零溪镇中学探究非生物因素对某种动物的影响实验报告单小组成员：地点：时间：
一、背景资料
鼠妇,俗语称“海地板”,又叫潮虫,翻动花园、庭院中的花盆或石块,常会看到身体略扁、长椭圆形、灰褐色或黑色的小动物在爬动,这个小动物就是鼠妇。
二、提出问题
？
三、作出假设
针对你提出问题,作出假设：。
你作出这个假设的依据：。
四、制定并实施计划
（一）实验思路：
（二）实验材料具：
（三）实验装置的设计:
在铁盘内铺上湿布,以横轴中线为界,一侧盖上玻璃板,另一侧盖上纸板,
思考:为什么要在铁盘盘内铺上湿布? 。
为什么分别盖玻璃板和纸板?有更好的办法吗？。
（四）方法步骤
1、以小组为单位实验
2、将鼠妇放入实验装置,静置2分钟。
3、每隔1分统计一次明亮处和阴暗处的鼠妇数目,统计十次。
五、得出结论。
根据实验现象,你们得出的结论是：。
这与你们的假设一致吗?如果不一致的话，分析一下原因：
六、表达与交流
1、有更好的记录数据的方法吗？怎样处理数据能更形象直观地看出实验效果？
2、根据数据，你能得出什么结论？
3、如果将本班做同一实验的数据汇总取平均值，和某一个组的数据进行对比，哪个更科学？为什么？
七、讨论与思考
说说你在实验中有哪些的可取之处或不足？有哪些问题难以处理？
广州大学实习报告 项目名称：动物学实习 学院：生命科学学院 专业年级：13生物技术 学号：1314300053 姓名：肖敬旺 指导老师：舒琥、易祖盛、吴毅、李海燕 胡俊杰、侯丽萍、余文华 实习单位：广州大学生命科学学院 实习时间：2014.5.26—2014.5.30 广州大学教务处制
正文： 一、实习目的(宋体，加粗，四号,左对齐) 动物学是一门内容十分广博的学科，研究对象是动物各类群的形态结构、分类和有关的生命活动、发育规律、以及动物和外界环境之间多种多样关系的科学。 人们掌握了这些规律，就可能很好地认识和利用动物，使它能更对课堂知识的理解，做到理论联系实际；学会认识动物的特点，并且通过其特点对动物进行鉴定，了解其用途，以及在农业生产中的预防；掌握动物标本的采集以及制作方法；通过野外实习，提高学习的积极性与主动性对课堂知识的理解，做到理论联系实际；学会认识动物的特点，并且通过其特点对动物进行鉴定，了解其用途；掌握动物标本的采集以及制作方法；通过野外实习，提高学习的积极性与主动性；掌握所采集动物的种类名称、分类地位、分类依据、采集场所、采集方法、标本制作方法和生境描述等。 二、实习内容（宋体，加粗，四号、左对齐，） 5月26日至5月30日，在老师们的带领下，我们进行了为期5日的动物学实习。本次实习分为两个部分，分别是广州市内的陆上动物实习和深圳东山珍珠岛的临海动物实习。 5月26日，早上8:30在生化楼下进行了简单而重要的动物学实习动员。老师在动员大会上阐明了本次实习的目的、内容、要求和注意事项。随后我们变出发去中山大学博物馆参观，其中收藏的标本有国家一级保护动物大熊猫、金丝猴等37种，以及护士鲨、豹纹鲨、翻车鱼等百余种珍稀动物标本，此外还有北极熊、企鹅、鸵鸟等国外的珍稀动物标本；古生物化石标本500多件，其中7.8米长萨斯特鱼龙、3. 5米的新中国龙、兴义龙以及鳞齿鱼等具有极高的科研价值和展览价值。说实话这是第一次接触了那么多的动物标本。随后我们便出发去广州动物园，广州动物园于19 58年建成开放，目前饲养和展览着国内外400多种近5000头 (只) 动物，是我国三大城市动物园之一。在布局上，北部的麻鹰岗顶为猩猩馆、狒狒等灵长类兽舍，南坡设置中小型兽笼，西南坡有熊山、狮山、虎山、河马池等。与麻鹰岗隔湖相望的大片山岗地上，分布着猴山、熊猫馆、大象房、长颈鹿馆、犀馆、斑马馆、鹿舍等。 5月27日，早上8:30在生化楼下集中，随后我们去科学中心坐公交车向长洲岛出发。长洲岛的实习主要是捕捉昆虫，由于田野上的昆虫数量多而且种类繁多，所以我们主要在长洲岛附近的田野上进行捉虫活动。刚开始的时候，由于对捕虫网比较陌生，使用起来不太熟练，所以捕获的昆虫数量较少。但经过一个小时后，逐渐能熟练使用捕虫工具，慢慢捕获到一定数量和种类的昆虫。天气比较炎热，但是我们捕捉的非常愉快。下午，我们在生化楼504对捕获回来的昆虫进行处理，为今天捕捉到的标本展翅并制作标本，进行分类。 5月28日，早上8:30在生化楼集合，乘车向深圳东山珍珠岛出发。经过了将近３个小时的路程，我们来到了红树林并在此进行实习。红树以凋落物的方式，通过食物链转换，为海洋动物提供良好的生长发育环境，同时，由于红树林区内潮沟发达，吸引深水区的动物来到红树林区内觅食栖息，生产繁殖。由于红树林生长于亚热带和温带，并拥有丰富的鸟类食物资源，所以红树林区是候鸟的越冬场和迁徙中转站，更是各种海鸟的觅食栖息，生产繁殖的场所。红树林另一重要生态效益是它的防风消浪、促淤保滩、固岸护堤、净化海水和空气的功能。盘根错节的发达根系能有效地滞留陆地来沙，减少近岸海域的含沙量；茂密高大的枝体宛如一道道绿色长城，有效抵御风浪袭击。我们以小组为单位沿着泥沙
