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变性与非变性聚丙烯酰胺的区别

变性与非变性聚丙烯酰胺的区别
变性与非变性聚丙烯酰胺的区别

非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体

现在哪里?

作者: 墨池(站内联系TA)收录: 2011-07-31 发布: 2011-07-21

1 非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体现在哪里?

2 SRAP标记用6%聚丙烯酰胺凝胶电泳,是变性还是非变性?配方是什么?配胶时,过硫酸铵是不是要最后加入?

谢谢(*^__^*) 嘻嘻

收、蛋白质分子量测定会使用变性PAGE,而DNA跑PAGE通常是采用非变性PAGE,另外回收活性蛋白也有用非变性PAGE的。

2. SRAP(貌似叫什么...相关序列扩增多态性)标记这个应该是非变性PAGE,6%的PAGE胶配方就不用发了吧,google一下一大堆。TEMED和过硫酸铵都是最

Originally posted by holyala at 2011-07-21 2121:

1. 变性胶加尿素或者其他变性剂,非变性胶是不加的。一般做RNA分离或回收、蛋白质分子量测定会使用变性PAGE,而DNA跑PAGE通常是采用非变性PAGE,另外回收活性蛋白也有用非变性PAGE的。

2. SRAP(貌似叫什么...相 ...

Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2138:

TEMED和过硫酸铵的先后呢?

Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2019:

1 非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体现在哪里?

2 SRAP标记用6%聚丙烯酰胺凝胶电泳,是变性还是非变性?配方是什么?配胶时,过硫酸铵是不是要最后加入?

谢谢(*^__^*) 嘻嘻

1. “变性”体现在聚丙烯酰胺凝胶中加入尿素(一般跑DNA)或SDS(一般跑蛋白),另外,如果样品也要变性(DNA的loanding buffer也与普通的琼脂糖电泳所用的不同,同理所用Marker也不同;蛋白也要变性)。

2.SRAP一般用变性的聚丙烯酰胺,毕竟片段还是比较小。

3.配胶时不用加入过硫酸铵,灌胶前同时加入过硫酸铵(注意有毒!低温保存)和TEMED(也有毒,特臭)。

另外,这些问题貌似分子克隆那本书非常详细,只不过SRAP标记较新而已,没

Originally posted by changes at 2011-07-21 2107:

1. “变性”体现在聚丙烯酰胺凝胶中加入尿素(一般跑DNA)或SDS(一般跑蛋白),另外,如果样品也要变性(DNA的loanding buffer也与普通的琼脂糖电泳所用的不同,同理所用Marker也不同;蛋白也要变性)。

2.SRAP一般 ...

Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2104:

你说SRAP是变性的,我看师姐的配胶过程没有一点体现变性的物质。

非变性胶也可以,但是分辨率会低些。另外,你是用SRAP标记做什么的,多态

Originally posted by 冼亮淀粉酶 at 2011-07-22 0727:

APS和TEMED虽然不好,但也比不上丙烯酰胺有神经毒性,可随皮肤渗入人体,所以我是什么东西都加完之后最后加丙烯酰胺。

...额~~话说我们一般都是把丙烯酰胺和甲叉丙烯酰胺配成40%的母液,用的时候根据所需要的浓度加一定量的母液即可。要是每次都搞丙烯酰胺来配,那谁

Originally posted by changes at 2011-07-21 2107:

1. “变性”体现在聚丙烯酰胺凝胶中加入尿素(一般跑DNA)或SDS(一般跑蛋

白),另外,如果样品也要变性(DNA的loanding buffer也与普通的琼脂糖电

泳所用的不同,同理所用Marker也不同;蛋白也要变性)。

2.SRAP一般 ...

这个我有点问题...跑DNA的PAGE电泳要用变性胶么?根据我的经验,双链DNA跑尿素PAGE的时候由于变性导致双链打开,电泳图会非常难看,原本的单一条带会变成非常接近的两个条带。嗯,不过我这种情况是DNA片段较大(>50bp)的时候,不知道十几个bp的DNA会怎样。so...我只用过尿素PAGE分离

为单链

Originally posted by changes at 2011-07-21 2202:

非变性胶也可以,但是分辨率会低些。另外,你是用SRAP标记做什么的,多态

性还是标记目的基因或遗传图谱构建?

Originally posted by holyala at 2011-07-22 1055:

...额~~话说我们一般都是把丙烯酰胺和甲叉丙烯酰胺配成40%的母液,用的时

候根据所需要的浓度加一定量的母液即可。要是每次都搞丙烯酰胺来配,那谁

受得了啊。。。

Originally posted by 墨池 at 2011-07-22 1320:

你理解有误,我们说的就是指母液,不知道你怎么理解成这样了

不知道是哪里的问题啊...如果我理解不对的话,那么冼亮淀粉酶大大说的:“APS和TEMED虽然不好,但也比不上丙烯酰胺有神经毒性,可随皮肤渗入人体,所以我是什么东西都加完之后最后加丙烯酰胺。” 意思难道是所有东西都

Originally posted by 墨池 at 2011-07-22 1313:

多态性。一种观赏花卉50个品种的遗传多样性分析

多态性的话建议使用变性胶检测,使用大板、长板,那样跑出来相当漂亮,也方便统计条带。

另外,材料的亲缘关系最好也明确,对于最终结果的分析有帮助。

Originally posted by holyala at 2011-07-22 1454:

不知道是哪里的问题啊...如果我理解不对的话,那么冼亮淀粉酶大大说的:“APS和TEMED虽然不好,但也比不上丙烯酰胺有神经毒性,可随皮肤渗入人体,所以我是什么东西都加完之后最后加丙烯酰胺。” 意思难道是所 ...

