蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本的制备
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蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本制备和不同强度和频率对肌肉收缩的影响一、实验摘要1.目的:掌握制备具有正常兴奋收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠肌标本基本操作以及蛙类手术器械的使用方法。
学习微机生物信号采集处理系统和换能器的使用。
记录在刺激时间、强度变化率恒定的条件下,不同强度和频率的电刺激对肌肉收缩的影响。
2.方法:应用蛙类捉拿方法并且毁脑脊髓后制备坐骨神经-腓肠肌标本,用锌铜弓分别刺激坐骨神经和腓肠肌,观察肌肉变化。
再利用张力换能器将压力变化转换为电信号,用微机生物信号采集处理系统记录不同强度和频率对肌肉收缩的影响的变化曲线。
3.结果:用锌铜弓刺激坐骨神经时腓肠肌发生收缩。
在保持足够的刺激时间(脉冲波宽)不变的条件下,通过逐步增加对蟾蜍坐骨神经的刺激强度(脉冲振幅)和改变电脉冲刺激频率可发现当电压低于阈值的强度刺激,坐骨神经支配腓肠肌的神经纤维不发生兴奋,刺激电压达到阈强度时,坐骨神经干中阈值最低的神经开始兴奋。
刺激强度逐渐增大,总收缩张力增加。
当刺激电压达到使支配腓肠肌的神经纤维全部兴奋,则收缩张力达单收缩最大值。
4.结论:在一定刺激时间下,刚能引起组织发生兴奋的刺激称为阈刺激,所达到的强度为阈强度;能引起组织发生最大兴奋的最小刺激称为最大刺激,相应的刺激强度叫最大刺激强度。
介于阈刺激和最大刺激间的刺激称阈上刺激,相应的刺激强度称为阈上刺激强度。
二、关键词:坐骨神经、腓肠肌、兴奋性、阈值三、引言:刺激神经使神经细胞产生兴奋,兴奋沿神经纤维传导,通过神经肌接头的化学传递,使肌肉终板膜上产生终板电极,终板电极可引起肌肉产生兴奋(即动作电位),传遍整个肌肉纤维,再通过兴奋-收缩耦联使肌纤维中粗、细肌丝产生相对滑动,宏观上表现为肌肉收缩。
[1]四、材料和方法1.实验对象:蟾蜍2.实验仪器:张力换能器、微机生物信号采集处理系统、剪刀、铁碗、培养皿、锌铜弓、玻璃分针、大头针、蛙板、尖头镊子、棉线、针形引导电极3.实验药品和试剂:任氏液4.实验方法:1)观察蟾蜍毁脑脊髓前后四肢肌张力的变化。
一、实验目的1. 掌握蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
2. 观察并分析坐骨神经刺激对腓肠肌收缩反应的影响。
3. 探究不同刺激强度和频率对腓肠肌收缩的影响。
二、实验原理坐骨神经是人体最大的混合神经,由腰骶神经根合并而成,主要负责下肢的感觉和运动功能。
腓肠肌是人体下肢的主要肌肉之一,负责小腿的屈曲和踝关节的屈伸。
本实验通过刺激坐骨神经,观察腓肠肌的收缩反应,探讨神经肌肉的兴奋性和收缩机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物:蟾蜍2. 实验仪器:刺激器、放大器、示波器、张力传感器、计算机、剪刀、镊子、电极、玻璃皿、任氏液等四、实验方法1. 制备坐骨神经-腓肠肌标本:将蟾蜍处死后,剥去皮肤,暴露腰骶丛神经,游离大腿肌肉之间的坐骨神经及小腿的腓肠肌。
将神经和肌肉两端结扎,剪去无关分支,保留膝关节,剪去腿骨,将标本离体。
将标本置于任氏液中,保持湿润。
2. 连接实验装置:将坐骨神经连接刺激器输出端,腓肠肌连接张力传感器,张力传感器连接放大器,放大器连接示波器和计算机。
3. 设置刺激参数:根据实验需求设置刺激强度、频率和持续时间。
4. 进行实验:刺激坐骨神经,观察腓肠肌的收缩反应,记录张力变化。
5. 数据分析:分析不同刺激强度和频率下腓肠肌的收缩反应,探讨神经肌肉的兴奋性和收缩机制。
五、实验结果1. 在不同刺激强度下,腓肠肌的收缩反应随着刺激强度的增加而增强,直至达到最大收缩。
2. 在不同刺激频率下,腓肠肌的收缩反应随着刺激频率的增加而增强,直至出现不完全强直收缩。