实验动物学实验报告 一、实验动物：小鼠 二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。 三、具体操作 1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。 2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药：常用的给药方式有： ①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。 5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢，用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两
一、实验目的 1、学习并掌握动物细胞培养的无菌操作技术。 2、学习并掌握细胞传代培养的方法。 3、学习并掌握用倒置荧光显微镜观察细胞细胞形态。 二、实验原理 细胞培养（cell culture）：细胞在体外条件下生长，细胞不再形成组织。 动物细胞培养（animal cell culture）就是从动物机体中取出相关的组织，将它分散成单个细胞（使用胰蛋白酶或胶原蛋白酶）然后，放在适宜的培养基中，让这些细胞生长和增殖。由于细胞具有生长和自我复制的能力，为细胞体外培养和研究提供可能。 动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。 原代培养（primary culture）即直接从动物机体分离、获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法。 传代培养（subculture）当细胞生长增值达到一定密度，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，将细胞转移到新的培养皿中扩大培养的方法。 高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的，但如果把或细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则方便简单的多。被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类探索防治各种疾病途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，因此，动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。 三、细胞培养相关设施及材料 1、细胞培养室 无菌操作区：只限于细胞培养及其它无菌操作，与外界隔离。 孵育区：培养箱设定的条件为37℃，5%CO2。 制备区：培养液及有关培养用液体的制备，液体制备后应该在净化工作台进行过滤除菌。 储藏区：包括冰箱、干燥箱、液氮罐等。 清洗区和消毒灭菌区：清洗区为相对污染区，消毒灭菌区与清洗区分开。 2、细胞培养常用基本设施： 荧光显微镜、超净工作台、孵箱、电热鼓风干燥箱、冰箱、液氮罐、消毒器、恒温水浴槽、滤器等。 细胞培养常用器皿：培养瓶、培养板、培养皿，玻璃瓶、吸管，离心管、冻存管，注射器，烧杯、量筒等。 3、细胞培养用品的清洗、消毒 新玻璃器皿要用5%稀盐酸浸泡，以中和其表面碱性物质：刷洗： 硫酸清洁液浸泡：浓硫酸+重铬酸钾+蒸馏水； 冲洗：流水冲洗15-20次，蒸馏水冲洗3次，三蒸水漂洗1-3次。 所有需灭菌的器械、物品灭菌前均需包装，防止灭菌后污染。使用时放入超净工
实验动物学实验报告 学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验
一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml。 3）心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，