Originally posted by changes at 2011-07-22 1422:

多态性的话建议使用变性胶检测,使用大板、长板,那样跑出来相当漂亮,也方便统计条带。

另外,材料的亲缘关系最好也明确,对于最终结果的分析有帮助。

:P

变性胶的配方有么?可否参考一下下(*^__^*) 嘻嘻……

聚丙烯酰胺

聚丙烯酰胺 1、定义 丙烯酰胺聚合物是丙烯酰胺的均聚物及其共聚物的统称。工业上凡是含有50%以上的丙烯酰胺(AM)单体结构单元的聚合物,都泛称聚丙烯酰胺。其他单体结构单元含量不足5%的通常都视为聚丙烯酰胺的均聚物。 聚丙烯酰胺,polyacrylamide(PAM),CAS RN:[9003-05-8],结构式为: n是聚合度。n的范围很宽,数量级为102~105,相应的相对分子质量由几千到上千万。 分子量是PAM的最重要参数。按其值得大小有低分子量(<100×104)、中等分子量(100×104~1000×104)、高分子量(1000×104~1500×104)和超高分子量(>1700×104)四种。不同分子量范围的PAM有不同的使用性质和用途。 2、分类 聚丙烯酰胺按在水溶液中的电离性可分为非离子型、阴离子型、阳离子型、两性型。 非离子型聚丙烯酰胺(NPAM)的分子链上不带可电离基团,在水中不电离;阴离子型聚丙烯酰胺(APAM)的分子链上带有可电离的负电荷基团,在水中可电离成聚阴离子和小的阳离子;阳离子型聚丙烯酰胺(CPAM)的分子链上带有可电离的正电荷基团,在水中可电离成聚阳离子和小的阴离子;两性的聚丙烯酰胺(AmPAM或ZPAM)的分子链上则同时带有可电离的负电荷基团和正电荷基团,在水中能电离成聚阴离子和聚阳离子,ZPAM的电性依溶液体系的PH值和何种类型的电荷基团多寡而定。 PAM的电性称谓和所带的电荷基团解离后的电性称谓相同。 按照聚合物分子链的几何形状可把PAM分为线型、支化型和交联型。PAM分子链的形状一般是线型结构。但是在丙烯酰胺自由基聚合反应的过程中会发生链转移反应。

聚丙烯酰胺凝胶电泳 (1)

聚丙烯酰胺凝胶电泳 (Polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE) 聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺(acrylamide,Acr)单体相互聚合成多条长链,再与N,N-甲叉双丙烯酰胺(methylene-bisacrylamide,Bis)在引发剂和加速剂的作用下交联而成的凝聚胶多孔聚合物。凝胶孔径的大小可通过控制单体和交联剂的浓度来调节,从而满足不同分子量物质的分离要求。不同浓度的聚丙烯酰胺非变性凝胶的有效分离范围如表所示: 表1 DNA在聚丙烯酰胺凝胶中的有效分离范围 丙稀酰胺[%(w/v)]a有效分离范围(bp)二甲苯青FF b溴酚蓝b 3.51000-2000 460 100 5.080-500 260 65 8.060-400 160 45 12.040-200 70 20 15.025-150 60 15 20.0 6-100 45 12 a.N,N′-亚甲双丙稀酰胺占丙稀酰胺浓度的1/30 b.给出的数字是迁移率与染料相同的双链DNA片段的粗略大小(核苷酸对)。 聚丙烯酰胺凝胶的制备和电泳都比琼脂糖凝胶更为费事。聚丙烯酰胺凝胶几乎总是铺于两块玻璃板之间,两块玻璃板由间隔片隔开冰封以绝缘胶布。在这种配置形式下,大多数丙烯酰胺溶液不会与空气接触,所以氧对聚合的抑制仅限于凝胶顶部的一个窄层里。聚丙烯酰胺凝胶一律是进行垂直电泳,根据分离的需要,其长度可以在10-100cm之间。聚丙烯酰胺凝胶与琼脂糖凝胶相比有3个主要优点:(1)分辨力强,长度仅仅相差0.2%(即500bp中的1bp)的DNA分子即可分开;(2)所能装载的DNA分子量远远琼脂糖凝胶:多达10μg的DNA可以加样于聚丙烯酰胺凝胶的一个标准样品槽(1cm×1mm)而不致显著影响分辨力;(3)从聚丙烯酰胺凝胶中回收的DNA 纯度很高,可适用于要求最高的实验(如鼠胚胎微注射)。 常用的是两种聚丙烯酰胺凝胶: (1)用于分离和纯化双链DNA片段非变性聚丙烯酰胺凝胶 (2)用于分离、纯化单链DNA的变性聚丙烯酰胺凝胶

不同离子型聚丙烯酰胺的使用方法和用量用量计算(详细参考)

