《实验动物学》复习题及答案
1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下
答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。
腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。
肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉，如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药
尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针
2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药
答：（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。
（2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。
（3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法
答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。
皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。
腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。
肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉。如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药
尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针
4、血清和血浆有何不同？它们如何制备？
答：血浆是由抗凝的血液中分离出来的液体，其中含有纤维蛋白原，不含游离的Ca2+。血清是由凝固的血中分离出来的液体，不含纤维蛋白原，但含有游离的Ca2+ 。
血浆的制备新鲜全血中加入抗凝剂为抗凝血,由抗凝血离心后的上清液是血浆
血清的制备新鲜全血离心后的上清液为血清
5.▲常用的麻醉药物有那些？请举出三种麻醉药及其用法
答：挥发性麻醉剂如乙醚、氯仿；
非挥发性麻醉剂(1)戊巴比妥钠：戊巴比妥钠麻醉时间不很长，一般可持续3～5 小时，十分符合一般实验要求。所以是最常用的麻醉剂。(2)硫喷妥钠：麻醉诱导和苏醒时间短，一次用药仅可维持数分钟。(3)水合氯醛：其麻醉量与中毒量很接近，故安全围小。水合氯醛的常用浓度1％。(4)氨基甲酸乙酯(乌拉坦)：此药是比温和的麻醉药，安全度大。乌拉坦常用浓度20～25％。
6、▲按微生物学的标准，国际上和我国的实验动物可以分为几类？它们具体名称是什么？
答：国际标准：四类：无菌动物、悉生动物、SPF 动物和普通动物。国内按微生物学标准分类：普通级动物、清洁级动物、无特定病原体动物、无菌动物和悉生动物。
7、实验动物为何需要标记？如何标记？试举例说明
答：大鼠和小鼠的编号一般都用不同颜料涂染皮毛的方法来标记，常用的涂染化学品如下①涂染黄色用3～5%苦味酸溶液；②涂红色用0.5%品红溶液等。前者最常用。在动物固定的不同部位涂上苦味酸斑点表示不同号码。一般习惯在左前腿上为1，腰部为2，在左后腿上为3，在头部为4，在正中为5，在尾基部
位6，在右前腿为7，在右侧腰部为8，在右后腿上为9，不涂染鼠为10。如果试验时动物编号超过10，可在动物同一部位上再涂染另一种涂染剂。
8、小鼠采血可采用那些途径和方法？
答：眶静脉丛（窦）采血、眶动脉和眶静脉取血、尾静脉采血、大血管采血
9、小鼠和大鼠的雌雄如何鉴别？请演示一下
答：哺乳类动物性别依据动物的肛门与外生殖器(阴茎或阴道)之间的距离加以区分。雄性要比雌性的距离更长。
10、小鼠的处死方法有那些？请具体演示一下
答：颈椎脱臼法、断头法、击打法
11、家兔的给药方法有那些？请演示一下家兔的静脉给药
答：灌胃、皮下、肌内、腹腔注射、静脉注射。静脉注射：将家兔置固定箱内，拔去耳克外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管暴露。用左手拇指和中指捏住兔的耳尖，以食指垫在兔耳拟进针部位的下面，右手持注射器，从近耳尖处将针头刺入血管。推注时如有阻力，局部出现肿胀，表明针头不在血管内，应立即拔针重新穿刺。
12、如果你需要做一个药物的药理试验，你如何确定用药的剂量？
答：(1)先用小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量1／l0～1／5。(2)化学药品可参考化学结构相似的已知药物，特别是结构和作用都相似的药物剂量。(3)已有临床经验的药物（中药或西药）可按临床剂量推算。(4)确定动物给药剂量时，要考虑给药动物的年龄大小和体质强弱。(5)确定动物给药剂量时，要考虑因给药途径不同，所用剂量也不同，以口服量为l00 时，灌肠量应为100～200，皮下注射量30～50，肌肉注射量为25～30，静脉注射量为25。(6)确定剂量后，可根据与实验结果调整剂量
13、▲已知戊巴比妥钠家大鼠腹腔注射时的适当剂量为50mg/kg，现有2.5％的药液，体重500g 的大鼠应注射多少毫升?
答：500mg/kg×0.5kg÷2.5g/100ml=250mg÷25mg/ml=10ml 14、大鼠的处死方法有那些？请演示一下。
答：颈椎脱臼法、断头法、击打法
15、▲请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下胃、十二指肠、盲肠、胆囊、胆总管
和胰脏。
16、▲请对小鼠或大鼠进行尸检，辨认以下肾、肾上腺、膀胱、胸腺。
17、▲请辨认以下小鼠或大鼠的性别，并解剖，找出卵巢和子宫。
18、请简述离体实验和整体实验各自的特点。在本课程的实验中，哪些为整体试验？那些为离体实验？
答：离体实验是在体外影响因素较少实验结果准确但是有时不太全面，与实际有差异，整体实验在动物体内受到的干扰因素较多不宜控制但是更能真实反映药物对整体的作用
离体蛙心的实验为离体实验，整体实验为药物的抗惊厥作用实验，药物的镇痛作用实验，奎尼丁对实验性心律失常的影响，家兔血压的测定
19、▲请简述生理溶液主要由那几部分组成，并举出一、两种常用的生理溶液答：NaCl、KCl、MgSo4.H2o、NaH2Po4.h2o、KH2Po4、、NaHCo3 、CaCl2、葡萄糖
常用的生理溶液：任氏液、台氏液
20、▲试举例说明何谓有效数字？0.0045 ，250.0 ，35.55 分别为几位有效数字？如果缩小一位有效数字，其尾数如何取舍？如求三数之积，其积的有效数字应为几位？
答：有效效字是指能反映出被测量实际大小的全部数字，包括几位可靠数字加上一位欠准数字。它不包括数字前的零，但包括数字后的零，它与小数点的位置无关。0.0045 为 2 个有效数字，250.0 为 4 个有效数字，35.55 为 4 个有效数字“四舍六入，逢五化偶”的规则(不是四舍五入) 当尾数是五时，如前一位数是偶数则将五舍去；如为奇数则进一，使末位数化为偶数。
积的有效数字为：得数的最大相对误差是各实测值相对误差之和。亦可按实用简法计算，即乘除得数的有效位数等于或小于实测值中最小的有效位数。
21、根据药理实验的不同，药理实验结果资料可分为哪几类？试举例说明之。答：计数资料：如扭体数、成活数、死亡数、产仔数等
计量资料：如血压、体重、血糖、尿量、血细胞数等
计时资料(时反应资料)：离体蛙心收缩强度、频率和节律等等级资料(半定量资料)：用药后疾病的变化可分为痊愈、显效、改善、无效和恶化；组织的病变程
度可分为＋＋＋、＋＋、＋、±、－；疼痛的缓解可分为高度、中度、轻度、无效等。
22、试列举两种抗惊厥的实验方法？抗惊厥实验适用于那些药物的药理研究。答：电刺激法和药物致惊法可用于抗癫痫药的研究
23、试列举两种镇痛的实验方法？镇痛实验适用于那些药物的药理研究
答：热板法和跖刺激法作用于神经系统的药
24、在实验报告中对表格由哪些特殊要求？药物剂量如何表示？
答：表格要求是三线表，动物实验药物剂量的表示方法：一般按mg/kg 或g/kg 体重计算。
25、计数资料和计量资料一般应采用何种检验的统计学处理？试举例说明。
答：计数资料用χ2 检验，如镇痛实验中的动物扭体数计量资料用t 检验，如测血压实验
26、▲实验设计的基本原则是什么？试举例说明之
答：（1）对照性原则，如实验中设空白对照组阳性对照组。
（2）重复性原则，是指同一处理要设置多个样本例数。一般估测的样本数：小动物(小鼠、大鼠) 每组10-30 例：计量资料每组不少于10 例，计数资料每组不少于20 例。中等动物(豚鼠、家兔)每组8-20 例；计量资料每组不少于8 例，计数资料每组不少于20 例。
大动物(犬、猫)每组6-20 例；计量资料每组不少于 6 例，计数资料每组不少于20 例。
（3）随机性原则，随机性原则就是按照机遇均等的原则进行分组。其目的是使一切干扰因素造成的实验误差尽量减少，而不受实验者主管因素或其他偏性误差的影响。随机化的手段可采用编号卡片抽签法，随机数字表或采用计算机的随机数字键。
27、在本课程的实验中，我们采用了那些动物模型?