进行实验研究的基本要素AEIR：动物、设备、信息、试剂。1．实验动物：是指经过人工定向培养、对其携带的微生物和寄生虫实行控制，其遗传背景明确，来源清楚，并在相应的环境设施内饲养，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。 2实验用动物：所有用于科学实验的动物统称为实验用动物。包括实验动物、野生动物、经济动物和观赏动物。 3实验动物和实验用动物的区别：实验动物具有一下特点：1实验动物是遗传限定的动物；2对其携带的微生物、寄生虫实行人工控制；3实验动物的目的用于科学研究。 4实验动物学：是研究实验动物和动物实验的科学。前者是以实验动物为对象研究其驯养、育种、繁殖、饲养、管理、解剖、生理及动物各种疾病的表现和防治，以及对野生动物的开发和应用；而动物实验则是应用实验动物进行生命科学的研究，包括各种实验方法、技术操作及人类疾病的动物模型复制等。 5实验动物的研究方向： 1推广“3R”实验（替代replacement、减少reduction、优化refinement）2转基因动物研究；3动物疾病模型的开发和利用；4动物组织器官的克隆研究；5实验动物福利。 1动物福利：就是让动物在康乐的状态下生存，其标准包括动物无任何疾病、无行为异常、无心理紧张压抑和痛苦等。基本原则包括：让动物享有不受饥渴的自由、生活舒适的自由、不受痛苦伤害的自由、生活无恐惧感和悲伤感的自由以及表达天性的自由。 动物福利包括物质（身体）和精神2个方面。物质方面很简单，一般指食物和饮水，只要供给及时、量足、营养丰富、清洁卫生就可以了。精神方面包括：适宜的生活环境，免受疼痛之苦，免受惊吓、不安和恐惧等精神上的刺激。当必须处死时，采用安乐死的措施等。 2动物福利的“五项基本福利”，“五大自由”，“五项标准”： 1为动物提供适当的清洁饮水和保持健康和精力所需要的食物，使动物不受饥渴之苦（免受饥饿的自由）。 2为动物提供适当的房舍或栖息场所，能够舒适地休息和睡眠，使动物不受困顿不适之苦（生活舒适的自由）。 3为动物做好防疫，预防疾病和给患病动物及时诊治，使动物不受疼痛、伤病之苦（免受痛苦伤害和疾病的自由）。 4保证动物拥有良好的条件和处置（包括宰杀过程），使动物不受恐惧和精神上的痛苦（免受恐惧和不安的自由）。 5为动物提供足够的空间、适当的设施以及与同类动物伙伴在一起，使动物能够自由表达习性（免受身体热度不适的自由；表达所有自然行为的自由）。 实验动物微生物学分类、概念、环境要求和应用范围： 1普通动物CV；2清洁动物CL；3无特殊病原体动物SPF； 4无菌动物GF和悉生动物GN。 1无菌动物GF：是指现有的检测技术在动物体内外的任何部位均检不出任何活的微生物和寄生虫的动物。饲养条件：无菌隔离器内（隔离系统）。应用：在生物医学研究中有较独特的作用；微生物学研究、免疫学研究、放射医学研究、营养代谢研究、老年病学研究、药理和毒理学研究、心血管病研究、肿瘤、寄生虫学、口腔医学研究。 2悉生动物GN：也称已知菌动物，指在动物体内带有明确的微生物种类的动物。饲养条件：无菌隔离器内（隔离系统）。应用：在多种研究中可代替无菌动物。微生物、免疫、微生物和寄生虫相互关系等的研究。 3无特殊病原体动物SPF：指动物机体内无特定的微生物和寄生虫存在，但带有非特定的微生物和寄生虫的动物。饲养条件：屏障环境。应用：适用于所有科研实验，是目前国际标准级的实验动物。各种疫苗生产所采用的动物应为SPF动物。 4清洁动物CL：除普通的动物应排除的病原外，不携带对动物危害大和对科学研究干扰大的病原体，是根据我国国情而设定的等级动物。饲养条件：屏障系统。应用：在我国已经成为用于科学研究的标准的实验动物；国际上仅用于短期试验或部分科学研究实验。 5普通动物CV：是在微生物学和寄生虫学控制上要求最低的动物，它要求不携带人兽共患病和动物烈性传染病的病原体。饲养条件：开放系统。应用：生物医学教学示教，预试验，不可用于科研、生产和检定。 无菌动物的形态学特点： 1消化系统：盲肠肥大，比普通动物的要大5-10倍；肠道肌层薄，肠绒毛变细变短；肝脏重量下降。2循环系统：心脏相对变小；白细胞数变少，且数量波动范围小。 3免疫系统：免疫机能基本处于原始状态。胸腺、淋巴组织、网状内皮系统发育不良；脾脏缩小，无二级滤泡，网状内皮细胞功能下降。 无菌动物的生理学特点1寿命：比普通动物长。2代谢和营养：武军动物血中含氮量少，肠管对水的吸收率低，代谢周期比普通动物长；体内不能合成维生素B和维生素K。 3生长率：不同种属生长率不同。无菌禽类生长率高于普通动物；无菌大、小鼠与普通动物差不多；无菌豚鼠、兔比普通慢。4生殖：无菌条件对动物生殖影响不大。大、小鼠因出生无感染，身体较好，其繁殖率高于普通大、小鼠；无菌豚鼠、兔比普通者低。5抗辐射能力强，抗实验性烫伤和抗休克死亡能力也强。6免疫功能：血清中IgM、IgG 水平低，免疫功能处于原始状态；应答速度慢；过敏反应，对异体移植的排斥反应以及自身免疫现象消失或减弱；血清中几乎不存在丙种球蛋白和特异抗体。 微生物学特点：在现有条件下检测不到任何微生物。 实验动物遗传学分类： 近交系动物、封闭群动物、杂交一代动物（F1代）。 1近交系动物：经至少连续20代以上全同胞兄妹交配培育而成，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先，该品系称为近交系动物。 