不同离子型聚丙烯酰胺的使用方法和用量 一、阴离子聚丙烯酰胺: 1、用于污水沉降中,建议配比浓度0.1%。 2、先将粉剂均匀地投撒在自来水中,加以40-60转/分的中速搅拌使高分子充分溶解于水,方可投加使用。 3、实验时,取100ml废水,加入10%聚合氯化铝溶液,并缓慢搅拌,用注射器缓慢滴加PAM 溶液,每次 0.5ml,根据生成的矾花大小及絮体紧密程度、上清液清澈度、沉降速度、投加量等来确定最合适的药剂。 4、适用于钢铁、化纤、印染、电镀、湿法冶金,也可用建筑胶水厂、涂料厂做增稠剂、造纸厂做分散剂等。吨废水添加干粉量为5-10g。 二、非离子聚丙烯酰胺 用于气浮工艺时,建议配比浓度0.1%,用法同阴离子,搅拌时间90分钟。 三、阳离子聚丙烯酰胺 1、用于污泥脱水时,建议配比浓度0.2%,搅拌时间50分钟投加使用。 2、实验时,取100ml废水,用注射器缓慢滴加PAM溶液,每次约0.5ml,根据生成的矾花大小及絮体紧密程度、上清液清澈度、沉降速度、投加量等来确定最合适的药剂。 3、适用于制药厂、皮革厂、印染污泥、化工污泥、造纸厂、污水处理厂等,吨废水添加干粉量为10-20g. 四、药剂用量计算 1.阴离子:配比浓度1/1000即:1吨水量加1kgPAM做小实验:如污水100ml里加1ml 药剂;1吨污水里加10g(L)药剂;1吨污水里加10gPAM. 2.阳离子:配比浓度2/1000即:1吨水里加2kgPAM;做小实验:如污泥100ml里 0.5mlL药剂;1吨污泥里加5kg药剂;1吨污泥里加10gpAM 五、影响气浮效果的因素 1、溶解情况如何?PAM 溶解时搅拌强度不宜过大,可以考虑延长搅拌时间来改善溶解情况 2、配制浓度问题。PAM配制浓度偏高时与待处理废水的混合可能会不够理想,可以考虑降低配制浓度,最低可调至0.05%,一般为0.05%-0.1%。由于低浓度时PAM 溶解较困难,可以先配制成一个较高浓度的溶液,然后由后稀释系统稀释至所需浓度。 3、PAC与PAM投加点间距,条件允许情况下间距尽可能远 4、PAM投加与混合。反应情况不理想时可以考虑两点投加,且两投加点之间要有一定的距离,第二个投加点离出水口不宜过远,以防止产生的絮团再次破碎。出水口前管道内应设置静态混合器,条件不足的话,弄个弯头也将就了 六、聚丙烯酰胺经验用量 中断废水回收、废浆污泥脱水阴离子、阳离子千分之三配每吨用3-5克;城市污水处理厂污泥脱水阳离子千分之五配每吨干污泥用4千克;钢厂循环水处理、污泥脱水阴离子1200万千分之五配每吨用5-7克;洗煤煤泥沉降、层渣沉降阴离子800-1200万千分之三配每吨用4克;盐水澄清去除钙、镁阴离子1800万千分之一配每吨用1-2克;电镀重金属、氢氧化物处理阴离子600-800万千分之一配每吨用1-2克;浮选助剂浮选前改进颗粒大小阴离子1000万千分之三配每吨用3-4克;肉

分析聚丙烯酰胺阳离子、非离子、阴离子三者在污水处理中

分析聚丙烯酰胺阳离子、非离子、阴离子三者在污水处理中聚丙烯酰胺分为三种,有阳离子聚丙烯酰胺、非离子聚丙烯酰胺、阴离子聚丙烯酰胺,三者都在污水处理中有一定的用途,但是相互间又有一定的区别,以下来把三者间区别做个简单分析下。 聚丙烯酰胺(PAM)是一种线型水溶性高分子,是水溶性高分子化合物中应用最为广泛的品种之一,PAM及其衍生物可以用作高效的絮凝剂、增稠剂、纸张增强剂以及液体的减阻剂,广泛应用于水处理、造纸、石油、煤炭、矿冶、地质、轻纺、建筑等工业部门。 非离子聚丙烯酰胺: 用途: 污水处理剂:当悬浮性污水显酸性时,采用非离子聚丙烯酰胺作絮凝剂较为合适.这是PAM起吸附架桥作用,使悬浮的粒子产生絮凝沉淀,达到净化污水的目的.也可用于自来水的净化,尤其是和无机絮凝剂配合使用,在水处理中效果最佳. 纺织工业助剂:添加一些化学品可配成化学资料,用于纺织品上浆. 防沙固沙:将非离子聚丙烯酰胺溶成0.3%浓度加入交联剂,喷洒在沙漠上可起到防沙固沙的作用. 土壤保湿剂:用作土壤保湿剂和各种改性聚丙烯酰胺的基础原料. 阳离子聚丙烯酰胺: 用途: 污泥脱水:根据污性质可选用本产品的相应牌号,可有效在污泥进入压滤之前进行重力污泥脱水.脱水时,产生絮团大,不粘滤布,

在压滤时不流散,用量少,脱水效率高,泥饼含水率在80%以下. 污水和有机废水的处理:本产品在酸性或碱性介质中均呈现阳电性,这样对污水中悬浮颗粒带阴电荷的污水进行絮凝沉淀,澄清是极为有效的,如酒精厂废水,啤酒厂废水,味精厂废水,制糖厂废水,肉食品厂废水,饮料厂废水,纺织印染厂的废水等,用阳离子聚丙烯酰胺要比用阴离子聚丙烯酰胺,非离子聚丙烯酰胺或无机盐效果要高数倍或数十倍,因为这类废水普遍带有阴电荷. 自来水厂水处理絮凝剂:该产品具有用量少,效果好,成本低等特点,告别是和无机絮凝剂复配使用效果更好. 油田化学品:如粘土防膨剂,油田酸化用稠化剂品等. 造纸助剂:阳离子PAM纸张增强剂是一种含氨基甲酰基的水溶性阳离子聚合物,具有增强、助留、助滤等功能,可有效地提高纸的强度。同时该产品也是一种高效分散剂。 阴离子聚丙烯酰胺: 用途:工业废水处理:对于悬浮颗粒,较出、浓度高、粒子带阳电荷,水的PH值为中性或碱性的污水,钢铁厂废水,电镀厂废水,冶金废水,洗煤废水等污水处理,效果最好。饮用水处理:我国很多自来水厂的水源来自江河,泥沙及矿物质含量高,比较浑浊,虽经过沉淀过滤,仍不能达到要求,需要投加絮凝剂,投加量是无机絮凝剂的1/50,但效果是无机絮凝剂的几倍,对于有机物污染严重的江河水可采用无机絮凝剂和我公司的阳离子聚丙烯酰胺配合使用效果更好。淀粉厂及酒精厂的流失淀粉酒糟的回收:现在很多淀粉厂的废水内含