答：惊厥实验动物模型，热板致痛模型，离体蛙心模型，心律失常模型
28、▲在镇痛实验中，我们对实验资料采用了何种统计学处理方法？试举例说明之。
答：χ2 检验和t 检验化学刺激法观察药物的镇痛作用的实验结果用的是χ2 检
验热板法观察药物的镇痛作用的实验结果用的是t 检验
29、动物实验中所测数据的有效数字如何确定？其尾数如何取舍？
答：包括几位可靠数字加上一位欠准数字，它不包括数字前的零，但包括数字后的零，它与小数点的位置无关。由仪表最小刻度值向下估读一位“四舍六入，逢五化偶”的规则(不是四舍五入) 当尾数是五时，如前一位数是偶数则将五舍去；如为奇数则进一，使末位数化为偶数。
30、在热板法的镇痛实验中，应选择何种性别的动物作实验，为什么？
答：一般选择雌性动物，因为雄性动物的阴囊部位对热敏感
31、筛选抗癫痫大发作的药物，可选择何种动物、用何种模型进行实验？
答：可以用大小鼠，可以用化学法，电刺激法模型进行实验32、▲按遗传学分类，实验动物可分为几类，我们常用的昆明种小鼠和SD 大鼠属于那一类？答：近交系、封闭群、杂交一代动物（F1 代）昆明种小鼠和SD 大鼠属于封闭群
33、大鼠采血可采用那些途径和方法？
答：（1）眶静脉丛（窦）采血（2）眶动脉和眶静脉取血（3）尾静脉采血（4）大血管采血还可用断头取血、心脏取血
34、药理科研实验常分为那些组别？试举例说明之。
答：对照组、给药组。如对照组有阳性对照组、阴性对照组、模型组；给药组又有高、中、低剂量组
35、计数资料和计量资料的药理实验对实验动物数有何要求？试以小鼠为例说明之。
答：小鼠每组10-30 例，计量资料每组不少于10 例，计数资料每组不少于20 例
36、▲盐酸吗啡小白鼠灌胃给药的剂量为20mg/kg。问宜将吗啡配成何种浓度的溶液，方便于给药?
答：一般小鼠以0.2ml/10g=20mg/kg 给药，现在剂量是20mg/kg 那么20mg/kg÷20mg/kg=1mg/ml,浓度也就是0.1%
37、▲已知盐酸氯丙嗪的小白鼠灌胃剂量为25mg/kg，试考虑配制盐酸氯丙嗪溶液时应选择的浓度，并计算体重20g 的小鼠需注射此种溶液的毫升数
答：一般小鼠以0.2ml/10g=20mg/kg 给药，现在剂量是25mg/kg
25mg/kg÷20mg/kg=0.00125mg/ml,浓度也就是0.125% 20g 小鼠给药体积：
0.2ml/10g×2=0.4ml
38、▲“3Rs”指的是什么？简述“3Rs”概念的含义？
答：
实验动物3R原则是指：Reduction（减少）Replacement（替代）Refinement （优化）
Reduction (减少)是指减少试验的次数和试验用的动物，同时保证数据信息的数量与精确度。
方法:使用适合的动物品种、品系和高质量的实验动物，改进实验设计、规范实验动物操作程序等。
Replacement(替代) 是指使用其他方法而不用动物进行的试验或研究，或是使用没有知觉的试验材料代替神志清醒的活的脊椎动物进行试验的一种科学方法，包括：
①低级动物代替高级动物、小动物代替大动物。
②用组织学实验代替整体动物实验。
③用分子生物学方法替代动物实验。
④人工合成材料替代动物实验。
⑤利用数学及计算机模拟动物各种生理反应替代动物实验。
⑥用物理、化学和信息技术方法代替实验动物的使用
Refinement(优化) 是指在必须使用动物时，通过改进条件，善待动物，提高动物福利，尽量减少非人道程序的影响范围和程度。避免或减轻给动物造成的与实验目的无关的疼痛和紧张不安的科学方法。
39、实验动物的概念是什么？
答：实验动物是指经人工饲育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或者
来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。
通常将用于实验的各种动物称为实验用动物，包括实验动物、家畜（禽）、观赏动物和野生动物三大类。
40、实验报告包括哪些内容？
答：动物实验报告一般包括实验名称、实验目的、实验材料、实验步骤、实验结果和实验结论等内容。
41、▲配置人工生理溶液的注意事项有哪些？
答：（1）、蒸馏水要新鲜，最好用重蒸馏水。
（2）、配制时要用无水氯化钙
（3）、配制时如有碳酸氢钠或有磷酸二氢钠则必须充分稀释后才可以加入已经溶好的氯化钙中，边加边搅拌，以免产生混浊和沉淀。
（4)、含有碳酸氢钠或葡萄糖的溶液，储存的日期都不能过长。
42、什么是近交系动物？有何优点？
答：近交系动物：经至少连续20代以上全同胞兄妹交配培育而成，品系内所有个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先，该品系称为近交系动物。近交系动物培育达到20代后，从理论上讲98.6%的基因位点都是纯合子。具有基因纯合性、遗传稳定性、同基因性、表现型的均一性、个体性、可分辨性等等特征。一般称之为纯系动物。
近交系的优点是可以获得精确度高的实验结果，而且各项实验结果极易重复，具有可比性，对各种应激反应均一，周期短，使用动物少，可作病理模型，遗传背景明确。
43、什么是封闭群动物？有何优点？
答：对于一个只进行群体内随机交配的群体而言，虽然在群体内个体之间因等位基因不同儿各具遗传特性，即杂合性，但整个群体遗传特性却因基因频率代代不变而保持相对稳定。这种既不以近交进行交配，也不引入任何外来血源，从而保持了群体的一般遗传特性，又具备杂合性，这样的群体称为封闭群动物。由于封闭群繁殖率高，具有杂合性，适用于大量繁殖，以满足生物制品、制药厂各种药品的安全性和效价等多动物的大量需要。
44、什么是杂交一代动物（F1代）？有何优点？可以自身繁殖而遗传组成不变
吗？
答：杂交一代动物是指根据科学研究的需要，有计划的将两个不同近交系动物之间进行交配所获得的第一代动物，简称F1动物，也可以叫“系统杂交”或“子一代”、“杂种一代”动物。F1动物是由两个不同品系的近交系杂交培育而来，具有杂交优势，对外界的适应能力和抗病能力强，产仔率高，克服了因近交繁殖引起的各种近交衰退现象；但也具有近交系的优点，具有与纯系动物基本相似的遗传均质性，虽基因不是纯合子，但基因是整齐一致的，遗传性是稳定的，表现型也一致，基本上具有近交系动物的特点，具有遗传上的均一性，实验结果易重复，便于国际交流，并在生物医学研究中广泛应用。但杂交一代动物并不是一个品系，因为本身不能进一步繁殖而保持遗传组成不变。
45、家兔常用采血方法有哪些？
答：（1）、耳中央动脉采血(2)、耳缘静脉采血(3)、心脏采血
46、动物手术中如果出现出血情况，常用止血方法有哪些？
答：（1)、压迫止血：手术中出血一般可先用无菌纱布或拧干的温热盐水纱布按压片刻，切勿用纱布擦拭，以减少组织损伤。
（2）、钳夹止血：用止血钳与血流方向垂直夹住血管断端，停留一段时间后取下止血钳。
（3）、结扎止血：出血点用纱布压迫蘸吸后，用止血钳夹住血管断端，再用丝线结扎止血。结扎时，先竖起止血钳，将结扎线绕过钳夹点之下。
47、▲简述动物尸检过程中，常规脏器采出与检查一般遵循顺序？
答：常规脏器采出与检查一般遵循下列顺序：剥皮和皮下检查一腹腔的剖开和腹腔脏器的视查→胸腔的剖开和胸腔脏器的视查→腹腔脏器的采出→胸腔脏器的采出→口腔和颈部器官的采出→骨盆腔脏器的采出和检查→颅腔剖开和脑的采出与检查→鼻腔的剖开和检查→脊椎管的剖开和脊髓的采出与检查→肌肉和关节的检查→骨和骨髓的检查。