特征：1基因位点的纯合性2遗传组成的同源性3表型一致性4遗传组成独特性5长期遗传稳定性6遗传特征的可辨性7国际分布的广泛性8背景资料完整性。 缺点：1近交衰退；2生产饲养成本高；3对外界环境敏感。 普交系应用： 1节省样本量。2组织细胞或肿瘤移植,个体间相容性一致。 3隐性纯合基因的暴露，获得先天性畸形及先天性疾病的动物模型，如糖尿病、高血压等。4某些品系自发或诱发肿瘤，成为肿瘤病因学，肿瘤药理学模型。5多个近交系同时使用，分析不同的遗传组成对某项实验结果的影响，或观察实验结果是否具有普遍意义。 重组近交系应用 重组近交系对祖系间有差异的性状和基因进行遗传分析是非常 有用的实验材料。如：分离分析，连锁分析，功能分析等 同源近交系的应用： 1在同一遗传背景下比较某基因位点上不同等位基因的遗传效应。2在不同遗传背景中研究同一基因与遗传背景及其它基因的关系。3消除杂合遗传背景对某些突变基因表达的影响，以获得更为稳定的实验动物模型4对复杂的多基因性状进行遗传分析。主要的近交系动物： C57BL/6、BALB/c、DBA/2、C3H、CBA、F344、SHR。 2封闭群动物： 以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个种群，在不从外部引入新的血源条件下，至少连续繁殖4代以上称为封闭群。 封闭群的特点和应用： 1封闭群动物具有杂合性并避免了近交，从而避免了近交衰退的出现，所以其生活力、生育力都比近交系强，具有繁殖力高，疾病抵抗力强的特点，可大量生产。 2封闭群就整体而言，由于没有引进新的血源，其遗传特性及其他反应性能保持相对稳定。但就群体个体而言，因其具有杂合性，所以个体间的反应性具有差异，因此，个体间的重复性和一致性没有近交系、系统杂交动物F1好。 根据这些特点，封闭群一般适用于药物筛选，毒理安全试验和教学。 常用的封闭群动物有：青紫蓝兔、新西兰兔、昆明小鼠（KM）、NIH小鼠、Wistar大鼠、SD大鼠、LACA封闭群小鼠等。 3杂交一代动物（F1代）： 根据科学研究的需要，有计划将2个不同近交系动物之间交配所获得的第一代动物，称为杂交一代动物，简称F1动物。特征及
实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,
动物标本实验报告 篇一：动物剥制标本的制作 动物剥制标本的制作 一、实验目的 动物剥制标本是一种利用动物皮张制成的标本，适用于大部分脊椎动物，尤其是鸟类和哺乳类，在动物学教学和科研中有着广泛的应用。 剥制标本分为真剥制和假剥制两类。真剥制就是将动物皮张还原为生活姿态加以展示。所谓假剥制就是不再将皮张还原为原来动物的姿态，而是简单的展示皮张上体现的特征。本实验为动物剥制实验中的真剥制。 二、实验用品 1. 工具：解剖刀，镊子，棉花，铁丝，剪刀，针线，解剖盘等。 2. 材料：家兔 3. 药品：樟脑粉 三、实验方法 1. 杀死家兔：利用折颈法 2. 清洁标本：如有血污沾染，用棉花醮少许冷水，细心将血污擦拭干净。 3. 剥皮：将家兔头朝左侧腹面向上放在实验台上，自胸部中线处将毛分开，向后到肛门处纵向切开皮肤，切时不
能过深，以见到肌肉为止，不要割开肌肉或腹腔，以防内脏和血污染毛皮。再继续将腹部两侧，背部及后腿部的肌肉与皮肤分离，并从股骨近端处剪断，再将生殖器、直肠与皮肤连接处剪断，清除尾基部的结缔组织，用手轻轻捻搓尾部，使皮与肌肉松动，然后一手握住尾根，另一手用拇指和食指卡住尾根，然后用力拉出尾椎骨。剥头部时，需特别注意，将毛皮继续上剥，用解剖刀边划割边上拉毛皮。眼耳处要翻剥，千万不能割破皮肤，耳朵的软骨小心剪断，否则兔子的耳朵竖不起来。沿着眼睑边缘细心地剖割，切勿割破眼睑和眼球。眼球剥离后，继续剥到上下嘴唇的前端为止，保留少许上、下唇皮跟头骨相连。随后用骨剪截断颈椎，使躯干和头骨分离。前后肢要小心翻剥，后肢翻剥到脚踝处，留腓骨，剥净趾骨基部的肌肉(留下趾骨，便于生态整形)，将皮上附着的脂肪和肌肉除净。头骨放入水中煮熟，仔细的将脑髓，肉等都清理干净。剥皮要特别小心，总体上是先剥身体再剥四肢，头部要特别小心。 4. 涂防腐剂：涂时要均匀，特别是颅腔内要多涂些，涂时要注意尽量勿碰脏毛皮，要都涂遍不能有漏除的地方。 5. 做支架：取三根合适长度的铁丝，头部脊柱、四肢共用三根铁丝（左前肢与右前肢，左 后肢与右后肢，头部脊柱连通尾各一根)，要设计好各部分的长短比例，三者拧在一起。