3. 当刺激强度和频率同时增加时,腓肠肌的收缩反应更为明显。
六、实验结论1. 坐骨神经刺激可以引起腓肠肌的收缩反应,说明神经肌肉之间存在兴奋传递。
2. 不同刺激强度和频率对腓肠肌的收缩反应有显著影响,说明神经肌肉的兴奋性和收缩机制与刺激参数密切相关。
3. 本实验结果为研究神经肌肉的兴奋性和收缩机制提供了实验依据。
七、实验讨论1. 本实验中,刺激坐骨神经可以引起腓肠肌的收缩反应,说明神经肌肉之间存在兴奋传递。
蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本的制备及神经干的性质实验报告实验名称蛙的坐骨神经—腓肠肌标本的制备及神经干的性质实验目的要求学习并掌握坐骨神经—腓肠肌标本以及腓肠肌标本制备的方法;学习生理学实验基本的组织分离技术;观察刺激强度,刺激频率与肌肉收缩反应的关系;掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导速度的基本原理和方法。
实验材料,仪器,试剂蟾蜍、常用手术器械(手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针等)、烧杯、培养皿、纱布、棉线、粗剪刀、蛙板、污物缸、滴管、生理信号采集系统、张力传感器、铁架台、计算机、任氏液等。
实验原理两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的神经肌肉标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及骨骼肌收缩的特点等。
任氏液是—种比较接近两栖动物内环境的液体,可以用来延长青蛙心脏在体外跳动时间、保持两栖类其他离体组织器官生理活性等。
腓肠肌由许多的纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。
当刺激强度过小时,不应期肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。
而能引起肌肉发生收缩的最小刺激强度,为阈刺激,但全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。
这时,即使再加大刺激强度,肌肉的收缩强度也不会随之而增大。
可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激。
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激,发生一次迅速地收缩反应,即单收缩。
单收缩的过程分为三个时期,潜伏期、收缩期、舒张期。
刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。
在其他条件不变情况下,不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。
若刺激频率较小,两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间(即单收缩)时,肌肉收缩表现为一连串的单收缩;若增大刺激频率,使两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩的收缩期时间,而小于单收缩时,肌肉呈现不完全强直收缩;若继续增加刺激频率,使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间,肌肉则表现出完全强直收缩。
坐骨神经腓肠肌标本的制备和神经干动作电位的观察与传导速度的测定一、实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法.2。
学习并掌握坐骨神经—腓肠肌标本的制备方法.3。
观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形,并了解其产生的原理.4。