实验动物学实验报告 一、实验动物：小鼠 二、操作流程：抓取，固定，编号，给药，取血，麻醉，绝育，解剖。 三、具体操作 1、抓取：抓取小鼠时，右手抓住小鼠尾巴，不要过于用力，以免惊吓小鼠。左手从小鼠身体后部向前抓（以免小鼠向后缩咬伤自己），抓住小鼠颈部。固定住小鼠后，将小鼠皮肤往上抓，尽量将小鼠背部皮肤抓住。左手将小鼠腹部朝向自己，把小鼠尾巴用左手无名指和小指夹住，这时小鼠腹部皮肤紧绷，不能动弹。 2、固定：通常使用固定器进行固定。将固定器拧开后，抓住小鼠尾巴，使其钻入固定器中，再将拧下的固定器部分装好，使小鼠尾部露出，再将可旋转的铁片固定住即可进行后续实验。 3、编号：编号方式有两种：①剪脚趾编号：把小鼠腹面朝上，在下的脚趾从左至右依次编为1~10号，剪10号脚趾加1~9号脚趾依次编为11~19号，在上的脚趾依次编为20,30,40,50,60,70,80,90号，其余编号与11~19号类似。②打耳钉编号：耳钉上均有唯一编号，通过使用耳钉钳将耳钉打在小鼠耳朵上即可。实验时通常使用的是第一种方式进行编号，第二种编号通常用于需要长距离运输的动物。 4、给药：常用的给药方式有： ①口服给药：即灌胃。将注射器装入药物溶液，装上灌胃针（灌胃针有直头和弯头两种，区别不大）。如上所述，抓取小鼠后，使其头部朝上，尽量呈一直线，取灌胃针，从小鼠嘴角一侧缓缓插入（保持刻度在自己能看到的位置），顺着小鼠口腔食道的弧度让小鼠将针咽入，灌胃过程中如果遇到阻碍一定要及时拔出灌胃针，不可强行灌胃以免伤及小鼠食道以及肺部。灌胃针顺利进入后基本与小鼠身体呈一条直线，注入适量体积后再顺着食道缓缓取出灌胃针。 ②静脉注射：小鼠尾部有3条静脉和1条动脉，3条静脉非别位于背部，及两侧。静脉注射时一般选取两侧静脉，因为其相对于背部静脉更为清晰饱满。将小鼠固定后，用酒精擦拭其尾部静脉，使其充血，以便注射。之后使注射器针孔处朝上，针与尾部呈约30°扎入尾部后向上轻挑，再向内扎入部分，此过程应该比较顺畅，没有阻碍，若阻碍较大则有可能扎入到了皮肤中。扎入后将活塞向后回抽一点可见到有血回流，则说明成功扎入静脉当中，注射适当体积后迅速拔针，用酒精进行消毒。 5、取血：有断尾取血法和眼眶取血法两种。本次实验使用的是眼眶取血法。抓取小鼠，固定其头部用手指将其上下眼睑分开，露出其眼球并且不能闭上。用玻璃毛细管从其上眼角处扎入眼球后方毛细血管从，使血液顺着毛细管留下，取血完成后快速将毛细管取下。 6、麻醉：抓取老鼠，使其头部朝下，使其腹部脏器向胸腔靠拢，露出腹部空腔，以免刺伤脏器。将注射器竖直扎入靠近后腿部腹腔，刺入之后稍微向前倾斜但不要向前刺入，一般注入0.5mL麻醉剂即可。随后拔出针，方向小鼠，等待几分钟后即可麻醉。 7、绝育：绝育手术是通过剪除雌鼠卵巢或雄鼠输精管来实现的。将麻醉的雌鼠背面朝上，从其胸腔和尾部之间向下三分之一处剪开一个小口，用镊子将其卵巢取出，上面呈现红色斑点的部分即为卵巢，用剪刀将这一部分剪除，然后用缝合针线将其缝合，缝合方法为将针穿过后，将线缠绕镊子两圈再逆时针缠绕两
《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。 肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉，如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答：（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 （2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 （3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45 度角刺入腹腔，进针约3～5mm。
复习题 1、简述动物实验中3R原则内容及其意义。 Replacement 替代1.尽量使动物一体多用2、用低等动物代替高等动物3、尽量使用高质量动物4、使用恰当的试验设计和统计学方法 Reduction 减少1、用有生命的物体代替动物进行研究2、用数理化方法模拟动物进行研究Refinement 优化1、改善实验设施条件，提高动物实验质量2、改善控制技术，减少对机体的干扰 3R研究的意义 1、作为提升突破技术壁垒能力的载体和具体体现“标尺”，在经济发展和国际贸易中发挥不可替代的重要作用。 2、为科学发展提供了新思路和新方法。 3、体现时代发展、社会进步 2、简述免疫缺陷动物的概念以及生物学特性（主要是裸鼠和联合免疫缺陷鼠）。 指由于先天性遗传突变或用人工方法造成一种或多种免疫系统组成成分缺陷的动物。 一、T淋巴细胞功能缺陷动物：1、裸小鼠（nude mice）：1）被毛生长异常，呈裸体外表。2）无胸腺，仅有胸腺残迹或异常胸腺上皮，不能使T-cell正常分化，导致细胞免疫力低下。幼龄鼠有残存的未分化的上皮细胞。3）B细胞功能正常，NK细胞活力增强。4）繁育能力差，乳腺发育缺损，以雄性纯合子与雌性杂合子繁育。5）T细胞缺陷可通过移植成熟T细胞、胸腺细胞或正常胸腺上皮得到校正。2、裸大鼠(nude rat)：基因符号为rnu，一般特征似裸小鼠。1）发育迟缓，体重为正常大鼠的70%。2）裸大鼠较裸小鼠对多种传染病更敏感。3）比裸小鼠更强壮、寿命更长。4）体型较大，对大范围的外科手术方法较有利。二、联合免疫缺陷动物1、严重联合免疫缺陷小鼠(SCID mice)：突变基因scid位于16号染色体。1）该突变基因造成编码Ig重链和TCR的基因重排异常，抑制B-cell和T-cell前体的正常分化。2）C.B-17Icr为携带来自C57BL/ka小鼠的免疫球蛋白重链Igh-1b等位基因的 BALB/cAnIcr的同源近交系。3）纯合子血清中无免疫球蛋白，淋巴结、胸腺变小，缺乏体液、细胞免疫功能。饲养于SPF环境中。4）通过移植人免疫组织或免疫细胞，可使SCID 小鼠具有人类部分免疫系统，称为SCID-hu小鼠。
实验动物学实验报告 学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验
一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。
4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突（示眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入。刺入深度小鼠2～3mm。当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流人玻璃管中。得到所需的血量后，拨出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血0.2～0.3ml。 3）心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精消毒皮肤。在左侧第3～4肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有4～5号针头的注射器，