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)的分类 有三种常用的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳方法:blue native(BN-PAGE),clear native (CN-PAGE),quantitative preparative native continuous(QPNC-PAGE)。 在一个典型的native PAGE方法中,复合物被CN-PAGE或BN-PAGE分离。然后可以用其它分离方法如SDS-PAGE或等电聚焦做进一步分离。随后切割凝胶,蛋白复合物每一个部 分都被分开。蛋白的每个条带可以消化后做肽链指纹图谱或重新测序。这样就可以提供一个蛋白复合物中单个蛋白的重要信息。 1. Blue Native PAGE Blue Native PAGE是最古老的Native-PAGE技术。是以考马斯亮蓝作为电泳分离后蛋白 质鉴定染料的一种电泳方法。这种方法的缺点是:考马斯亮蓝与蛋白的结合起到了去垢剂的作用,可能导致复合物的分离;并对化学发光或蛋白质辅基的荧光或荧光染料的标记具有潜在的猝灭作用。 Blue Native PAGE在分析蛋白质-蛋白质相互作用以及膜蛋白复合物方面有很大的优势,其分离范围在100KDa-10MDa。在Blue native PAGE过程中,最重要的化合物就是考马斯亮蓝,除了增溶作用以外,蛋白质表面结合了大量的考马斯亮蓝染料而带上负电荷,这会导致即使碱性蛋白在pH7.5条件下也会向阴极迁移。但是,蛋白质虽然带有大量的负电荷,然而其分离依据的根本还是根据不连续的凝胶梯度-凝胶孔径的逐渐减小,蛋白质最终迁移 到其自身大小与凝胶孔径相近似的位置而停止。并且在分离膜蛋白的过程中,由于带有负电荷,而不会引起蛋白聚合,与酸性染料的结合,膜蛋白也由疏水性变成亲水性,溶解性大大提高。 1.2 Clear Native PAGE Clear Native PAGE是通过除染色以的其它方法如SLS鉴定蛋白的电泳技术。然而,这种方法最大的应用还是研究蛋白质-蛋白质相互作用,特别是和质谱联用。 Clear Native PAGE是在聚丙烯酰胺凝胶中分离酸性水溶性蛋白和膜蛋白(PI<7)的电泳

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤

D N A非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及 步骤 公司标准化编码 [QQX96QT-XQQB89Q8-NQQJ6Q8-MQM9N]

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤 最近需要做DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,需要用银染显示条带,但是找不到具体的配方和步骤,不知和蛋白PAGE电泳银染有什么差别,哪位师兄师姐有配方可否发一份,十分感谢!一、电泳试剂: 1、30%聚丙烯酰胺(29:1) 丙稀酰胺29克,Bis1克,水100ml。 2、10%过硫酸胺 过硫酸胺1克,水10ml。 3、TEMED 4、5xTBE Tris 27克,硼酸克, EDTA(pH 10ml,定容至500ml。 二、银染试剂 1、固定液:100ml无水乙醇,5ml冰醋酸,定容至1000ml。 2、% AgNO3:AgNO3 1克,水500ml。 3、% NaOH:NaOH 克,水500ml。 4、37%甲醛。 三、配胶(6%): 30%聚丙烯酰胺(29:1) 8ml,5xTBE 8ml,定容至40ml,加10%过硫酸胺 200ul;TEMED 20ul。室温凝固时间>1小时。 四、银染: 1、固定液固定10m。 2、水洗2m x3次。 3、% AgNO3 100ml +37%甲醛50ul,混匀,避光染色30~50m。 4、水洗 20秒x2次。

5、% NaOH 100ml,加37%甲醛,混匀,显色3~10m。 6、水洗若干次,终止显色。 电泳时间:150v x 3h,溴酚兰的位置相当于40bp。 银染后胶面积将膨胀10%。 在终止显色过程中,将依惯性继续显色,所以不等显色到位即可进行终止显色。 显色到位后立即拍摄,水浸泡过夜将使背景加深转贴!!! 聚丙烯酰胺凝胶电泳是分子生物学常用的一种技术。我们实验室应用该项技术进行基因组甲基化的筛选,取得了一定结果。因为全基因组的筛选需要很高的灵敏度,背景干扰降到最低,因此在对凝胶进行染色时,往往采用同位素法或银染法,而且配制的胶往往很大,我们配制的是大约40×35cm的胶,厚。同位素十分灵敏,特异,但是由于其操作的复杂性,许多实验室开展有一定困难。银染法相对简便易行,便于一般的实验室开展。 需要指出的是,应用与筛选基因组的银染往往采用测序胶的染色方法,这样才能保证灵敏性,我们在长期的工作中积累了一些银染的经验,与大家分享。 下面是网上的一个银染方法,我们使用后觉得效果不错,然后以此为基础,介绍一下我们的经验 测序凝胶的银染 染色过程要求凝胶浸在塑料盘中。因而至少使用两个盘子,大小与玻璃板类似。在盘中加入新鲜溶液之前须用高质量的水洗涤盘子。 1. 电泳完毕后用一个塑料片子小心地分开两板,凝胶应该牢固地附着在短玻璃板上。 2. 固定凝胶:将凝胶(连玻璃板)放入塑料盘,用固定/停止溶液浸没,充分振荡20分钟或直至样品中染料完全消失,胶可在固定/停止溶液中保存过夜(不振荡)。保留固定/停止溶液,用于终止显影反应。 3. 洗胶:用超纯水振荡洗胶3次,每次2分钟。从水中取出, 当转移至下一溶液时拿着胶板边沿静止10-20秒,使水流尽。 4. 凝胶染色:把凝胶移至染色溶液充分摇动30分钟。 5. 凝胶显影:

SDS-PAGE凝胶配制试剂盒

SDS-PAGE 凝胶配制试剂盒 简介: 聚丙烯酰胺凝胶电泳(Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis , SDS-PAGE),其原理在于聚丙烯酰胺凝胶为网状结构,具有分子筛效应。它有两种形式:非变性聚丙烯酰胺凝胶及SDS-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE);非变性聚丙烯酰胺凝胶,在电泳的过程中,蛋白质能够保持完整状态,并依据蛋白质的分子量大小、蛋白质的形状及其所附带的电荷量而逐渐呈梯度分开,主要用于分离蛋白质和寡核苷酸。 SDS-PAGE 凝胶配制试剂盒不仅可用于配制SDS-PAGE 凝胶,也可配制非变性(native)PAGE 凝胶,具体配制的量应根据器具大小决定。 组成: 操作步骤(仅供参考): 1、 配制10%过硫酸铵:直接在Ammonium Persulfate 中加入蒸馏水,充分溶解,分装 成小份储存于-20℃或4℃。注意:一般用1.5mlEP 管分装成0.5-1ml 每支,-20℃保存,每支使用2-3次即弃用。短期使用时,可保存于4℃,1周有效。 2、 根据目的蛋白分子量大小选择合适的凝胶浓度,按照下表配制分离胶(下层胶): 不同浓度的SDS-PAGE 分离胶的最佳分离范围: SDS-PAGE 分离胶浓度 最佳分离范围 6%胶 50-150kD 8%胶 30-90kD 10%胶 20-80kD 12%胶 12-60kD 15%胶 10-40kD 成分 配制不同体积SDS-PAGE 分离胶所需各成分的体积(ml) 编号 名称 PE0018 30T Storage 试剂(A): 30% Acr-Bis(29:1) 100ml 4℃ 避光 试剂(B): 1.5M Tris-HCl(pH8.8) 100ml RT 试剂(C): 10% SDS 5ml RT 试剂(D): Ammonium Persulfate 0.5g RT 试剂(E): TEMED 2×1ml 4℃ 避光 使用说明书 1份

sds-page

聚丙烯酰胺凝胶电泳(英语:polyacrylamide gel electrophoresis,简称PAGE),是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的一种常用电泳技术,用于分离蛋白质和寡核苷酸。 作用原理:聚丙烯酰胺凝胶是具有分子筛作用的网络结构。它有两种形式:非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)和变性聚丙烯酰胺凝胶。 在蛋白质的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳中,蛋白质可以保持完整的状态,并根据蛋白质的分子量,蛋白质的形状和附着的电荷量逐渐彼此分离。在DNA的非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳中,DNA以双链状态游动,其迁移率受碱基组成和序列的影响。 在变性聚丙烯酰胺凝胶电泳中,变性剂通常为SDS(SDS-PAGE),变性剂通常为尿素和甲酰胺。蛋白质的SDS-PAGE技术由Shapiro于1967年首次建立。他们发现,蛋白质亚基的电泳迁移率主要取决于亚基的分子量(电荷因子可忽略不计),加入离子去污剂和强还原剂(SDS,十二烷基样品介质和丙烯酰胺凝胶。 SDS是一种阴离子洗涤剂。作为变性剂和增溶剂,SDS可以破坏分子之间的氢键,展开分子并破坏蛋白质分子的二级和三级结构。诸如巯基乙醇和二硫苏糖醇之类的强还原剂可以破坏半胱氨酸残基之间的二硫键。将还原剂和SDS加入样品和凝胶后,分子解聚成多肽链。解聚的氨基酸侧链与SDS结合形成蛋白质SDS胶束。聚合物的负电荷远高于蛋白质的原始电荷,因此消除了不同分子之间的电荷和结构差异。

通常,不连续缓冲系统用于SDS-PAGE,其分辨率高于连续缓冲系统。 浓缩胶的作用是积聚,凝胶小,孔径大,将较薄的样品加入到增稠胶中,通过大孔胶的迁移作用将其浓缩到狭窄区域。当选择Tris / HCl缓冲溶液作为样品溶液和浓缩凝胶时,选择Tris /甘氨酸作为电极溶液。电泳开始时,HCl分解为氯离子,甘氨酸分解为甘氨酸离子。蛋白质带负电荷,因此它们一起移动到正电极。氯离子最快,甘氨酸离子最慢,蛋白质在中间。电泳开始时,氯离子的迁移率最高,高于蛋白质。因此,在电泳的背面形成低电导率区域,并且电场强度与低电导率区域成反比。因此,产生更高的电场强度,这使得蛋白质和甘氨酸离子快速移动以形成稳定的界面,这使得蛋白质在移动的界面附近聚集并浓缩成中间层。 在这种方法中,蛋白质的迁移率主要由其相对分子量决定,与电荷和分子形状无关。

最新省时6 %变性聚丙烯酰胺凝胶电泳

6 %变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 实验试剂及配制: a, 40 %丙烯酰胺单体凝胶贮存液。丙烯酰胺38 g,甲叉双丙烯酰胺 2 g,加双蒸水定容至 100mL,过滤,贮存于棕色瓶中。 b,变性剂。1 M NaOH 1 mL,甲酰胺 95 mL,溴酚蓝 0. 05 g,二甲苯青 0. 05 g,加双蒸水定容至100 mL。 C, 固定液。100 mL 冰醋酸溶于双蒸水定容至1 000 mL。 d, 银染液。硝酸银 1 g, 37 甲醛 1. 5 mL,加双蒸水定容至1000 mL。 f, 显影液。无水碳酸钠 30 g, 37 甲醛 1. 5mL, 10 mg /mL 硫代硫酸钠 200 μL,加双蒸水定容至 1 000 mL。 DNA 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的操作流程 6 %变性凝胶的制备:40 %的凝胶贮存液 11. 2 mL,尿素36.36g, 5 × TBE 15mL,加双蒸水定容至 75 mL。预冷至 4 ℃后,加入500 μL 10 过硫酸铵和 50 μL TEMD 混合均匀,灌胶。灌胶完毕,插入样品梳,在室温下聚合 30 ~60 min。聚合完全后,梳齿下可见二条折光线。 电泳:安装电泳装置,在电泳槽中加入1 × TBE缓冲液,使缓冲液覆盖样品孔。拔出样品梳,用移液器吸取适量缓冲液冲洗样品孔。打开变压器,恒定功率 60 W 预电泳 15 ~30 min。预电泳结束后,用移液器将 DNA 样品小心注入样品孔中( 加样量为 3 ~ 5 μL) ,电泳直至带型分开。

