采集方法及注意事项 方法: (1)导尿法:用导尿管导尿,取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送 检。 中段尿采集法:是临床上采用最多的方法。女性病人以肥皂水或1:1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮冲洗,用1:1000新洁尔灭消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20毫升于无菌容器内,立即加盖送检。 尿标本采集注意事项: (1)尿常规,妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜,因为较浓缩,条件恒定,便于对比,故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。

检验标本采集核对 制度

检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析,为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果,并为临床提供咨询服务。因此,检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此,制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等,必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态,为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h;血脂测定需禁食12-14h;做微生物培养检查,最好在使用抗生素之前采集标本;大便隐血检查前要素食3天;尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血,非住院患者可采用坐位;醛固酮检测要在起床前卧位取血,起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量,准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间,一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时,应换另一手臂。

7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者,应在输液结束1h后采集标本;输入脂肪乳剂的患者,应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本,要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时,要避免导致标本溶血的因素。包括:标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如:患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本,请在条形码空白处用文字备注,字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息,包括:患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后,由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录(项目、数目、时间、签名),再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则:(1)唯一标识原则:应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 (2)生物安全原则:要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。

标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项 医学检验又称临床检验,是指通过感官观察,试剂反应,仪器分析等,对离体标本如体液,分泌物,排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断,病情判定,疗效观察,预后评估等提出实验数据。 检验结果的准确与否,与病人采样前的状态,准备,取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法,时间,饮食的要求,药物的影响,标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此,护士要有对病人负责的精神,科学的工作态度,严谨的工作作风,一丝不苟地做好临床标本的采集工作,并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断,为治疗护理提供参考依据。 各种标本采集的注意事项的重要意义 护士承担着大多数标本的采集任务,由于标本的来源,性质,采集方式不同,将直接影响临床检验结果的准确性。因此,护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况,明确采集标本的要求,以保证标本质量,为临床诊断提供可靠依据。 1 血标本采集方法及注意事项 采血时机:提前向病人讲解抽血化验检查的目的,方法和采集标本的时机,解除病人的恐惧或焦虑,安慰病人,使之处于安定状态,避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求,采血的时间也不同: 空腹抽血适宜作血糖,血脂,肝功能,肾功能,电解质等生化检验。禁食时间约12小时,时间过长易引起低血糖虚脱。 餐后2小时,上午8-9时抽血,可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 急性心肌梗死发病后,16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST),肌酸激酶(CK)达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。 急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升,12-72小时达高峰,4小时左右恢复正常。留取血细菌培养标本时,应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本,阳性率较高。 采血部位 动脉采血:常用采血部位股动脉,桡动脉,足背动脉等。由于动脉压力高,危险性较大,故采血后按压穿刺点5-10分钟。 静脉采血:是最常用的采血方法,可选择的表浅静脉多,要求护士必须严格无菌操作,避免感染,可选择较大的静脉穿刺,争取一次操作成功。 毛细血管采血:只需很小量标本,多在手指,足趾或足跟等部位采血,如全血细胞计数,快速血糖,血脂等检验,或婴幼儿。 采血器材:a,注射器,瓶塞,玻璃或塑料试管,防腐剂,抗凝剂,标签等。B,真空采血器:以不同彩色标记各种试管盖,用于不同实验。(我院常用的真空采血管规格及标志) 添加剂:一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸(EDTA)二甲抗凝,枸橼酸盐,草酸钠(钾)均系与钙作用而抗凝;肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用,用于血PH,血气,内分泌激素,氨基酸,药物浓度,6-磷酸葡萄糖,染色体等检查。用抗凝试管时,每管的抗凝剂与采血最大量有关,要求与血液充分混匀,不够可致血液凝固。 标本的类型:血标本有三类:即全血,血浆,血清。 全血:用抗凝剂。 血清:不用抗凝剂。常用于多种生化分析,如蛋白质,脂类,无机盐,酶,肝功能,肾功能检查。 血浆:有多种抗凝剂。用于红细胞积数,红细胞比容,血沉,血型鉴定,血红蛋白电泳,交