动物实验（小鼠）的一般操作技术 实习日期：2007—11—13 一目的和要求： 通过实际操作，使学生掌握实验的一般操作方法，包括动物的抓去和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。 二实习内容： 1 实验动物的抓取 2 实验动物性别的鉴定 3 实验动物编号的标记方法 4实验动物被毛的去除 5 实验动物的给药途径和方法 6 实验动物的麻醉 7实验动物的采血 8 实验动物的处死方法 9 解剖 三实验的方法 1 小鼠的抓取：抓取时先用手将鼠尾提起，放在实验台上，轻轻拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤，将鼠置于左手中心，用左手无名指和小指按住尾巴和后肢，即可做其他实验操作作用。 2 小鼠性别的鉴定：抓取小鼠后，观察动物肛门与生殖器之间的距离。距离远的为雄性，距离近的为雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。 3 小鼠编号的标记方法：用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸（黄色），一般左前肢为1，左侧腹部为2，左后肢为3，头颈部为4，背部为5，尾根部为6，右前肢为7，右腹部为8，右后肢为9。用两种颜色可以染到99。 4 小鼠被毛去除：有剪毛法，拔毛法，剃毛法，用硫化钠脱毛法。 5 给药途径和方法：给药途径有经口灌胃法，经呼吸道吸入，经皮肤吸入和注射给药法。用一支特制的灌胃针进行灌胃，小鼠一般给1.5ml以下。用注射器抽好液体，然后抓取小鼠，针头延侧角通过食管进入胃内，然后将液体注入。 6 小鼠的麻醉：麻药有挥发性的和非挥发性两种。给药途径有吸入性麻醉，注射给药。小鼠一般用腹部麻醉的方法。用水合氯醛300ml／kg，根据小鼠的体重给药0.25ml。抓取小鼠后，使针头和腹部成30度的角，刺入腹腔，回抽若无回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟后，小鼠失去知觉。 7 小鼠的采血的方法：有静脉采血法，尾部采血法，眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中，露出尾部，用二甲苯图擦，使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断一根尾静脉即可用毛细管采血，也可用细注射器从尾静脉采血。 8 小鼠的处死方法：用颈椎脱臼的方法或者注射过量的麻药使小鼠死亡。 9 解剖：从腹部开始，查看腹部脏器，以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺顺序。然后再看胸部，看到肺脏心脏胸腺等器官，并在直视的情况下进行了心脏的采血。然后再看颈部的解剖。最后解剖头部。 四讨论和结论： 通过此次实验，我们学到了实验动物的一般操作技术，如抓取和固定、编号被毛的去除给药途径麻醉采血和处死等方法。为以后进入临床进行实验研究做好了初步的准备。
2013级专业型硕士研究生《医学实验动物学》考查题 姓名学号专业成绩 一、名词解释 1.AEIR “AEIR”是生命科学研究所必需的四个基本条件。“A”即animal（实验动物）“E”系equipment （设备）“I”为information（信息）“R”是reagent（试剂） 2.3R “3R”，即减少（reduction）、代替(replacement)和优化(refinement)原则。 3.SPF动物 无特定病原体动物( specific pathogen free animal, SPF)指在清洁动物的基础上，要求不携带可能干扰实验的特定病原体和寄生虫如绿脓杆菌等。SPF动物的种群来源于无菌动物，饲养于屏障系统中，实施严格的微生物和寄生虫控制。使用SPF动物，在实验中可以安全可靠地排除动物所携带病原体及特定微生物的干扰。SPF动物作为国际公认的标准实验动物，可适用于所有科研实验。该级动物健康，繁殖率高，自然死亡率低。 4.歪头病 肺支原体可引起化脓性鼻炎和慢性肺炎等呼吸系统疾病；有时并发中耳炎、内耳炎引起实验动物“歪头病”，患鼠头斜于患侧转圈走，提起鼠尾使之倒立，患鼠身体迅速旋转。肺支原体感染生殖道可导致死胎和不育。 5.封闭群动物 又称远交群（out bred stock）动物。按国际实验动物科学委员会的定义，是指以非近亲交配方式繁殖生产的一个种群，在不从外部引入新血缘的条件下，至少连续繁殖4代以上的动物。如昆明种小鼠、SD大鼠等。特点：繁殖率高，重复性差。 二、简答题 1.什么是近交系动物？简述近交系动物的特点。 从一个动物群体中选用血缘比较接近的雌雄个体，即有共同祖先的兄妹、母子、父女进行交配，此种近亲交配的方式称为近交。全同胞兄妹之间或亲代与子代之间连续交配繁殖达到20代以上的动物，称为近交系动物。 近交系动物的特点：㈠基因纯合性（homozygosity），㈡遗传组成的同源性（isogenicity），㈢表现型的一致性（uniformity），㈣对外界因素的敏感性（sensitivity），㈤遗传特征的可辩别性（identifiably），㈥遗传组成独特性（individuality），㈦背景资料可查性，㈧国际分布广泛性 2.“DBA/1fLACA/Lac小鼠”中英文字母、符号和数字的涵义是什么？ DBA为小鼠近交系名称，1表示亚系，f表示代乳，LACA为代乳母鼠的品系，Lac代表培
第一章复习题 1、何谓实验动物？实验动物学的研究内容？ 2、3R的含义及拼写？ 3、何谓动物福利，动物的五大自由？ 4、实验动物在医学生物学中的地位和作用？ 5、实验动物科学发展史上的里程碑是什么？ 6、我国实验动物法规建设如何？ 第二章复习题 实验动物遗传学控制分类 近交系的定义、特点及命名法 亚系、重组近交系、同源突变近交系、同源导入近交系的定义和命名 封闭群动物实验动物的定义、特点及命名法 杂交群动物实验动物的定义、特点及命名法 第三章思考题 1、普通级动物、清洁动物、SPF动物、无菌动物的概念。 2、不同等级的实验动物对实验结果的影响。 2、人兽共患病、动物烈性传染病主要病原体的名称。 3、淋巴细胞脉络丛脑膜炎、鼠痘、狂犬病、流行性出血热等疾病的传染源、传播途径、易感者和症状表现。 第四章复习题 1、实验动物营养学的概念。 2、实验动物饲料含的六大营养成分。 3、体内不能合成维生素C的实验动物有哪些。 4、啮齿类、兔、犬和猴的营养需要。 5、常用的实验动物饲料消毒灭菌方法 第五章复习题 1、实验动物的环境、外环境和内环境的概念？ 2、以R=(A+B+C)×D+E说明环境控制的重要性。 3、影响实验动物的环境因素有哪些？ 4、国标中对实验动物小鼠动物实验屏障设施的温度、湿度、噪声有哪些要求？ 第六章复习题 1、屏障设施的概念？ 2、屏障设施运行的四要素有哪些？各有何特点？ 3、常用的小型独立实验动物设备有哪些？ 4、在无人协助的情况下你如何应用清洁级小鼠在实验动物屏障设施内进行动物试验? 第七章复习题 各种动物的主要生物学特性及在医学生物学中的应用 第八章复习题 1、免疫缺陷动物 2、转基因动物（Transgenic animals） 3、克隆动物(cloning animal) 1、何谓实验动物和实验用动物? 实验动物(Laboratory animals)是指经人工饲育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确或者来源清楚的，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的动物。