固定:关闭电源,卸下玻璃板,剥离玻璃板,将胶板置于固定液中固定 30 min,直到指示剂颜色褪去。 漂洗:将胶板转移到双蒸水中漂洗三遍, 每次 2 ~ 3 min。 染色:转移胶板至染色液中,在摇床上摇 动染色 30 ~ 40 min。 显影:将胶板在双蒸水中漂洗 5 ~ 10 s 后 立即放入预冷为 4 ℃~ 10 ℃的显影液中,摇动显 影直到带型完全出现。 定影:将出现带型的胶板放入固定液中定 影 2 ~ 3 min,再用双蒸水漂洗两次 ( 每次 2 min) 。 干胶:胶板置于室温自然干燥。 带型统计 改良方法:a,银染 0.5%HNO+0.1 %AgNO b,漂洗蒸馏水2-3s C,显影 1.5% NaOH+0.2%Na_CO+0.5%HCHO 2-5 min d, 终止 5%无水乙醇+ 0.5 %HNO1 m后用自来水冲洗1 min。

聚丙烯酰胺非离子型、阴离子型和阳离子型的粉状及胶状聚丙烯酰胺的技术

聚丙烯酰胺非离子型、阴离子型和阳离子型的粉状及胶状聚丙烯酰胺的技术 1主题内容与适用范围 本标准规定了非离子型、阴离子型和阳离子型的粉状及胶状聚丙烯酰胺的技术要求、实验方法、检验规则及标志、包装、运输和贮存. 2引用标准 GB 5761 悬浮法聚氯乙烯树脂 GB 12005.1 聚丙烯酰胺特性粘数的测定方法 GB 12005.2 聚丙烯酰胺固含量的测定方法 GB 12005.3 聚丙烯酰胺中残留单体含量的测定化法GB 12005.4 聚丙烯酰胺中残留单体含量的测定液体色谱法 GB 12005.5 聚丙烯酰胺中残留单体含量的测定气相色谱法 GB 12005.6 聚丙烯酰胺水解度的测定方法 GB 12005.7 聚丙烯酰胺粒度测定方法 GB 12005.8 聚丙烯酰胺溶解速度的测定方法 GB 12005.9 聚丙烯酰胺命名

3型号及品级 聚丙烯酰胺产品型号命名规定的符号表示.同一型号的产品分为优级品一级品和合格品. 4技术要求 粉状和胶状聚丙烯酰胺的技术要求应分别符合表1和表2的规定. 表1 粉状聚丙烯酰胺的技术要求 GB/T13940-92 续表1 序 号级别 指标 检验项目 优级 品 一级品合格品 3 水解度.% 根据聚丙烯酰胺命名的规定,按 标称值进行分档

表2 胶状聚丙烯酰胺的技术要求

GB/T13940-92 注:使用单位对产品有特殊要求时,供需双方按照合同中有关条款执行 5实验方法 5.1 外观测定 在自然光下,目视测定样品的外观. 5.2 特性粘数的测定 按手册规定 5.3 水解度的测定 按手册规定 5.4 粒度的测定 按手册规定 5.5 固含量的测定 按手册规定 5.6 残留单体含量的测定 残留单体按行业和企业标准规定.普通型聚丙烯酰按以企业标准为仲裁方法,食品卫生级以食品检验办法为仲裁方法.

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤审批稿

D N A非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步 骤 YKK standardization office【 YKK5AB- YKK08- YKK2C- YKK18】

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤 最近需要做DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,需要用银染显示条带,但是找不到具体的配方和步骤,不知和蛋白PAGE电泳银染有什么差别,哪位师兄师姐有配方可否发一份,十分感谢!一、电泳试剂: 1、30%聚丙烯酰胺(29:1) 丙稀酰胺29克,Bis1克,水100ml。 2、10%过硫酸胺 过硫酸胺1克,水10ml。 3、TEMED 4、5xTBE Tris 27克,硼酸克, EDTA(pH 10ml,定容至500ml。 二、银染试剂 1、固定液:100ml无水乙醇,5ml冰醋酸,定容至1000ml。 2、% AgNO3:AgNO3 1克,水500ml。 3、% NaOH:NaOH 克,水500ml。 4、37%甲醛。 三、配胶(6%): 30%聚丙烯酰胺(29:1) 8ml,5xTBE 8ml,定容至40ml,加10%过硫酸胺 200ul;TEMED 20ul。室温凝固时间>1小时。 四、银染: 1、固定液固定10m。 2、水洗2m x3次。 3、% AgNO3 100ml +37%甲醛50ul,混匀,避光染色30~50m。 4、水洗 20秒x2次。