广州大学实习报告 项目名称：动物学实习学院：生命科学学院 专业年级：学号：姓名：肖敬旺指导老师：实习单位：广州大学生命科学学院 实习时间： 13生物技术 1314300053 舒琥、易祖盛、吴毅、李海燕 胡俊杰、侯丽萍、余文华 2014.5.26—2014.5.30 广州大学教务处制 正文： 一、实习目的 (宋体，加粗，四号,左对齐) 二、实习内容（宋体，加粗，四号、左对齐，） 5月26日至5月30日，在老师们的带领下，我们进行了为期5日的动物学实习。本次 实习分为两个部分，分别是广州市内的陆上动物实习和深圳东山珍珠岛的临海动物实习。 5月27日，早上8:30在生化楼下集中，随后我们去科学中心坐公交车向长洲岛出发。 长洲岛的实习主要是捕捉昆虫，由于田野上的昆虫数量多而且种类繁多，所以我们主要在长 洲岛附近的田野上进行捉虫活动。刚开始的时候，由于对捕虫网比较陌生，使用起来不太熟 练，所以捕获的昆虫数量较少。但经过一个小时后，逐渐能熟练使用捕虫工具，慢慢捕获到 一定数量和种类的昆虫。天气比较炎热，但是我们捕捉的非常愉快。下午，我们在生化楼504 对捕获回来的昆虫进行处理，为今天捕捉到的标本展翅并制作标本，进行分类。 5月28日，早上8:30在生化楼集合，乘车向深圳东山珍珠岛出发。经过了将近３个小 时的路程，我们来到了红树林并在此进行实习。红树以凋落物的方式，通过食物链转换，为 海洋动物提供良好的生长发育环境，同时，由于红树林区内潮沟发达，吸引深水区的动物来 到红树林区内觅食栖息，生产繁殖。由于红树林生长于亚热带和温带，并拥有丰富的鸟类食 物资源，所以红树林区是候鸟的越冬场和迁徙中转站，更是各种海鸟的觅食栖息，生产繁殖 的场所。红树林另一重要生态效益是它的防风消浪、促淤保滩、固岸护堤、净化海水和空气 的功能。盘根错节的发达根系能有效地滞留陆地来沙，减少近岸海域的含沙量；茂密高大的 枝体宛如一道道绿色长城，有效抵御风浪袭击。我们以小组为单位沿着泥沙 滩采集贝壳，因为路不好走，所以走得时候很小心翼翼。虽然鞋子都沾满了泥，不过非 常开心。随后我们坐车去我们住宿的地方，吃过晚饭后我们便在篮球场上对我们今天的贝壳 之类的进行分类。 5月29日，早上9点钟我们出发去南澳岛参观了卖鱼的市场，认识了许多之前未见过的 种类，随后我们便去买东西吃了，哈哈蹭吃，非常开心。下午我们便出发去小岛收集贝壳， 最爽的事情莫过于坐飞艇了，那速度就是快，特别是在超越别人的那一刻，内心不免有一丝 自豪感，在到达岛屿后我们便分工合作，去海边，沙滩等地方寻找我们所期望的东西，我们 发现了许多海胆海参之类的东西，甚至有些东西开始把海胆直接弄到就吃，太厉害了，持续 了将近3个小时的海边收集工作我们坐船回去了，还是那种感觉，坐船非常爽。晚上我们便 又是在球场上面开始工作了，一起工作的时光总是那么美好，但是又是那么短暂的。 5月30日，上午，我们在珍珠岛上观看工人植珠过程操作，并去了标本室看标本，大家 也购买了一些珍珠粉之类的。中午吃完饭后，大家整理个人内务后乘车返回大学城。至此， 整个动物学实习过程结束。 ……… 三、实习总结或体会（宋体，加粗，四号、左对齐，）
专业班级：学号：姓名：同组人： 实验日期：年月日室温：大气压： 实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍 一、实验目的 掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。 二、实验原理 生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。 三、主要仪器、试剂、材料及装置图 1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等 2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等 3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等 四、实验步骤、现象及记录 1、教师提出生理学实验的要求 2、讲解生理学的常规实验方法 3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途 五、实验结果及数据处理 六、实验讨论及思考题解答 1、生理学实验的重要性在于何地生理学实验有什么具体的要求和规则 答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。 2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么 答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。 3、举例5种常用手术器械的名称、持握方法和用途。 4、举例3种生理学实验常用仪器设备的性能和主要用途。
实验动物学实验报告 Document number：NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT
实验一大、小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。 二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。 三、实验步骤 1、抓取和固定 抓取：左手抓小鼠的尾根部 固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。 同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定： 抓取和固定小鼠 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。 同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。 3. 给药 灌胃法 按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。 用大鼠重复同样操作 注射给药 皮下注射 用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤， 右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位 用大鼠重复同样操作 腹腔注射 以左手固定小鼠，使腹部向上， 右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。 用大鼠重复同样操作 尾静脉注射 先将动物固定在暴露尾部的固定器内， 用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，
实验动物学实验报告 学院: 学号: 姓名 时间: 实验一:小鼠实验 一、实验目得 1、掌握小鼠抓取、固定得基本方法; ２、掌握小鼠得雌雄鉴别方法; 3、掌握小鼠得标记方法; ４、掌握小鼠得基本采血技术; ５、掌握小鼠得常用给药方法; ６、掌握小鼠得解剖方法,熟悉内部脏器得自然位置; 二、实验材料 1、实验动物:每组两只雌鼠,两只雄鼠; 2、实验器械及试剂:鼠笼;小鼠固定器与小鼠固定板;眼科剪;眼科镊;解剖刀;1ml 注射器;毛细玻璃管;灌胃针;苦味酸染料;葡萄糖液;2%水合氯醛; 三、实验内容及方法 1、小鼠得抓取与固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起,置于鼠笼或实验台向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指与食指抓住小鼠得两耳与颈部皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小指按住后腿即可、这种在手中固定方式,能进行实验动物得灌胃、皮下、肌肉与腹腔注射以及其她实验操作。 2、小鼠得雌雄鉴别 雄鼠得阴囊明显,雄鼠可见阴道开口与五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门得距离判定,近者为雌,远者为雄、另外,雌鼠肛门与生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门与生殖器之间长毛。
3、小鼠得标记方法 １)耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口,左耳为十位,右耳为个位。 ２)剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠; 3)染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物得不同部位,注意逆着毛发生长方向刷。 ４、小鼠得基本采血 １)剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾,将鼠尾在４5℃温水中浸泡数分钟,也可用酒精棉球涂擦,使局新血管扩张。将鼠尾擦干,再用刀片剪去1—2ｍm,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取,同时自尾根部向尾尖按摩。取血后,先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤口、也可采用切割尾静脉得方法采血,三根尾势脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向切割,每次可取0、2~0、3ｍl血,切割后用棉球压迫止血、这种采血方法在大鼠进行较好,可以较长得间隔时间连续取血,进行血常规检查。 2)眼眶后静脉丛取血 当需中等量得血液,而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部静脉血液回流困难,使眼球充分外突(示眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管,沿内眦眼眶后壁向喉头方