实验一小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌 胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。 二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄) 三、实验步骤 1、抓取与固定,标记 2、去毛 3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射 4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法 5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉 6、处死:脊椎脱臼法 7、解剖: 雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明) 雌性:双角子宫、卵巢 肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺 四、实验结果 1、抓取与固定标记: 抓取:抓小鼠的尾根部 固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇 指与食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指与无名指将尾巴固定在手掌面。并标记: 2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0、5ml 3、注射给药: 腹腔注射: 从下腹部的两侧进针 ,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物 尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指与拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0、5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。 4、采血 从眼角内侧0、5cm处进针 眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。 5、麻醉: 0、5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功 6、处死: 脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死 7、解剖: 雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺 雌性:双角子宫、卵巢 3、7、2 肾上腺:米粒大小 胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状 3、7、4 ,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,
实验动物学复习题答案（完整版改） 实验动物：指经人工培育，对其携带的微生物实行控制，遗传背景明确，来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定及其他科学实验的动物。 实验用动物：广义指一切用于科学实验的动物，也包括试验动物。 动物实验：为科研、教学、药物检定等目的，对实验动物进行物理、化学、生物等因素处理，观察其反应，获得实验数据，解决科研中问题的过程。 实验动物学：研究动物实验和实验动物的科学。以实验动物为研究对象，专门研究实验动物的饲养繁殖及育种、实验动物的标准化、实验动物的质量监测、野生动物的实验动物化及其开发应用以及动物实验技术的科学。 实验动物环境：是指人工控制的, 供实验动物繁殖、生长的特定场所及有关条件, 即围绕实验动物所有事物的总和。 实验动物设施：界定实验动物生存空间、维持其所需的建筑物和设备等。 AEIR:生物科学研究四个基本条件：animal、equipment、information、reagent（试剂） 根据对微生物、寄生虫的控制程度将实验动物划分为4个等级：普通级动物、清洁动物、无特定病原体动物、无菌动物。 普通级动物是微生物和寄生虫控制级别最低的按动物；要求不携带所规定的人兽共患病病原和动物烈性传染病病原，以及人兽共患寄生虫。 清洁动物是根据我国国情而设立的等级动物，除普通级动物应排除的病原和寄生虫外，不携带对动物危害大和对科学研究干扰大的病原和寄生虫。 无特定病原体动物通常被称为SPF动物，除清洁动物应排除的病原和寄生虫外，不携带主要潜在感染或条件致病和对科学按干扰大的病原和寄生虫。 无菌动物指无可检出一切生命体的动物。 导致人兽共患病的主要病原体 1、病毒—淋巴细胞脉络丛脑膜炎病毒、狂犬病病毒、猕猴疱疹病毒1型（B病毒）、汉坦病毒（流行性出血热病毒）。 2、细菌—沙门菌、布鲁杆菌、志贺菌、结核分歧杆菌、钩端螺旋体。 3、真菌—皮肤病原真菌。 4、寄生虫—弓形虫。 1988年, 原国家科委颁布了《实验动物管理条例》, 标志着我国实验动物工作走上了行政法规管理的轨道。2001年《实验动物国家标准》的颁布和实施，普通级大鼠和小鼠将被禁止使用。 “3R”原则：替代（replacement）原则、减少（reduction）原则、优化（refinement）原则。 为阐明人类疾病的发生机制或建立治疗方法而制作的、具有人类疾病模拟表现的实验动物，称人类疾病动物模型。 人类疾病动物模型发展至今具有比较完善的理论和方法。通常可分为诱发性疾病动物模型、自发性疾病动物模型、中医征候动物模型等类型。 品种是人们根据不同需要而对动物进行改良、选择，即定向培育，并具有某种特定外形和生物学特性的动物群体，其特性能较稳定的遗传。品系即“株”，指来源明确，并采用某种交配方法繁殖，而具有相似的外貌、独特的生物学特征和稳定的遗传特性，可用于不同实验目的的动物群体。 近交系；经至少连续20代的全同胞兄妹交配或亲代与子代交配培育而成。命名：由1～4个大写英文字母组成；大写英文字母开头，结合数字命名。特点：基因纯合性，遗传稳定性，遗传同源性，表型一致性，独特性，可分变性，分布广泛性，资料可查性。近交：从一个动物群体中选用血缘关系比较接近的雌雄个体，即有共同祖先的兄妹、母子、父女进行交配。 封闭群；以非近亲交配方式繁殖生产的一个实验动物种群，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群，或叫远交群。特点：1、一定的杂合性：不引入新的基因，又不使群体内基因丢失。2、相对的稳定性：群体在一定范围内保持相对稳定的遗传特征。3、个体差异取决于祖代动物。 4、较强的繁殖力、抗病力。 5、群体易保存有模型价值的突变基因。命名：用2－4个大写英文字母命名。如:KM,ICR,LACA. N：NIH由美国国立卫生研究院保存的NIH小鼠。 应用：1、类似人群体遗传的异质性组成，在药物筛选、毒性试验方面有不可替代的作用。