学习蛙和蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。
二、实验材料:1.实验对象:蟾蜍2.实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线、PC机、信号采集处理系统、神经屏蔽盒等。
三、实验原理:神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位,标志着神经发生兴奋。
如果在离体神经干的一段施加刺激,从另一端引导传来的神兴奋冲动,可以记录出双相电位,加入在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损伤,阻断其兴奋传导能力,这时候记录出的动作电位就成为单相电位.神经细胞的动作电位是以全或无的方式产生的。
但是,复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的增加而增大的。
如果在远离刺激点的不同距离处分别引导离体神经干动作电位,两引导点之间的距离为m,在两引导点分别引导出的动作电位的时相差为s。
即可按照公式v=m/s来计算出兴奋的传导速度。
蛙类的坐骨神经干属于混合性神经,其中包含有粗细不等的各种纤维,其直径一般为3-29um,其中直径最粗的有髓纤维为A类纤维,传导速度在正常室温下为35—40 m/s。
神经每兴奋一次极其在兴奋以后的回复过程中,其兴奋性都要经历一次周期性的变化,其全过程依次包括绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期4个时期.为了测定坐骨神经在发生一次兴奋以后兴奋性所发生的周期性变化,首先要给神经施加一个条件性刺激引起神经兴奋,然后在前一兴奋及其恢复过程不同时相再施加一个测试性刺激,用于检查神经的兴奋阈值和所引起的动作电位的幅度,以判定神经兴奋性的变化。
四、实验方法及步骤:1、坐骨神经干标本制备(1)破坏脑与脊髓:取蛙一只,用自来水冲洗干净,左手持蛙,用食指下压其吻部,拇指按压在其骶髂关节下方,使其头尽量前俯,右手持探针沿两眼之间中线向后方轻划,至触及头颈部正中的凹陷处,即为枕骨大孔的位置.用探针在凹陷处垂直刺入枕骨大孔,再将其针尖转向前刺入颅腔,左右搅动探针,彻底捣毁脑组织;然后缓慢地把探针退至枕骨大孔处,将其转向后方,与脊柱平行捻动探针使其刺入整个椎管,彻底捣毁脊髓。
实验六蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备坐骨神经干标本的制备、缝匠肌神经标本制备一、实验目的1、急性动物实验(与慢性动物实验的区别)2、离体标本实验(与在体标本实验的区别)3、掌握锌铜弓导致生物电产生的原理4、掌握离体标本的制备及手术训练5、掌握剪刀的技用和双毁髓的意义二、实验原理1、急性动物实验与慢性动物实验,在体实验与离体实验急性动物实验可分为离体和在体实验两种方法。
离体实验:是从活着的或刚处死的动物身上取出所需要的器官、组织、细胞或细胞中的某些成分。
置于一个能保持其正常功能活动的人工环境中,观察某些人为的干预因素对其功能活动的影响。
例如,对离体蛙心或动物血管条进行灌流,可用于研究某些生物活性物质或药物对心肌或血管平滑肌收缩力的影响;应用膜片钳技术可研究细胞小片膜上单个离子通道的电流特性。
在体实验:是在动物麻醉条件下,手术暴露某些所需研究的部位,观察和记录某些生理功能在人为干预条件下的变化。
例如,以动脉插管记录动物血压,可用于观察某些神经或体液因素对血压的影响;将玻璃微电极插入脑内某些部位进行细胞外或细胞内记录,观察神经元在接受某些刺激时放电活动的变化,以了解这些神经元的生理功能。
急性动物实验的优点是实验条件比较简单,条件较易控制,便于进行直接的观察和细致的分析;离体实验则更能深入到细胞和分子水平,有助于揭示生命现象中最为本质的基本规律。
但急性动物实验的结果可能与生理条件下完整机体的功能活动有所不同,尤其是离体实验的结果,此时被研究的对象,如器官、组织、细胞或细胞中的某些成分已经脱离整体,它们所处的环境已发生很大的改变,实验结果与在整体中的真实情况相比,可能会有很大的差异。