微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计:微生物标本的检测误差来源:80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源:45%分析前10%分析中(仪器))45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的,在我们的大型医院都存在这个问题,而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 (1)75%酒精清洁局部皮肤。 (2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm (直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 (3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。 (4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 (1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。 (2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 (3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 (4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。 (5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 (6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。 (7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。 (8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 (1)采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次,以除去口腔内大量杂菌,用力咳出肺深部的脓痰,置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿,可轻轻压迫胸骨上部的气管,当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。

正确采集标本

1、正确标本的采集 1)、血液标本的采集:静脉采血时,除卧床病人,采血时一般取坐位,成人多用肘前静脉,婴幼儿常用颈静脉。使用止血带的时间不应超过一分钟,穿刺成功后应立即松开止血带。禁止在静脉输液管道内采血,从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管,并确定采血量。 2)、尿液标本的采集 一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记,避免污染,使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集由医护人员进行相关操作留取标本。 3)、粪便标本的采集 留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本,选取异常成分的粪便,如含有黏液、脓、血等病变成分的标本,外观无异的从表面、深处及粪端多处取材,取3~5 g及时送检。 4)、阴道分泌物标本的采集 一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本,避免阴道冲洗或上药,被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈,采样前,用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子,用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0.5-2cm,稍用力转动两周,以取得分泌物及脱落细胞。 5)、痰标本的采集 嘱病人先行清水反复漱口,并指导或辅助病人深咳嗽,从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液,采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。6)、其他标本的采集 脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、临床不合格标本常见的原因 1)标本溶血 主要是因为标本采集量不足,管内剩余真空的存在造成血球破裂;用注射器采血转装于采血管时,未卸下注射器针头(血样在一定压力下,通过狭小的通道受到挤压,血细胞变形或破裂);在摇匀抗凝剂,抗凝管摇匀方式错误或幅度太大(血样冲击力过大,破坏血球);使用干粉剂采血管时,不及时摇匀(其溶解接触面不均衡,介面温度过高,出现溶解热和反应热)。2)标本凝血 使用注射器采血时,分装量超过采血管额定量;抗凝管没有摇匀或未及时摇匀、摇匀方式错误;血液粘度高的病人,选择采血针型号过小,采血速度过慢;异常的开塞操作(即水剂的抗凝剂常吸附在丁基胶塞上),异常开塞后胶塞会带走部分预加的抗凝剂,导致抗凝剂剂量不足;由于患者疾病或自身因素造成血管条件不理想,致使抽血时间过长而导致血液凝固;多项采血时将血常规标本放在最后,导致拔针后针管内的血液返入试管,造成血量过多而凝固;止血带使用时间过长。 3)采血容器不当、采血量过少 护士对检验相关业务和一些新开展业务不熟,造成对标本采集的容器选择和采血量缺乏正确的认识。 4) 标本与LIS系统扫码不相符 护士处理检验医嘱时未认真履行查对制度,造成标本容器上条码与患者姓名不相符;护士扫码未保存医嘱,造成实验室无法接受标本。

传染性疾病标本采集方法

---------------------------------------------------------------最新资料推荐------------------------------------------------------ 传染性疾病标本采集方法 标本采集、运送与报告操作规程一、血培养指征患者出现寒战,体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时,尤其存在以下情况时,应抽血做细菌和真菌培养: 医院内肺炎;留置中心静脉导管超过 72 h;感染性心内膜炎;骨髓炎;有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状;临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能,应立即采血做血培养,最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物 24 h 后,以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程(一)消毒 1.培养瓶消毒程序: 用消毒液消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。 2.皮肤消毒程序: 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达 5 cm 以上,待消毒液挥发干燥后(常需 30 s 以上)穿刺采血。 (二)静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,避免注入空气,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。 近年来,临床普遍采用负压血培养瓶,将血从患者静脉直接吸入血培养瓶,减少污染环节。 1 / 10

(三)注意事项 1.检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2.采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血,因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3.采血次数: 对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4.细菌性心内膜炎: 在 24 h 内取血 3 次,每次间隔不少于 30 min;必要时次日再做血培养 2 次。 5.采血量: 以培养基与血液之比 10: 1 为宜,以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。 采血量过少会明显降低阳性率。 成人每次每培养瓶采血 8~ 10 ml,婴幼儿每次每培养瓶采血 2 ml。 四、运送要求 1.所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在 2h 内。 如果不能及时送检,宜置于室温环境。 血培养瓶送到检验科放入培养箱前,不应暂存于冰箱内。