2、可大量供应，用于预试验、教学。3、携带突变基因，评估群体对自发或诱发突变的遗传负荷能力。 系统杂交动物；由不同品系或种群之间杂交产生的后代。特点：1、杂交优势，克服了近交引起的近交衰退。 2、遗传与表型上的均质性；具有相同的基因型。 3、分布广泛。应用：1、干细胞研究。2、移植免疫研究。 3、细胞动力学研究。 4、单抗研究 近交衰退；指在近交过程中动物群体由于基因分离和纯合而产生的不利于个体和群体发育的现象。包括：1.由于有害隐性基因的纯合，出现遗传缺陷或某种疾病发生率的提高2.影响繁育如产子数下降、母性不良3.个体发育不良，对环境的适应性差 亚系；育成的近交系在繁育过程中，由于残余杂合基因的分离、基因突变的产生、抽样误差导致部分遗传组成改变而形成遗传差异的近交系动物群体。 支系；由于饲养环境的改变，或对动物进行人为的技术处理，对某些动物特征产生影响，形成不同的支系。同源性；在近交系中（突变系），所有动物可追溯到原始的一对共同祖先。遗传同源性使近交系有3个重要特征：⑴品系内个体间可接受组织移植⑵品系内单个个体的监测可得知品系整体基因类型⑶从一个群体内可分离出遗传上相同的亚群体
模拟试题 一、填空题（本题共10小题，每小题2分，共20分） 1、实验动物指 的动物。 2、按遗传学控制原理，可将实验动物分为、、________和四类。 3、按微生物控制的情况，我国将实验动物分为、、和四级。 4、《实验动物管理条例》是由于年颁布的。 5、实验动物按食性分为、 和三类。 6、实验动物生长发育所需的基本营养物质有、、、、和等几类。 7、“恐伤肾”动物模型可以用吓鼠、吓猫、吓狗等方法制作。 8、人类疾病动物模型根据发生的原因不同，可分为和两大类。 9、小鼠尾部有条静脉，分别位于小鼠尾、和___________。 10、列出三种大鼠常用的采血方法、 和。 二、单项选择题（本题共10小题，每小题2分，共20分） 答题说明：下面三个备选答案中只有一个最佳或最恰当的答案，请用黑色签字笔把正确答案填写在空格处。 1、兔的最大饲养密度是每平方米容纳只。 A、4只 B、6只 C、10只 2、BA LB/c小鼠属于动物。 A、近交系 B、封闭群 C、突变系 3、实验动物脱水达到体重的，将导致实验动物死亡。 A、20% B、30% C、40% 4、皮肤与人非常相似，故常用于实验性烧伤研究。 A、猴 B、猪 C、兔 5、体内不能合成维生素C的动物是：。 A、小鼠和大鼠 B、兔和豚鼠 C、豚鼠和猴 6、屏障系统对空气洁净度的要求是：。 A、100级 B、1000级 C、10000级 7、大多数实验都选择的实验动物。 A、幼年 B、成年 C、老年 8、外界环境因素导致机体发热反应的研究宜选用的实验动物是。 A、小鼠 B、豚鼠 C、兔 9、老年性痴呆大鼠模型的制作方法是。 A、切断其一侧海马伞 B、肌肉注射马桑内酯 C、连续皮下注射链霉素 10、是人兽共患病。 A、鼠肝炎 B、兔出血症 C、流行性出血热 三、判断题（本题共10小题，每小题2分，共20分） （）1、系统杂交（F1代）动物的基因型不一致。 （）2、新药长期毒性研究应用两种以上实验动物。 （）3、SC ID小鼠属于T淋巴细胞免疫缺陷的动物模型。 （）4、实验动物设施环境内的噪声不得超过70分贝。 （）5、犬的视力好，能够看清远距离的物体。 （）6、维生素C又称为抗白血病维生素。 （）7、家兔多次静脉注射高分子右旋糖酐后出现血瘀证。 （）8、给大鼠腹腔注射链霉素可以制作糖尿病模型。 （）9、大鼠肝脏的再生能力强。 （）10、家兔属于胚胎发育完善的动物。 四、名词解释（本题共5小题，每小题3分，共15分）
2012 级应心班《人体解剖生理学》实验内容 一、人体基本组织的观察 （一）实验目的观察并掌握人体四大基本组织的结构特点及功能。 （二）实验材料四大基本组织的永久装片；显微镜 （三）实验要求正确使用显微镜，观察各种组织的基本特征。注：实验前请复习四大基本组织的结构特点和功能。 二、人神经系统的形态观察 （一）实验目的 1. 观察脊髓的形态结，了解脊神经的组成。 2. 观察脑干的的形态结构和脑神经进出脑干的部位，了解脑干中的主要神经核团和纤维束的位置。 3. 观察间脑、小脑和大脑的形态结构，辨认大脑半球的主要沟、回和分叶。 （二）实验材料脊髓模型；脑干模型；人脑模型；脊髓横切片；显微镜 （三）实验要求观察各模型加深对神经系统的认识；正确使用显微镜，观察脊髓横切片。注：实验前请复习神经系统的结构组成和功能。 三、反射弧的分析和脊髓反射的观察 （一）实验目的 1. 通过用脊蛙（去除脑保留脊髓的蛙，成为脊蛙）分析屈肌反射的反射弧的组成部分，探讨反射弧的完整性与反射活动的关系。 2. 观察脊髓的反射活动并研究脊髓反射中枢活动的若干特征。 （二）实验原理 （三）材料与方法 1 材料 1.1 实验动物青蛙 1.2 器材蛙类手术器械 1 套，铁支架，电刺激器，刺激电极，秒表，棉球，纱布，培 养皿 2 个，烧杯 1.3 药品 0.5% 硫酸， 1%硫酸 2 试验方法与步骤 2.1 制备脊髓动物：取青蛙一只，用剪刀横向插入口腔，从鼓膜后缘处剪去颅脑部，保留下颌部分。以棉球压迫创口止血，然后用止血钳夹住下颌，悬挂在铁支架上。 2.2 正常脊髓反射的观察 2.3 搔扒反射：将浸以 0.5%硫酸的小滤纸片一块，贴在青蛙腹部下段的皮肤上，可见四肢向此处搔扒，直到去掉滤纸片为止，之后用清水冲洗皮肤。 2.4 反射时的测定：用培养皿分别盛 0.5%和 1%硫酸溶液，将青蛙左后肢的脚趾尖浸于硫酸溶液中，同时用秒表记录从浸入时起到发生屈腿发射所需的时间，即反射时。观察后立即将该足趾浸入清水中浸洗几次，然后用纱布拭干。按上法重复三次，求其平均值，此值即为反射时。 2.5 将两对电极连接到刺激器 2.6 反射弧的分析 2.6.1 剥去左肢皮肤：在左侧后肢趾关节上方，将皮肤作一环状切口，将足部皮肤剥掉。 2.6.2 1% 硫酸刺激左趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.3 1% 硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动情况。 2.6.4 1% 硫酸滤纸片贴在左小腿切口上面的皮肤上，观察活动情况。 2.6.5 分离右侧大腿背侧坐骨神经干，两侧结扎，中间剪断，1%硫酸刺激右趾尖，观察腿部活动。 2.6.6 刺激神经两端：以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和外周端，观察腿部反应。 2.6.7 破坏脊髓：以探针捣毁青蛙脊髓后，以连续方式分别刺激右侧坐骨神经中枢端和 外周端，观察腿部反应。 2.6.8 刺激腓肠肌：直接刺激右侧腓肠肌，观察有何反应。
动物实验报告 集团文件发布号：（9816-UATWW-MWUB-WUNN-INNUL-DQQTY-
实验动物学实验报告学院： 学号： 姓名 时间： 实验一：小鼠实验 一、实验目的 1、掌握小鼠抓取、固定的基本方法； 2、掌握小鼠的雌雄鉴别方法； 3、掌握小鼠的标记方法； 4、掌握小鼠的基本采血技术； 5、掌握小鼠的常用给药方法； 6、掌握小鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置； 二、实验材料 1、实验动物：每组两只雌鼠，两只雄鼠； 2、实验器械及试剂：鼠笼；小鼠固定器和小鼠固定板；眼科剪；眼科镊；解剖刀；1ml注射器；毛细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%水合氯醛； 三、实验内容及方法 1、小鼠的抓取和固定 抓取时先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠
尾，小指按住后腿即可。这种在手中固定方式，能进行实验动物的灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射以及其他实验操作。 2、小鼠的雌雄鉴别 雄鼠的阴囊明显，雄鼠可见阴道开口和五对乳头。幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。另外，雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟，而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。 3、小鼠的标记方法 1）耳孔法 用耳号钳在耳上打洞或者用剪刀在耳边缘剪缺口，左耳为十位，右耳为个位。 2）剪趾法 适用于出生一周以内新生仔鼠； 3）染色法 用毛笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着毛发生长方向刷。 4、小鼠的基本采血 1）剪尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并历出鼠尾，将鼠尾在45℃温水中浸泡数分钟，也可用酒精棉球涂擦，使局新血管扩张。将鼠尾擦干，再用刀片剪去1-2mm，让血液滴入盛器或直接用吸取，同时自尾根部向尾尖按摩。取血后，先用棉球压迫止血并立即用6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾势脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向切割，每次可取0.2～0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血。这种采血方法在大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 2）眼眶后静脉丛取血
实验动物学复习题 1.品种、品系——是实验动物分类的基本单位。作为实验动物的一个品种或品系，应具备相似的外貌特征、独特的生物学特性、稳定的遗传性能、具有共同遗传来源和一定的遗传结构等条件。 2.近交系动物——经至少连续20代的全同胞兄妹交配培育而成的动物品系，品系内所有的个体都可追溯到起源于第20代或以后代数的一对共同祖先，该品系动物称为近交系动物。 3.亚系——育成的近交系在长期的保种过程中由于基因突变、残余杂合基因、遗传污染等原因而导致部分遗传组成改变而形成的新的近交系，称为原近交系的亚系。 4.支系——育成的近交系由于饲养环境改变或人工技术处理，如代乳、胚胎移植、冷冻保存等，导致某些生物学特性的改变而形成的新的近交系，相对于原来的近交系或亚系，称为支系。 5.同源突变近交系——简称同源突变系，是指某个近交系在某基因位点上发生突变而分离、培育出来的新的近交系。它和原近交系的差异只是突变基因位点上带有不同的基因，而其他位点上的基因完全相同。 6.同源导入近交系——简称同源导入系，是指通过基因导入的方法将一个目的基因导入某个近交系的基因组内而培育出的新的近交系。它与原近交系比较，只是一个染色体片段的差异(一个或几个基因的差异)。 7.分离近交系——是在培育近交系的同时，采取一定的交配方法，迫
使个别基因位点上的基因处于杂合状态而培育出来的新的近交系。如果同源突变近交系的突变基因为杂合状态，则其遗传组成特征与分离近交系相同，只是培育方法不同。 8.重组近交系动物——是在两个近交系杂交生育杂种一代之后，杂种一代互交生育杂种二代，从杂种二代中随机选择个体配对，再连续进行20代以上的全同胞兄妹交配而培育出的近交系动物。通常从多对杂种二代中平行培育出一系列重组近交系。 9.杂种F1代动物——是由两个不同的近交系杂交而生育的第一代杂种动物，称为杂种F1代动物。杂种F1代动物的基因组成大都是杂合的，但各个体具有相同的表型和基因型。 10.封闭群动物——以非近亲交配方式进行繁殖生产的一个实验动物群体，在不从其外部引入新个体的条件下，至少连续繁殖4代以上，称为一个封闭群。该群体动物称为封闭群动物。 11.遗传概貌——是指用各种方法和技术对实验动物品种或品系的遗传特性进行检测后的数据总汇，即品种或品系基因标记表型的总汇。 12.无菌动物(GFA)——是指在隔离系统饲育的，经检测体内外无可检测出的任何微生物和寄生虫的动物。 13.悉生动物(GNA)——又称已知菌动物或已知菌丛动物，是指在隔离系统饲育的，经检测其体内外仅有经人工有计划接种的已知的微生物或寄生虫的动物。 14.无特定病原体动物(SPFA)——是指在屏障系统或隔离系统饲育的，经检测其体内外无质量标准规定的特定病原微生物和寄生虫存在，但
一、医学实验动物学20160913 1. laboratory animal，LA：实验动物，经人工培育，来源清楚遗传背景明确，对其携带的微生物和寄生虫和健康状态进行监控，用于生命科学研究、药品与生物制品生产和检定以及其他科学研究的动物。 2. animals for research：实验用动物，一切可用于实验的动物，包括野生动物、经济动物、警卫动物、观赏动物和实验动物。 3. laboratory animalization：实验动物化，将野生动物或经济、观赏动物驯化、培育成实验动物的过程。 4. animal experiment：动物实验，为了可接受的目的而使用实验动物进行的实验，实验过程可能造成动物的疼痛、痛苦、苦恼、持久性损伤、受孕、生育等，包括实验的前、中、后过程。 5. Euthanasia：安死术，以迅速造成动物意识丧失而至身体、心理最小伤害的处死动物的方法。 6. humane endpoint：人道终止点，考虑到对待动物的要求和实验要求，合理终止动物用于实验的时间。 7. 3R：替代replacement原则，要求尽可能采用低等实验动物或非实验动物，以替代高等实验动物进行实验；减少reduction原则：要求尽可能减少实验动物的用量，甚至可以降低统计学要求；优化refinement原则：要求优化实验设计和操作，避免或减轻与实验目的无关的疼痛和紧张。 8. 实验动物生物安全：对实验动物可能产生的潜在风险或现实危害的防范和控制。 9. 国家标准规定的实验动物品种是哪些？ 大鼠、小鼠、豚鼠、地鼠、兔、犬、猴、鸡 10. 实验动物福利（lab welfare）的五大自由 生理福利：免于饥渴；环境福利：免于不适，适当居所；卫生福利：免于痛苦伤病；行为福利：表达正常行为；心理福利：免于恐惧与焦虑。 11. 实验动物福利与动物实验伦理审查的关系 实验动物福利并不意味着就绝对的保护实验动物不受到任何伤害，而是在兼顾科学问题探索和在可能的基础上最大限度地满足实验动物维持生命、维持健康和提高舒适程度的需要； 实验动物福利贯穿实验动物整个生命过程，应考虑到实验动物的需要，尤其心理需要； 动物实验伦理审查局限于涉及实验动物的课题，在课题执行过程善待动物。 12. 