5、% NaOH 100ml,加37%甲醛,混匀,显色3~10m。 6、水洗若干次,终止显色。 电泳时间:150v x 3h,溴酚兰的位置相当于40bp。 银染后胶面积将膨胀10%。 在终止显色过程中,将依惯性继续显色,所以不等显色到位即可进行终止显色。 显色到位后立即拍摄,水浸泡过夜将使背景加深转贴!!! 聚丙烯酰胺凝胶电泳是分子生物学常用的一种技术。我们实验室应用该项技术进行基因组甲基化的筛选,取得了一定结果。因为全基因组的筛选需要很高的灵敏度,背景干扰降到最低,因此在对凝胶进行染色时,往往采用同位素法或银染法,而且配制的胶往往很大,我们配制的是大约40×35cm的胶,厚。同位素十分灵敏,特异,但是由于其操作的复杂性,许多实验室开展有一定困难。银染法相对简便易行,便于一般的实验室开展。 需要指出的是,应用与筛选基因组的银染往往采用测序胶的染色方法,这样才能保证灵敏性,我们在长期的工作中积累了一些银染的经验,与大家分享。 下面是网上的一个银染方法,我们使用后觉得效果不错,然后以此为基础,介绍一下我们的经验 测序凝胶的银染 染色过程要求凝胶浸在塑料盘中。因而至少使用两个盘子,大小与玻璃板类似。在盘中加入新鲜溶液之前须用高质量的水洗涤盘子。 1. 电泳完毕后用一个塑料片子小心地分开两板,凝胶应该牢固地附着在短玻璃板上。 2. 固定凝胶:将凝胶(连玻璃板)放入塑料盘,用固定/停止溶液浸没,充分振荡20分钟或直至样品中染料完全消失,胶可在固定/停止溶液中保存过夜(不振荡)。保留固定/停止溶液,用于终止显影反应。 3. 洗胶:用超纯水振荡洗胶3次,每次2分钟。从水中取出, 当转移至下一溶液时拿着胶板边沿静止10-20秒,使水流尽。 4. 凝胶染色:把凝胶移至染色溶液充分摇动30分钟。 5. 凝胶显影:

最全的聚丙烯酰胺分类与特点详解

最全的聚丙烯酰胺分类与特点详解 有代表性的高分子聚丙烯酰胺有:非离子型聚丙烯酰胺(简写NPAM,分子量800-1500万)、阴离子型聚丙烯酰胺(简写APAM,分子量800-2000万)、阳离子聚丙烯酰胺(简写CPAM,分子量800-1200万,离子度10%-80%)。用量一般为废水量的百万分之一至百万分之二。 阴离子聚丙烯酰胺(APAM)产品特性:阴离子聚丙烯酰胺(APAM)外观为白色粉粒,分子量从600万到2500万。水溶解性好,能以任意比例溶解于水且不溶于有机溶剂。有效的PH值范围为4到14,在中性碱性介质中呈高聚合物电解质的特性,与盐类电解质敏感,与高价金属离子能交联成不溶性凝胶体。 阳离子聚丙烯酰胺(CPAM)产品特性:阳离子聚丙烯酰胺(CPAM)外观为白色粉粒,离子度从20%到55%水溶解性好,能以任意比例溶解于水且不溶于有机溶剂。呈高聚合物电解质的特性,适用于带阴电荷及富含有机物的废水处理。适用于染色、造纸、食品、建筑、冶金、选矿、煤粉、油田、水产加工与发酵等行业有机胶体含量较高的废水处理,特别适用于城市污水、城市污泥、造纸污泥及其它工业污泥的脱水处理。

两性离子聚丙烯酰胺是由乙烯酰胺和乙烯基阳离子单体丙烯酰胺水解共聚而成。分子链上既有阳电荷,又有阴电荷的两性离子不规则聚合物。 非离子聚丙烯酰胺(简写NPAM) 产品特性:非离子聚丙烯酰胺系列产品是具有高分子量的低离子度的线性高聚物。由于其具有特殊的基团,便赋予它具有絮凝、分散、增稠、粘结、成膜、凝胶、稳定胶体的作用。污水处理剂:当悬浮性污水显酸性时,采用非离子聚丙烯酰胺作絮凝剂较为合适。这时PAM起吸附架桥作用,使悬浮的粒子产生絮凝沉淀,达到净化污水的目的。也可用于自来水的净化,尤其是和无机絮凝剂配合使用,在水处理中效果最佳。

非变性凝胶电泳技术

Native-PAGE原理 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)是在不加入SDS 疏基乙醇等变性剂的条件下,对保持活性的蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,常用于同工酶的鉴定和提纯。未加SDS的天然聚丙烯酰胺凝胶电泳可以使生物大分子在电泳过程中保持其天然的形状和电荷,它们的分离是依据其电泳迁移率的不同和凝胶的分子筛作用,因而可以得到较高的分辨率,尤其是在电泳分离后仍能保持蛋白质和酶等生物大分子的生物活性,对于生物大分子的鉴定有重要意义,其方法是在凝胶上进行两份相同样品的电泳,电泳后将凝胶切成两半,一半用于活性染色,对某个特定的生物大分子进行鉴定,另一半用于所有样品的染色,以分析样品中各种生物大分子的种类和含量。 实验方法 非变性聚丙烯酰胺凝胶和变性sds-page电泳在操作上基本上是相同的,只是非变性聚丙烯酰胺凝胶的配制和电泳缓冲液中不能含有变性剂如SDS等。 一般蛋白进行非变性凝胶电泳要先分清是碱性还是酸性蛋白。分离碱性蛋白时候,要利用低pH凝胶系统,分离酸性蛋白时候,要利用高pH凝胶系统。 酸性蛋白通常在非变性凝胶电泳中采用的pH是8.8的缓冲系统,蛋白会带负电荷,蛋白会相阳极移动;而碱性蛋白通常电泳是在微酸性环境下进行,蛋白带正电荷,这时候需要将阴极和阳极倒置才可以电泳分离酸性蛋白。 工作液配制 1.40%胶贮液(Acr:Bis=29:1); 2.4×分离胶Buf(1.5 M Tris-HCl,pH 8.8):18.2 g Trisbase 溶于ml 水,用浓HCl调pH 8.8,加水定容到100ml,4℃贮存; 3. 4×堆积胶Buf(0.5 M Tris-HCl,pH 6.8):6g Trisbase 溶于80ml 水,用浓HCl调pH 6.8,加水定容到100ml,4℃贮存; 4.10×电泳Buf(pH8.8 Tris-Gly):30.3 g Trisbase,144g 甘氨酸,加水定容到L,4℃贮存; 5.2×溴酚蓝上样Buf:1.25ml pH 6.8, 0.5M Tris-Cl,3.0ml甘油,.2ml 0.5% 溴酚蓝,5.5ml dH2O;-20℃贮存;