各种临床检验标本的正确采集方法

各种临床检验标本的正确采集方法 发布日期:2007-09-10 发布人:alexendran 最后更新时间:2009-05-15 浏览次数:2711 各种临床检验标本的正确采集方法 标本送检须知 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤。因此,要求各临床科室医护人员、 送检单位及相关人员认真阅读本文件并严格按以下方法操作。 1 尿液标本的留取 尿常规检查标本 1.1使用清洁干燥容器,住院病人以清晨第一次尿为主,门、急诊患者可随时留取新鲜尿液 约20ml送检。 1.2尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。 1.3标本留取后及时送检,不得超过1小时,以免细菌在尿中生长繁殖,菌体蛋白与病理性 蛋白尿相互干扰;以免尿素酵解、葡萄糖降解、尿pH升高;以免有形成份破坏(细胞管型 分解、红细胞溶解),化学成分变性、分解,尿中盐类析出结晶)。 尿培养标本 1.4需留取清洁中断尿,注意无菌操作,避免污染。 1.5病人先清洗外阴部,自行排尿,排尿过程中尿液不要中断,前段尿不要,用无菌管接中断尿,塞好瓶塞后立即送检。 1.6患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 1.7尿中应加防腐剂。 24小时尿标本 1.8准备清洁干燥带盖的广口容器,容量为3000—5000mL。 1.9病人于晨7时将尿全部排尽弃去,然后开始留尿,将24小时内历次所排尿液均留于容器中,包括次日晨7时所排最后一次 尿。 2.0测量尿液总量(ml数)并记录在化验单上,将全部尿液充分混均后,取出20—50m1,置于清洁干燥有盖容器总立即总检。

2.1若天气炎热,可根据检验要求放入适量的防腐剂。 甲苯:适用量20ml/1000ml尿,用于尿液生化检验(G、Pr、Ca、P、Cr等) 40%甲醛:适用量1~2ml/24h尿,用于细胞、管型等有形成分检查。 应在第一次尿液倒入后再加防腐剂。 2.2 24h尿中不能混入异物。 12h尿标本 留取12h尿标本,可以从晚上7时开始至次晨7时止(具体方法同24h尿标本采集)。 2 粪便标本的留取 粪便常规检查标本 2.1粪便检验应取新鲜标本,容器要清洁,及时送检,于1h内检查完毕。 2.2采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便,外观无异常的粪便须 从表面、深处及粪端多处取材,其量至少为指头大小。 2.3粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。 2.4无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便,灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而 不适于作检查标本。 2.5应根据检查项目的要求进行准备和留取标本。 粪便寄生虫检查标本 2.6查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即检查。寒冷季节标本传送及检查时均需保温,从脓血和稀软部分取材。 2.7检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分,孵化毛蚴时应至少留取30g粪便,且需较快处理。 2.8检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处拭取并立即镜检。 粪便培养标本 2.9粪便培养标本应无菌操作收集。 2.10患者在清洁便盆内排便,用无菌棉签取大便的脓血或粘液部分少许,或在肛门插入约6-7cm,轻轻旋动取出大便少许,放

护理7种常用标本采集

护理7种常用标本采集 正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者,护士应了解各种检验的目的,掌握正确采集标本的方法,采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施,以保证检验结果的准确性。 一、血标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估患者病情、意识及配合程度,需空腹取血者了解是否空腹。 2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.真空采血法:根据标本类型选择合适的真空采血管,将采血针与持针套连接,按无菌技术操作规程进行穿刺,见回血后,按顺序依次插入真空采血管。 2.注射器直接穿刺采血法:根据采集血标本的种类准确计算采血量,选择合适的注射器,按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后,取下注射器针头,根据不同标本所需血量,分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内,轻轻混匀,勿用力震荡。 3.经血管通路采血法:外周血管通路仅在置入时可用于采血,短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血,但不能给药。采血后,血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。(三)指导要点。