慢性动物实验:慢性动物实验以完整、清醒的动物为研究对象,且尽可能保持外界环境接近于自然,以便能在较长时间内观察和记录某些生理功能的改变。
实验前一般需对动物作某些预处理,待动物康复后再进行观察。
例如,研究唾液的分泌调节时,可预先将唾液腺导管开口移至颊部体表,观察时就能方便地从体表收集到唾液腺分泌的纯净唾液;研究某种内分泌功能时,常先摘除动物某个内分泌腺,以便观察这种内分泌激素缺乏时以及人为替代后的生理功能改变,用以了解这种内分泌激素的生理作用。
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术,为以后有关实验打下基础。
【实验原理】两栖类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似, 而其离体组织所需的生活条件 比较简单,易于建立、控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观 察兴奋与兴奋性的一些规律以及骨骼肌的收缩特点等。
所以坐骨神经腓肠肌标本的制备是生 理实验的一项基本操作技术。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验材料】两栖类手术器械 1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、金属探针、玻璃 分针、蛙板)、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、任氏液。
【实验步骤】1. 破坏脑和脊髓取蟾蜍 1 只,用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍,用拇指按压背部,食指按压头部 前端使其头部前俯,右手持金属探针在头前缘沿正中线向尾端触划,所触划到的头部后 端的凹陷处,即为枕骨大孔所在部位。
在此处将金属探针垂直刺入皮肤,有突破感后再 将金属探针折向前经枕骨大孔刺入颅腔,左右搅动捣毁脑组织;然后将金属探针回抽至 枕骨大孔处,转向后刺入脊椎管,反复提插捣毁脊髓。
此时如蟾蜍的四肢松软,呼吸运 动消失,表示脑和脊髓已完全破坏,否则应按上法再行捣毁。
2. 剪除躯干上部及内脏如图 1-1 所示,在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起,在骶髂关节水平以上 0.5~l 厘米处用粗剪刀剪断脊柱,然后将粗剪刀尖向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤,使蟾蜍 头、上肢与内脏自然下垂,将其一并剪除弃去,仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴于脊柱两 侧的坐骨神经。
在整个剪除过程中注意勿损伤神经。
3. 剥皮左手用组织镊夹紧或用手直接捏住脊柱断端(注意:不要夹住或接触神经),右手捏,将标本放在盛有任氏液 住其上的皮肤边缘,用力向下剥掉全部后肢皮肤(见图 1-2)的平皿中。
将手及用过的粗剪刀、组织镊等全部手术器械洗净,再进行下述步骤。
4. 分离两腿用镊子从背位夹住脊柱将标本提起,剪去向上突出的骶骨(注意勿损伤坐骨神经),然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半,并从耻骨联合中央剪开两侧大腿,然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。
第1篇一、实验目的1. 熟悉蟾蜍腓肠肌标本的制备方法。
2. 掌握刺激强度、频率对肌肉收缩的影响。
3. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系及其各自特点。
4. 理解神经肌肉兴奋性的生理机制。
二、实验原理蟾蜍腓肠肌标本是生理学实验中常用的实验材料,因其离体组织生活条件易于掌握,且与哺乳类动物生理功能相似。