影响实验动物的环境因素 摘要实验动物在生命科学研究领域中的应用不断发展,其饲养环境问题已越来越被国际所关注。实验动物几乎终身被限制在一个有限的环境中生活，这种环境就成了实验动物赖以生存的条件。良好的实验动物环境不仅是对动物本身的保护,更重要的是对动物试验结果的保证。本文详细论述了气候因素(温度、湿度、通风等方面)、理化因素(噪音、粉尘、光照)、居住因素（饲养器具、垫料）、生物因素（饲养密度）及营养因素（饲料、矿物质、维生素）对实验动物的影响。 关键词实验动物环境；影响因素 实验动物(Laboratory animals)是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。实验动物生长发育、繁殖交配所赖以生存发展的特定场所和外在条件，称为实验动物的环境。可将其分为外部环境(OutsideEnvironment)（指实验动物和动物实验设施以外的环境）和内部环境(Inside Environment)（指实验动物和动物实验设施内部，即动物直接生活的场所）。影响实验动物的环境因素有：气候因素、理化因素、居住因素、生物因素和营养因素。 1.气候因素影响实验动物的环境因素 气候理化居住生物营养
影响实验动物的气候因素主要有温度、湿度、气流、风速、换气次数等，本文主要叙述以下几种： 1.1温度 外环境温度随季节交替而变动，并与设施所处的地理位置相关联，即使在一昼夜内温度也有很大变化。温度是影响动物代谢和行为的最主要的环 境因素，温度同时影响实验数据的可靠性，实验动物设施建立精确的温度 控制是必要的，不同动物的环境温度应该保持在不同的范围还应该强调的 是标准给出的温度只适合成年的普通的动物，新生的、幼小的、无毛的、 刚做过手术的、生病的或者受伤的动物一般情况下要求更高的温度水平， 确定温度控制的前提是要依据动物体温的变化、动物特殊的生理状态或者 实验步骤要求。 1.2湿度 外环境空气中含有水汽，因而为湿空气。湿空气中含水汽的多少用绝对湿度和相对湿度来表示。绝对湿度是指每立方米空气中实际的含水量；相对湿度是把湿空气中的实际水蒸气分压与该温度状态下能够存在的最大水蒸 气压之比，用“％”表示。湿度过高或过低都会影响实验动物生长发育及 健康状况。一般认为在40％～70％相对湿度范围内，实验动物能很好适应。某些物种，例如大鼠和沙鼠，相关的湿度需要控制在相当窄的范围内来减 少可能出现的健康或福利问题。有一些物种，例如狗，可以忍耐很大的湿 度范围。欧洲啮齿类动物饲养设备内的相对湿度要求保持在45%～ 65%之间。但是沙鼠的相对湿度应该保持在35% ～ 55% 之间，兔子饲养设备内的相对湿度应该不少于45% ，猫可以在一个很宽的相对湿度波动范围内生活而不 会产生不良影响[1]。 1.3通风 通风的主要目的是提供充足的质量符合的新鲜空气以及将气味、有毒 气体、粉尘和传染源控制在最低水平，同时消除热量和湿气[2］。动物饲养 间里的空气最好是不间断地更新。动物饲养间必须有足够通风，如果周围 空间使用机械通风并过滤进入室内的空气，或者其他类型的对周围空间设 置特殊的独立空气供应( 即，供应空气并非来自室内) 时，不对动物饲养
昆虫学的实验报告 篇一：昆虫学实习报告 一、实习目的 通过到野外采集昆虫并制成标本，掌握野外采集昆虫的方法、了解不同昆虫的生存环境。掌握昆虫的形态特征，学习昆虫的识别方法和种类、了解昆虫与植物病虫害的关系。 二、实习地点 白羊沟、流村、北农校园 三、实习时间 201x年9月24号、25号 四、实习内容 采集昆虫 1.使用工具 捕虫网、毒瓶、镊子、手套、采集管等。 2.采集昆虫的方法 网捕：网捕主要用来捕捉会飞的昆虫，或停在植物上的昆虫。网捕的方法如下：当昆虫飞来，迎面用网捕捉，当虫子入网后，使网底向上甩，连虫子同网底一齐翻到上面来，然后再用手或试管伸入网内将虫子取出来。 扫捕：此法主要用在大片的草丛和茂密的灌木中。当采集者走到茂密的藏有虫子的草丛中时，用扫网在上面左右摆动，一面扫一面前进，将有许多小虫子集中到网底，或者被甩入网底，连接着胶管中。尤其