动物实验伦理审查中涉及的三证；不予通过的情况；与医学伦理审查的区别(?) 动物质量合格证；设施许可证复印件及使用证明；从业人员考核合格证书。 1、抵触、逃避，迫不得已； 2、描述不清、证据不足、材料不全； 3、无道理的动物实验，不必要的动物伤害； 4、人员未经专业培训或明显违反动物伦理原则； 5、实验动物生产、运输、实验环境不符合要求； 6、无福利操作规程或不按规程办理，虐待动物； 7、动物实验设计不合理； 8、实施时不能体现善待动物、关注生命； 9、活体解剖不麻醉等极端操作。 动物实验伦理审查：参照国际上通行的伦理基本原则，对医学科学研究项目中涉及动物的课题进行审查，并做出结论性意见。 13. 动物实验生物危害的三大重要因素 动物性气溶胶；人兽共患病；实验室相关疾病感染。 14. 实验动物废弃物类别；处理原则 分类：感染性废弃物，病理性废弃物，损伤性废弃物，药物性废弃物，化学性废弃物。原则：无害化、分类处理、专用包装。 15. 我国对实验动物实施许可证制度，包括管理环节 年检，质量抽检，现场检查等环节。 16. AAALAC的含义及认证目的 国际实验动物评估和认可委员会Association for Asscssment and Accreditation of Laboratory Animal Care。
实验动物学实验报告 Document number：NOCG-YUNOO-BUYTT-UU986-1986UT
实验一大、小鼠的基本实验操作 一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。 二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。 三、实验步骤 1、抓取和固定 抓取：左手抓小鼠的尾根部 固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。 同样操作将大鼠抓取和固定 2、性别鉴定： 抓取和固定小鼠 观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。 同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。 3. 给药 灌胃法 按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。 当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。 用大鼠重复同样操作 注射给药 皮下注射 用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤， 右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。拨针时，以手指捏住针刺部位 用大鼠重复同样操作 腹腔注射 以左手固定小鼠，使腹部向上， 右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。 用大鼠重复同样操作 尾静脉注射 先将动物固定在暴露尾部的固定器内， 用75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，
一、名词解释 1．SPF动物：无特定病原体动物（Specific pathogen free animal，简称SPF动物)，指不携带特定病原体（细菌、病毒、寄生虫），但带有未知的微生物群的动物。 2．品系（Strain）：是实验动物分类学上专用名词，采用一定的交配方式繁殖且祖先明确的动物群。3．悉生动物：又称已知菌动物，是指在隔离系统饲育的，经检测其体内外仅有经人工有计划接种的已知微生物或寄生虫的动物。 4．人类疾病动物模型：为生物医学科研而建立的，具有人类疾病模拟性表现的的动物模型。5．克隆动物（clonal animal）：是指用人工方法得到无性繁殖的在遗传上与亲本动物完全相同的动物。6．转基因动物：基因组中稳定的整合有以转基因技术导入的外源性或特定DNA片段并能遗传给后代的一类动物。 7．免疫缺陷动物：是由于先天性遗传突变或用人工方法造成的一种或多种免疫系统缺陷的动物。8．重组近交系动物：指近交程度相当于20代以上连续全同胞或亲子交配，近交系数达98.6%以上、群体基因达到高度纯合和稳定的动物群。 二、简答题 9．简述作为一个品系所具备的特征。 品系有三大特征：独特的生物学特性，相似的外貌特性，稳定的遗传特性。 10．试述亚系及其形成的原因。 在近交系培育和维持过程中，由于残留杂合基因的分离、基因突变以及在不同地区繁育而造成同一品系内不同分支之间在遗传上有差异的动物称为亚系。 亚系形成的原因：1.近交40代之前，残留杂合基因的分离；2.不同地点繁育100代以上，由于基因突变；3.遗传污染后继续近交许多代。 11．简述近交系动物及其优缺点。 是指采用连续全同胞兄妹交配20代以上，基因型高度纯合，等位基因趋于完全一致的动物近交系动物的特征。 优点：1. 基因的纯合性 2. 遗传的同源性 3. 表现型的一致性 4. 遗传的稳定性 5. 遗传特征的可辨别性 6. 遗传组成的独特性 7. 背景资料的可查性 8. 国际分布的广泛性。 缺点：1.缺乏普遍性 2.对环境适应能力差 3.产子数量少 4.体型小 5.维持费用高。 12．什么叫杂交群动物？试述其具有的几种特征。如何命名？ 又称：F1 代动物定义：由两种不同的近交系杂交所繁殖的第一代杂交动物称为系统杂交动物，俗称“F1”代。系统杂交动物的双亲来自两个不相关的近交系，它具有以下几种特征：1.具有杂交优势，生活力和抗病力比近交系强。 2.各个个体的基因型相同，是其父母基因型的组合。 3.表型一致，
实验动物学试题及答案 精编版 MQS system office room 【MQS16H-TTMS2A-MQSS8Q8-MQSH16898】
《实验动物学》复习题及答案 1、小鼠的给药途径有那些？请演示一下 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm。 肌内注射（im）：多注射后肢股部肌肉，如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药 尾静脉注射（iv）：将动物固定，鼠尾巴露在外面，用70%～75%的酒精棉球擦尾部，或将鼠尾浸入45～50℃温水中。待尾部左右静脉扩张后，左手拉着尾，右手进针 2、请演示一下大鼠、小鼠的捉持、固定及灌胃给药 答：（1）小鼠的捉持：捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。 （2）大鼠的捉持：大鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。 （3）灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 3、大鼠的给药方法有那些？请演示一下常用的给药方法 答：灌胃（ig）：左手将动物固定后，右手持装有灌胃针头的注射器，自口角进针，沿上腭向鼠口腔的后下方插入食管。 皮下注射（sc）：常在背部皮下注射。一手固定动物，另一只手注射给药。 腹腔注射（ip）：左手固定动物，右手持注射器，从下腹部外侧，呈45度角刺入腹腔，进针约3～5mm。