通过观察蟾蜍腓肠肌在不同刺激强度、频率下的收缩反应,可以了解神经肌肉兴奋性的生理机制,以及刺激与反应之间的关系。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:蟾蜍、任氏液、生理盐水、手术刀、剪刀、镊子、电刺激器、换能器、记录仪等。
2. 实验仪器:显微镜、电刺激器、换能器、记录仪、生理盐水浴槽等。
四、实验步骤1. 制备蟾蜍腓肠肌标本:a. 将蟾蜍处死,用生理盐水冲洗干净。
b. 用手术刀沿脊柱两侧剪开皮肤,暴露腰骶丛神经。
c. 游离坐骨神经和腓肠肌,剪去无关分支。
d. 将腓肠肌和坐骨神经分别结扎,用生理盐水浸泡。
2. 连接仪器:a. 将坐骨神经连接到电刺激器。
b. 将腓肠肌连接到换能器。
c. 将换能器连接到记录仪。
3. 观察刺激强度对肌肉收缩的影响:a. 调整电刺激器的输出强度,从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应,分析刺激强度与肌肉收缩之间的关系。
4. 观察刺激频率对肌肉收缩的影响:a. 调整电刺激器的输出频率,从低到高依次刺激坐骨神经。
b. 观察并记录腓肠肌的收缩反应,分析刺激频率与肌肉收缩之间的关系。
5. 观察神经肌肉接头兴奋传递和骨骼肌兴奋的电变化与收缩之间的时间关系:a. 观察并记录腓肠肌在刺激前后的电位变化。
b. 分析电位变化与肌肉收缩之间的关系。
五、实验结果与分析1. 刺激强度与肌肉收缩的关系:实验结果显示,随着刺激强度的增加,腓肠肌的收缩幅度也随之增加。
当刺激强度达到一定阈值时,肌肉收缩达到最大幅度。
当刺激强度继续增加时,肌肉收缩幅度不再增加。
2. 刺激频率与肌肉收缩的关系:实验结果显示,随着刺激频率的增加,腓肠肌的收缩幅度逐渐减小。
蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制作以及神经动作电位观察及传导速度测定一:实验目的1、掌握蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法2、掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备3、掌握测定神经动作电位传导速度的原理与方法二:实验材料1、材料:蟾蜍2、器材:常用手术器械(毁髓针、手术镊、手术剪、骨钳、玻璃分针、图钉、蛙板、不锈钢盘)、污物缸、信号采集处理系统、神经屏蔽盒3、试剂:任氏液三:实验方法与步骤1、蟾蜍的双毁髓一只手握住蟾蜍,拇指按住其背部,食指压住其头部;另一只手捏住其嘴部将其头部上下轻轻扳动,找到第一道折痕,其中部即为枕骨大孔,用毁髓针垂直插入枕骨大孔;然后将针尖向前刺入颅腔并搅动以捣毁脑组织,此时的蛙为单毁髓动物;再将毁髓针退至枕骨大孔,针尖转向后方与脊柱平行刺入椎管,捣毁脊髓,彻底捣毁脊髓时可看到蟾蜍的后肢突然蹬直而后瘫软,此时的动物为双毁髓动物。
注意:a、若毁髓后蟾蜍的四肢肌肉紧张或活动自如,需重新毁髓;b、操作要快、准,且操作过程中不要挤压到蟾蜍的耳后腺,避免其分泌蟾酥。
2、坐骨神经-腓肠肌标本的制作(1)剥离后肢标本。
将蟾蜍背面向上置于蛙板上,用手术镊轻轻提起两前肢间的背部皮肤,用手术剪横向环形剪开皮肤,将蟾蜍身体下半部的皮肤剥离。
将蟾蜍剖腹,内脏向头部方向掀起,用骨钳在其第三节脊椎骨处剪断脊柱,然后用手术剪剪断相连的肌肉组织。
(2)分离两后肢。
用左手托起标本,拇指和食指固定住两后肢的肌肉,右手持骨钳剪断耻骨,手术剪剪开肌肉连接;纵向剪开脊柱使两后肢完全分离。
一只放入任氏液中备用,另一只用于继续下一步操作。
注意:在分离两后肢时需谨慎,不要使剪刀偏离中线太远以免损伤神经。
(3)分离坐骨神经。
将后置的脊柱端腹面向上,趾端想外侧翻转,使其足底向上,用图钉将其固定在蛙板上。
用玻璃分针沿脊神经向后分离坐骨神经。
股部沿肱二头肌和半膜肌之间的裂缝找到坐骨神经,用镊子和手术剪仔细去除半膜肌和肱二头肌,使神经暴露出来。
用玻璃分针轻轻挑起神经,自前向后剪断支配腓肠肌之外的分支,并去除神经上的其它组织。