在途中采集而时间仓促的时候，边扫边走也可以得到许多标本。震落法：在黄昏或中午炎热时，可用震落法采到金龟子、锹形虫、象甲、叶甲、蝽象等种类。对于蚜虫、蓟马等小型昆虫，可以直接击落到网中或硬纸片上，也可用小毛笔收集到酒精中。 观察和搜索法：要采到需要的标本，必须了解昆虫的生活习性及活动场所。有许多昆虫营隐蔽生活，在树皮下和树干内可采到天牛、吉丁虫、小蠹虫、木蠹蛾、透翅蛾、象甲和扁甲、郭公虫的幼虫或其它虫期。蚜虫、木虱或某些蚧虫的分泌物常可为人发觉，也可根据爱食其分泌物的蚂蚁、蝇或天敌瓢虫的存在来采集蚜虫及蚧虫，同时也常可采到其天敌草蛉、蝎蛉、瘿蚊等；沫蝉幼虫的分泌物常在枝上形成泡沫，其自身躲在里面。由植物的被害状发现昆虫，如咀嚼式口器昆虫为害后的植物叶片，常留下啃食过的痕迹和留下的粪便。 3、捕捉昆虫的时间及地点 昆虫种类繁多，生活习性各异，一般来说，一年四季均可采集， 但由于昆虫的发生期和植物生长季节大致是相符的，每年晚春至秋末，是昆虫活动的适宜季节，也是一年中采集昆虫的最好时期。对于一年发生一代的昆虫，应在发生期采集。采集的季节，主要根据自己的目的和需要来决定。一天之间采集的时间也要根据不同的昆虫种类而定。日出性的昆虫，多自上午10时至下午3时活动最盛。夜出性昆虫在日落前后及夜间才能采到。温暖晴朗的天气采集收获较大，而阴冷有风的天气，昆虫大多蜇伏不动，不易采到。 采集地点也要依据采集目的而定，根据不同种所处生态环境而选择
动物学草履虫实验报告 篇一：草履虫的系列实验 草履虫的系列实验 纪星宇（XX4） 一、目的与内容 1.学习原生动物的采集、单克隆培养和鉴种 2.探究原生动物的应激性，理解原生动物应激性的原始性 3.观察原生动物的无性生殖过程和规律 4.观察草履虫食物泡的变化，研究食物泡中的PH变化 5.比较原生动物和后生动物组织细胞对刺激反应的异同 6.学习常用试剂的配制和使用 *7.了解原生动物有性生殖的方式和决定因素，研究接合生殖前后大核系的变化内容：草履虫的采集与鉴种草履虫横二分裂的观察草履虫食物泡的观察草履虫趋性的实质 后生动物激素对原生动物的影响常用生物学试剂对原生动物的作用草履虫相对接合型的鉴定光线对接合生殖的影响 草履虫接合生殖前后接合型的变化 二、材料与用品 新鲜稻草、烧杯、滤纸、酒精灯、玻璃棒、过滤漏斗、玻璃导管、广口瓶、标签纸、台灯、表面皿、
微吸管、试管、PH试纸、镜台尺、载玻片、盖玻片、培养皿、离心机、棉球、恒温箱、托盘天平、量筒、温度计、中性红纯乙醇溶液、2%秋水仙素溶液、1%乙醚溶液、0.02%詹纳斯绿B染液、20%丙酮溶液、碳酸氢钠、蒸馏水、0.01%肾上腺素、0.01%胰岛素、碘液 三、操作与观察 （一）草履虫的采集与鉴种 1.配制稻草培养液 取新鲜稻草（注意清洗以除去肥料和农药）10g和碳酸氢钠1g，加入1L 清水于烧杯中 煮沸10~15min，直至液体成为清亮的黄褐色。趁热过滤后煮沸10min，在烧杯上蒙上双层洁净纱布，保温在20~30℃，培养3d 直至液面出现灰白色薄膜。通入充足空气备用。 2.采集自然水体中的草履虫 在水流缓慢，有机质丰富的水体中取带有微小白色浮渣的自然水。取池塘、下水道、 水田、湖沼各一处，分别采水250ml（注意水样不要混入泥沙渣滓，运输时不要封口）。依次编号为A、B、C、D。水面上20cm处施加垂直光照24h。 3.草履虫的单克隆培养 在表面皿中放适量蒸馏水，在体视显微镜下吸取单个草履虫（可利用其趋电性分离以
动物学河蚌系列实验实验报告河蚌的解剖与观察实验报告 一、课题名称：河蚌系列实验二、文献综述：动物学实验（白庆笙、王英永编著）（高等出版社）三、实验目的和要求： 1. 学习解剖观察河蚌内部器官的。 2. 通过对河蚌外形及内部结构的观察，了解软体动物门的一般特 征及其与生活方式相适应的特征。 3. 了解变温动物心博频率与温度的关系。四、实验条件： 1 、实验：活河蚌。 2 、实验器材：显微镜、放大镜、恒温水浴锅、温度计、解剖器具、解剖盘、载玻片、滴管。 3 、实验药品: 炭末水混合液。五、实验原理和方法： 方式，河蚌是典型的代表；六、实验步骤设计 1 （1）外形壳分左右两瓣，钝圆的一端是 2
扭转刀柄，将壳稍撑开，缝隙，再以刀锋紧贴左贝壳内表面切断 前、后闭壳肌及其附近的肌肉，将镊子柄取出。揭开左贝壳。 从入水口沿鳃上腔边缘至唇瓣至前闭壳肌腹缘剪掉左侧外套膜， 即可进行实验和内部结构。 3 、心脏搏动与水温关系 （1 ）在内脏的背侧，即贝壳绞合部附近找到围心腔，仔细观察， 可见心脏在其周围搏动。 （2 ）将河蚌置于盛有室温水的水浴锅内，让水淹没心脏，记录 此温度下每分钟心博次数。 （3 ）将预先制好的冰块放入水浴锅内，使水温逐渐下降，直到 4C 左右。此时心脏基本不跳动（心博频率）。 （4 ）逐步加温，用温度计随时测量水温。水温每升高1~2C,记录一次心率
4 、内部构造观察⑴ 原位观察 ?前闭壳肌和后闭壳肌；伸足肌、缩足肌?外套膜、外套腔、外套线；入水管、出水管?斧足?呼吸系统：鳃瓣、（从出水口剪开一鳃瓣的鳃上腔）鳃小瓣、瓣间隔、鳃丝、丝间隔和鳃上腔。 ?循环系统：观察河蚌的心脏（心室、心耳）操作：沿鳃的上缘 剪掉左侧腮?? ，即 ?? 5 、钩介幼虫的观察 11 对左右对称的小贝壳，贝1条1 2 、河蚌的解剖 内部构造的观察（1）原位观察 ?斧足?呼吸系统：鳃小瓣、瓣间隔、 循环系统：观察河蚌的心脏（心室、心耳）、动脉干