1.告知患者血标本采集的目的及配合方法,如需空腹采血应提前告知。 2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。 (四)注意事项。 1.在安静状态下采集血标本。 2.若患者正在进行输液治疗,应从非输液侧肢体采集。 3.同时采集多种血标本时,根据采血管说明书要求依次采集血标本。 4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。 5.标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震荡。 二、血培养标本采集 (一)评估和观察要点。 1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。 2.了解寒颤或发热的高峰时间。 3.了解抗生素使用情况。 4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。 (二)操作要点。 1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。 2.经血管通路采血法(同血标本采集)。 3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法:取1支注射器抽生理盐水20ml 备用,另备2支注射器。取下肝素帽,连接1支空注射器,抽出5ml 血液弃去;如正在静脉输液中,先停止输液20s,再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口,清除残留血迹。连接肝素帽或

检验标本采集方法

检验标本手册 一.标本采集注意事项 1.所有标本均须标有标本和化验单识别标志,可以用笔标记或者贴上条码标签。 2.危、急、重要化验须标明“急诊”字样。 3.贴标签时用适量糨糊或胶水,以防标签脱落或糨糊太多粘粘。 4.标签最好不要遮挡住血液水平面,便于检验人员操作。5.真空采血管均有编号,小编号标签贴在化验单上,空白标签直接写上患者姓名、科室即可。 1

6.明确急诊检验范围:K+、Na+、Cl-、Ca++、CO CP、血糖、 2 尿素氮、肌肝、心肌酶谱、血气分析、胆碱酯酶、血、尿淀粉酶、血凝四项、血常规、血型、大便常规及潜血、尿常规、脑脊液(胸腹水)常规和生化、D-二聚体和术前传染病。7. 任何标本都应避免剧烈振荡,以免造成溶血,影响检验结果。 8. 输入脂肪乳或高营养液体的病人,应在输完液体4小时后采集血液,以免造成脂血影响检验结果。 9. 严禁在输液同侧或者是输液部位采集血液,否则会影响检验结果。 2

10. 需要做电解质的标本严禁抽在含有EDTA-K 、枸橼酸钠、 2 肝素钠抗凝剂的试管中,否则会造成K+、Na+升高,严重影响检验结果。 11. 任何需要抗凝的血标本,绝对不能有凝集现象,否则将严重影响结果和损害检验仪器。 12. 生化项目:肝功、血脂、血糖、肾功、心肌酶谱、微量元素、急性心肌梗死全定量检测、钠尿肽、C-反应蛋白、电解质、二氧化碳、胆碱脂酶、血淀粉酶、血凝四项、D-二聚体、尿β-2微球蛋白、尿微量白蛋白、糖化血红蛋白、血气分析。 3

13. 免疫项目:乙肝六项、术前三项(HBsAg、抗-HCV、抗-HIV)、甲肝抗体、梅毒抗体、优生八项、ENA谱、抗双链DNA抗体(抗ds-DNA)、ANA、抗心磷脂抗体、麻疹抗体、抗精子抗体、抗子宫内膜抗体ASO、RF和肥达氏反应。 14.发光免疫项目:甲状腺功能、内分泌六项、人绒毛膜促性腺激素测定(β-HCG)、胰岛素测定、C-肽测定、胰岛素抗体测定、甲胎蛋白、癌胚抗原、铁蛋白、糖类抗原 (CA-125、CA-153、CA-199、CA-724、CY-211)、前列腺特异性抗原(PSA)、乙肝DNA、丙肝RNA、皮质醇测定、醛固酮测定、心钠素测定。 4