坐骨神经-腓肠肌标本的制备XXX,YYY,ZZZ(版权所有,仅限个人)一、实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
二、实验原理:1.蟾蜍处死:将蟾蜍的脑和脊髓用毁髓针捣毁后,蟾蜍即死亡。
捣毁脑是为了将蟾蜍的感觉和运动中枢破坏,同时也使蟾蜍的意识消失,既避免解剖过程中蟾蜍感到痛苦,也避免蟾蜍有意识的反应;捣毁脊髓是为了破坏蟾蜍的周围神经系统,避免蟾蜍自然的非意识的反应(乱动)。
总之,双毁髓就是为了是蟾蜍在之后的解剖过程中无任何干扰实验的反应。
2.坐骨神经-腓肠肌标本的制备:坐骨神经直接支配着腓肠肌的反应,刺激坐骨神经的神经干,腓肠肌会产生收缩反应。
一次阈上刺激,腓肠肌会产生一个周期的收缩舒张过程,从而可以被信号采集系统采集,并通过计算机和相关软件转化成可视的收缩舒张曲线。
便于研究神经和肌肉的信号、反应关系和规律。
三、实验器材与试剂:(一)实验动物及器材:蟾蜍、常用蛙类手术器械(如:毁髓针、剪刀、解剖刀等)、蛙板、玻璃划针、固定针、培养皿、滴管、棉花、粗棉线等。
(二)实验试剂:任氏液(近似两栖动物内环境液,配制因子很多,不同于生理盐水)四、实验方法与步骤:1、蟾蜍处死,损毁脑和脊髓:a.学会持拿蟾蜍的方法:一般用左手持拿蟾蜍,用小指和无名指夹住蟾蜍两后腿,中指自然搭在蟾蜍腹部,食指和拇指可自由活动。
处死时,一般用拇指按住蟾蜍背部,食指将蟾蜍头鼻下压,以便使下针处清晰易找。
b.处死:按上述方法持拿,用毁髓针沿头部中线从鼻尖轻轻向后滑过,约在双眼连线中点后方某点,可感到有一下陷小窝,用针轻按,蟾蜍一般会有明显反应。
在此处下针。
将毁髓针垂直插入,会感觉到颅骨破碎的声音,立即将毁髓针向后放倒,将针尖从破碎处,并旋转捣毁脑部;然后将毁髓针拔出少许,向前放倒,向后插入同样旋转捣毁脊髓。
蟾蜍即被处死。
2、去除躯干上部及内脏:将蟾蜍腹部朝上放在蛙板上,将四肢用固定针固定。
蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本的制备
及神经干的性质实验报告
实验名称蛙的坐骨神经—腓肠肌标本的制备及神经干的性质实验
目的要求
学习并掌握坐骨神经—腓肠肌标本以及腓肠肌标本制备的方法;
学习生理学实验基本的组织分离技术;
观察刺激强度,刺激频率与肌肉收缩反应的关系;
掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导速度的基本原理和方法。
实验材料,仪器,试剂
蟾蜍、常用手术器械(手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针等)、烧杯、培养皿、纱布、棉线、粗剪刀、蛙板、污物缸、滴管、生理信号采集系统、张力传感器、铁架台、计算机、任氏液等。
实验原理
两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的神经肌肉标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及骨骼肌收缩的特点等。
任氏液是—种比较接近两栖动物内环境的液体,可以用来延长青蛙心脏在体外跳动时间、保持两栖类其他离体组织器官生理活性等。
腓肠肌由许多的纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。
当刺激强度过小时,不应期肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。
而能引起肌肉发生收缩的最小刺激强度,为阈刺激,但全部肌纤维同时收缩时,则出现最大的收缩反应。
这时,即使再加大刺激强度,肌肉的收缩强度也不会随之而增大。
可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激。
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激,发生一次迅速地收缩反应,即单收缩。
单收缩的过程分为三个时期,潜伏期、收缩期、舒张期。
刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。
在其他条件不变情况下,不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。
若刺激频率较小,两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间(即单收缩)时,肌肉收缩表现为一连串的单收缩;若增大刺激频率,使两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩的收缩期时间,而小于单收缩时,肌肉呈现不完全强直收缩;若继续增加刺激频率,使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间,肌肉则表现出完全强直收缩。
如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面,兴奋波先后通过两个电极处,便引导出两个方向相反的电位波形,称为双相动作电位。
如果两个引导电极之间的神经纤维完全损伤,兴奋波只通过第一个引导电极,不能传至第二个引导电极,则只能引导出一个方向的电位偏转波形,称为单相动作电位。
神经干由许多神经纤维组成,故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同,神经干动作电位是由许多不同直径和类型的神经纤维动作电位叠加而成的综合性电位变化,称复合动作电位,神经干动作电位幅度在一定范围内可随刺激强度的变化而变化。
动作电位在神经干上传导有一定的速度。
不同类型的神经纤维传导速度不同,神经纤维越粗则传导速度越快。
测定神经冲动在神经干上传导的距离(s)与通过这段距离所需时间(t),可根据n=s/t求出神经冲动的传导速度
实验方法
1.破坏脑和脊髓左手持蟾蜍,用食指压其头部前端,使头前俯。
右手持探针由头端沿
正中线向后划,触到凹陷即为枕骨大孔,将探针由此垂直刺入。
再将探针折向前方,插入颅腔内并左右搅动捣毁脑组织。
再将探针退回至进针处,针尖转向后方,刺入椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢瘫软,表明脑脊髓已完全破坏。
2.剪除躯干上部及内脏用粗剪刀在骶髂关节水平以上1cm处剪断脊柱。
左手握住后肢,右手持剪刀沿脊柱的断口向下剪开两侧的皮肤及肌肉,再剪除已下垂的躯干上部及内脏。
3.剥皮剪掉肛门周围的皮肤,左手捏脊柱断端(勿触碰神经),右手捏住断端边缘的皮肤,向下剥掉两后肢皮肤。
将标本背位放于表面有少许任氏液的蛙板上,洗净双手及用过的器械。
4.游离坐骨神经沿脊柱两侧用玻璃分针分离坐骨神经,沿中线将脊柱剪成两半。
捏住两侧下肢带骨用力向两侧掰,使耻骨联合处脱臼,再从耻骨联合中央剪开两后肢,一后肢放入盛有任氏液的平皿中备用,一后肢用玻璃分针划开梨状肌及其附近的结缔组织,循坐骨神经沟(股二头肌与半膜肌之间的裂隙处)找出坐骨神经的大腿部分,用玻璃分针将腹部的坐骨神经小心勾出来,手执结扎神经的线,剪断坐骨神经的所有分支,一直游离至膝关节。
5.完成坐骨神经腓肠肌标本的制备将分离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上,在膝关节周围剪掉全部大腿肌肉,并用普通剪刀将股骨刮干净,在股骨中部剪去上段股骨。
再在跟腱处以线结扎,剪断并游离腓肠肌至膝关节处,在膝关节以下将小腿其余部分剪掉。
这样即制得附着于股骨上、具有坐骨神经支配的腓肠肌标本。
6.用标本进行刺激实验把标本通过张力传感器与生理信号采集系统相连,观察刺激强度,刺激频率与肌肉收缩反应的关系以及神经干的相关性质。
实验结果
1.蟾蜍腓肠肌刺激强度与肌肉收缩反应实验
图1 蟾蜍腓肠肌刺激强度与肌肉收缩反应的关系
如图1所示,在一定范围内随着刺激强度的增加,肌肉收缩反应强度逐渐增大,但在增大到一定值时肌肉收缩反应的强度不再受刺激强度的影响而发生变化。