标本采集管理制度

标本采集管理制度

1、标本的采集 1)、血液标本的采集:静脉采血时,除卧床病人,采血时一般取坐位,成人多用肘前静脉,肥胖者可用腕背静脉,婴幼儿常用颈静脉,偶用前囟静脉。静脉采血用止血带应一人一用一消毒。使用止血带的时间不应超过一分钟,穿刺成功后应立即松开止血带。正在静脉输液者应停止输液三分钟,从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管,并确定采血量。动脉采血一般由临床科室护士采集。 2)、尿液标本的采集一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记,避免污染,使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集一般由医护人员行相关操作留取标本。 3)、粪便标本的采集由患者留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本,选取异常成分的粪便,如含有黏液、脓、血等病变成分的标本,外观无异常的从表面、深处及粪端多处取材,取3~5g及时送检。 4)、阴道分泌物标本的采集一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本,避免阴道冲洗或上药,被检者在采样前2小时不能排尿。患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈,采样前,用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子,用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0.5·2cm,稍用力转动两周,以取得分泌物及脱落细胞。 5)、痰标本的采集嘱病人先行清水反复漱口,并指导或辅助病人深咳嗽,从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液,采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用45’C10%NaCl溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6)、其他标本的采集脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、标本的送检样本应置于被承认的本质安全防漏的容器中运输。病房标本由各病区工人负责运送,门诊标本由我科工友运送,标本采集后均应及时送检。运送过程中标本管口垂直朝上放置,避免振动、外溅。进行微生物检验的标本要防止运送过程中的污染。 3、标本的签收所有标本均可能具有传染性,涉及标本处理的全过程均应按科室制定的生物安全手册进行。各室标本的接收在指定的区域内进行,接收标本时须检查标本状态、核对标本管标识与检验申请单内容的一致性,如姓名、住院号、检验项目等,有不清新情况时应及时与送检科室联系核实。工作人员有权拒收与检验申请单不一致的、标识不清的标本。各室应根据检验目的对标本的要求判断标本是否应该拒收,如血液凝固、严重溶血、标本量不足等,拒收标本时应及时通知采样科室。 4、标本的检验各室应严格按所在室的标准操作规程开展检验,保证检验质量,及时发放检验报告。

各种标本的采集

各种标本的采集 一、血液标本的采集 1.种类: 全血标本血沉、血常规、测定血液中物质的含量(血糖、尿素氮、肌酐等) 血清标本血清酶、脂类、电解质、肝功能等 血培养标本病原菌 2.方法 毛细血管采血法 静脉采血法 动脉采血法 3.注意事项 ?一般全血、血清标本2-4ml,血培养5ml ?亚急性细菌性心内膜炎的病人,为了提高细菌培养的阳性率,采血量可增至10-15ml ?血培养在抗菌药物应用前或停药24小时后采集 ?选择在体温上升期和发热1小时后采血 ?血生化标本,应在病人空腹时采集 ?若同时抽取不同种类的血标本,应先注入血培养瓶,再注入抗凝管,最后注入干燥试 管 ?严禁在输液、输血的针头处取血标本,最好在对侧肢体采集 二、痰标本的采集 目的:检查痰液内细胞、寄生虫等——协助诊断呼吸系统疾病 种类:常规痰标本——细菌、虫卵、癌细胞等 痰培养标本——致病菌 24小时痰标本——量、性状 常规痰标本——时间:清晨醒来未进食前 方法:先漱口-数次深呼吸-用力咳、盛于痰盒内(无法咳痰或不合作病人:叩击背部、使用集痰器)-送检 痰培养标本——时间:清晨醒来未进食前 方法:先漱口(漱口先用漱口液、再用清水)-数次深呼吸-用力咳、盛于痰盒内严格无菌操作 24小时痰标本——在集痰器里加少量清水 从清晨醒来未进食前漱口后第一口痰至次日晨未进食前漱口后第一口痰(24 小时)不可将唾液、漱口水、鼻涕混入痰标本中 三、咽试子标本的采集 目的:从咽部、扁桃体取分泌物作细菌培养或病毒分离 方法 ?查对医嘱、贴化验单 ?洗手、携用物至床旁、核对、解释 ?点燃酒精灯,嘱病人张口发“啊” ?用培养管里无菌长棉签擦拭腭弓、咽、扁桃体的分泌物 ?消毒试管口,棉签插入试管,塞紧 ?洗手、记录、送检 注意:1、棉签不要触及其他部位 2、避免在进食之后取标本 四、尿标本采集 常规标本