从图中我们可以看出该标本的阈值是0.050V,阈上刺激范围为0.050V-0.110V。
当刺激为0.110V时,肌肉收缩反应强度也达到最大,也即该实验标本的最适刺激强度为0.110V。
2. 蟾蜍腓肠肌刺激频率与肌肉收缩反应实验
图2 蟾蜍腓肠肌刺激频率与肌肉收缩反应的关系
如图2所示,在刺激电压固定在0.50V时,分别以不同频率的刺激去刺激标本,肌肉收缩反应有很大不同。
在刺激频率为1.0Hz时,肌肉标本的收缩形式为单收缩;当刺激频率在8.0Hz-20Hz时,收缩形式为不完全强直收缩;当刺激频率大于20Hz时,肌肉收缩为完全强直收缩。
3.神经干复合动作电位的测定实验
图3 蟾蜍坐骨神经神经干的复合动作电位
如图3所示,复合动作电位的波形图呈现出一个先升后降的波形图,复合动作电位的最大值为4.83mV,最小值为-1mV。
当神经纤维未受刺激时,膜外与电极所接触的两点之间没有电位差,所以两电极之间也无电位差存在,扫描线为一水平基线。
在神经干左端给予电刺激后,则产生一个向右传导的冲动(负电位),当冲动传到1电极(负电极)下方时,此处电位较2处为低,产生了电位差,扫描线向上偏转,记录出一个向上的波形(在电生理实验中,为了便于观察,习惯上规定负波向上)。
随后,冲动继续向右侧传导,离开1电极传向2电极处。
当它到达2电极(正电极)下方时,因1电极处神经差不多已恢复到原来的状态,于
是2电极处又较1电极处为负,引起扫描线向下偏转,记录出一个向下的波形。
这样,在神经冲动向右传导的过程中,就记录出了一个先升后降的双相动作电位。
4.神经干兴奋传导速度的测定实验
图4 蟾蜍坐骨神经神经冲动传导速度的测定
如图4所示,红色代表第一电极,绿色代表第二电极。
每刺激一次,第二个刺激即按照“间隔”所设定的时间向第一个刺激靠近一次,从而使第二个动作电位向图形向第一个动作电位相应靠近。
当在刺激6.5ms时,第二个动作电位的图形幅值开始比第一个减小时,说明第二个刺激落入到第一次兴奋后的相对不应期。
第二个刺激越是靠近第一个刺激,其动作电位的幅值就越小。
测得神经干兴奋传导速度约为24.0m/s。
分析讨论
由实验结果可知,实验中蟾蜍腓肠肌受刺激的阈值是0.050V,阈上刺激范围为0.050V-0.110V。
神经细胞的兴奋传递是由于膜内外的Na+和K+离子浓度变化儿引起的,膜上存在着许多的Na+和K+离子通道,它们都受一定电压门控系统控制着通道的开与闭。
在刺激的强度低于阈值时,不足以使门控通道开放,相对离子浓度不会发生变化。
故无法引起神经细胞兴奋,只有在强度足够大的时候,神经细胞才会兴奋并传导至肌肉。
细胞膜上的Na+和K+离子通道是有限的,给予一个最适刺激强度,Na+和K+离子通道将全部开放,神经达到最大兴奋。
若给予神经细胞更大的刺激强度,因为离子通道的限制,神经细胞也不可能出现更大的兴奋性。
单收缩可分为3个阶段:①潜伏期是指从发生刺激打刚开始发生张力变化之间的时期;②收缩期是指从收缩开始到收缩效应达到最高点的时期;③舒张期是指从收缩效应最高点回复到原来静息水平的时期。
当刺激频率低时,肌肉发生一连串互不相连的单收缩,这是因为每个新刺激到来时,前一次刺激引起的单收缩已经结束。
于是,每个刺激都引起一次独立的收缩。
发生不完全强直收缩时,每次新的收缩都发生在前次收缩的舒张期中,肌肉则在自身尚处于一定程度的缩短或张力存在的情况下进行新的收缩,即发生了收缩总和。
我们便观察到了锯齿形肌肉收缩曲线图。
当刺激频率增大到一定的较高程度时,出现完全强直收缩,这是因为连续刺激时,后来的每个刺激都可能总是落在前一次收缩的缩短期结束之前,造成相继发生的肌肉收缩有可能在前一次收缩的缩短期结束之前或其顶点开始,于是各次收缩的张力或长度变化发生融合而叠加起来。
正常体内骨骼肌的收缩都是强直收缩。
神经干复合电位的传导速度受到多种因素的影响,首先是神经纤维的粗细,其次是纤
维本身的性质,还有就是实验中标本的制备过程是否规范,神经是否受到严重损伤。
分离坐骨神经时,为避免过度牵拉神经,绝对不允许用手或金属镊子钳夹神经。
神经纤维尽可能分得长一些。
为防止神经干燥,失去生物活性,一段时间后,应该用滴管滴加任氏液使其保持湿润状态。