各种标本的采集方法

各种标本的采集方法 1.粪便标本:对水样便以吸管吸取1~3毫升,成型便采集成人拇指大小的便量,置于灭菌管内或经增菌后送检。任何容器均应加橡皮塞或将螺旋盖旋紧,容器外壁不可沾染粪便。采集肛拭子标本,以直肠拭子用保菌液或生理盐水润湿后,由肛门插入直肠内3~5厘米处采集,转动取出,插入保存液或无菌试管内送检。粪便标本应在2小时内尽快送检,否则标本应放入Cary-Blair运送培养基中。沾染粪便的衣物、物品、地面,以及尸体肠内容物等也可作为检材。所有采集的拭子标本(肛拭子、食品及操作台等的涂抹拭子),当直接用于PCR检测时,不能使用棉拭子和木质拭子棒,因为这类材料中含有核酸扩增抑制剂,而要使用灭菌人造纤维拭子和塑料棒。 2.呕吐物标本:以吸管吸取1~3毫升,置可密闭样品管立即送检。 3.食品标本:采集50~100克置于可密闭灭菌广口瓶、塑料瓶或厚的自封塑料袋内,常温下迅速送实验室。 4.水产品标本:通常选取活的或新鲜水生动物为采集对象,冰冻水生动物也可作为采集标本。采集水生动物鳃部和/或肠内容物等标本,置于采样瓶(管)或食品采样袋中密封,常温下送检;同时,以无菌棉签涂抹五只(条)以上的某类水生动物体表和/或水生动物肛门,置于碱性蛋白胨水中送检,每管碱性蛋白胨水作一份样品看待。有条件的可将水生动物整体采回实验室再进行处理。 5.水体标本:用灭菌的500毫升玻璃瓶采集相对静止的表层水(深度30 厘米以内)500毫升,加盖密封后以牢固自封塑料袋包裹密封,常温下送实验室。取水点的选择应结合流行病学调查资料而确定;每个采样点应相距数米;同一采

样点采集样本不少于2瓶,用于平行检测。采集标本的水体按可能污染有霍乱弧菌对待,因此采样者应注意自身防护,同时避免水样沾染周围环境。 6.物体表面标本:以灭菌拭子蘸碱性蛋白胨水涂抹可疑物体表面,置于装有碱性蛋白胨水的可密闭玻璃或塑料试管中,常温送检。

标本的正确采集

标本的正确采集、转运与处理 一、标本正确采集与转运的重要性和特殊性: 1、是实验前质量控制的主要内容; 2、主动权在临床科室; 3、占标本全部运行时间的50%,如果处理不好,全面质量管理就是一句空话。 二、病原微生物标本的采集、转送与处理原则: 1、安全性原则:防止实验室感染; 2、采集标本必须戴手套,穿工作服,必要时戴口罩; 3、容器必须不漏,并置入防漏塑料袋中,外侧分隔袋中插申请单; 4、不把带针头的注射器直接送入实验室,除非将针头保护起来; 5、泄漏的标本应要求重送,并高压灭菌就地处理。 三、标本选择和收集的一般要求: 1、选择适当标本,避免常住菌(背景菌)污染; 2、选择获取标本的正确解剖部位; 3、要有适宜的采样技术和设备; 4、厌氧标本很少用拭子,最好床边采集标本,不能冷冻,常温保存; 5、量要足,否则会有假阴性; 6、标本要标记姓名、编号、来源、日期等; 7、容器应不漏,并能提高致病菌生存率。 四、标本转送的一般要求:

1、2h内立即转送; 2、小量厌氧菌标本应15—30min内送检,活检组织在厌氧系统内25℃可存20—24h; 3、对环境敏感的细菌,如志贺氏菌、淋病球菌、脑膜炎奈瑟氏菌、流感嗜血杆菌,对冷敏感,故不要冷冻来自脑脊液、生殖器、眼或内耳标本; 4、标本的长距离转送要包装和标记。 五、用于厌氧菌培养的标本的接受要求: 1、可接受的标本: 用注射器的抽取物、组织、穿刺术的标本、胆汁、血液、骨髓、支气管刷、粪便查梭菌。 2、不可接受的标本: 鼻咽拭子、齿龈拭子、痰和气管抽取物,胃和肠道内容物、肛拭、接近皮肤和粘膜的分泌物、溃疡及粘膜层表面、排出的尿或导尿、外阴拭子、阴道或子宫拭子、前列腺分泌物或精液、粪便或直肠拭子。 六、常见临床微生物标本的采集与接种要求: 1、脓肿标本的采集: 1.1组织或液体标本优于拭子; 1.2开放式脓肿:脓肿深部边缘采样,脓肿壁或基底采样检出率高; 1.3封闭式脓肿:注射器抽吸脓肿壁边的脓液;

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