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤

DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳银染配方及步骤 最近需要做DNA非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳,需要用银染显示条带,但是找不到具体的配方和步骤,不知和蛋白PAGE电泳银染有什么差别,哪位师兄师姐有配方可否发一份,十分感谢!一、电泳试剂: 1、30%聚丙烯酰胺(29:1) 丙稀酰胺29克,Bis1克,水100ml。 2、10%过硫酸胺 过硫酸胺1克,水10ml。 3、TEMED 4、5xTBE Tris 27克,硼酸13.75克,0.5M EDTA(pH 8.0) 10ml,定容至500ml。 二、银染试剂 1、固定液:100ml无水乙醇,5ml冰醋酸,定容至1000ml。 2、0.2% AgNO3:AgNO3 1克,水500ml。 3、1.5% NaOH:NaOH 7.5克,水500ml。 4、37%甲醛。 三、配胶(6%): 30%聚丙烯酰胺(29:1) 8ml,5xTBE 8ml,定容至40ml,加10%过硫酸胺 200ul;T EMED 20ul。室温凝固时间>1小时。 四、银染: 1、固定液固定10m。 2、水洗2m x3次。 3、0.2% AgNO3 100ml +37%甲醛50ul,混匀,避光染色30~50m。 4、水洗 20秒x2次。 5、1.5% NaOH 100ml,加37%甲醛 0.5ml,混匀,显色3~10m。 6、水洗若干次,终止显色。 电泳时间:150v x 3h,溴酚兰的位置相当于40bp。 银染后胶面积将膨胀10%。 在终止显色过程中,将依惯性继续显色,所以不等显色到位即可进行终止显色。 显色到位后立即拍摄,水浸泡过夜将使背景加深转贴!!! 聚丙烯酰胺凝胶电泳是分子生物学常用的一种技术。我们实验室应用该项技术进行基因组甲基化的筛选,取得了一定结果。因为全基因组的筛选需要很高的灵敏度,背景干扰降到最低,因此在对凝胶进行染色时,往往采用同位素法或银染法,而且配制的胶往往很大,我们配制的是大约40×35cm的胶,0.4mm厚。同位素十分灵敏,特异,但是由于其操作的复杂性,许多实验室开展有一定困难。银染法相对简便易行,便于一般的实验室开展。 需要指出的是,应用与筛选基因组的银染往往采用测序胶的染色方法,这样才能保证灵敏性,我们在长期的工作中积累了一些银染的经验,与大家分享。 下面是网上的一个银染方法,我们使用后觉得效果不错,然后以此为基础,介绍一下我们的经验 测序凝胶的银染

非离子聚丙烯酰胺价格是多少

非离子聚丙烯酰胺一般都是袋装出售的,也可以按吨出售,当以袋出售时一般价位都在400-1000元/袋,如果按吨来计算的话大致价格区间也是在1000-20000元不等,不同品类价格差异也比较大。但大家可以根据需求来进行选择,具体的价格也可以咨询厂家获取! 首先我们先来了解一下什么是非离子聚丙烯酰胺,再来分析价格问题。 非离子聚丙烯酰胺是水溶性的高分子聚合物或聚电解质。由于其分子链中含有一定数量的极性基团,它能通过吸附水中悬浮的固体粒子,使粒子间架桥或通过电荷中和使粒子凝聚形成大的絮凝物。所以,它可加速悬浮液中粒子的沉降,有非常明显的加快溶液澄清,促进过滤等效果。主要用于各种工业废水的絮凝沉降,沉淀澄清处理。如造纸与纸浆废水废水处理,选矿与金属冶炼过程的废水处理,钢铁厂和石材加工厂的废水处理等。 一、反应原理 非离子聚丙烯酰胺分子链上的侧基为活泼性的酰胺基,它能发生多种化学反应可以获得多种衍生物,但由于临近基因效应,反应往往不能完全进行。

由于非离子聚丙烯酰胺(NPAM)是高分子聚合物或聚电解物,其分子链中含有一定量极性基因能吸附水中悬浮的固体粒子,使粒子间架桥形成大的絮凝物。它加速悬浮液中的粒子的沉降,有非常明显的加快溶液的澄清,促进过滤等效果。 二、功能 1、澄清净化作用; 2、沉降促进作用; 3、过滤促进作用; 4、增稠作用及其它作用。 在废液处理、污泥浓缩脱水、选矿、洗煤、造纸等方面,能够充分满足各种领域的要求。 三、用途 1、对有机胶体状悬浮物有特效,能迅速促进污泥脱水过滤。可根据污呢性质选用相应型号,脱水时不粘滤布,压滤时不松散,效率高。 2、用于有机污水的处理,如电镀、印染、油脂厂的废水、酒精、味精、制糖、肉类制品厂的废水,以及城市下水等。 3、用于造纸增强,提高纸张的干湿强度,如在造纸过程中加入PAM-CSG-1产品,可使纸张的湿纸拉力提高10-20倍,干纸拉力提高50%,主要用于牛皮纸、地图纸、广告纸、相纸。

变性聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染实验

变性聚丙烯酰胺凝胶电泳及银染实验 一变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 配制溶液: 1、30% Acrylamide(14.5 g 丙烯酰胺,0.5g 双丙烯酰胺,加水溶解,定容至50 ml,4℃,棕色瓶中储存) 2、10% 过硫酸铵(0.5g APS,溶于5ml 去离子水中,4℃可储存数个月) 3、10 ×TBE 缓冲液(10.8g Tris,0.744g EDTA,5.5g 硼酸,定容到100ml) 4、TEMED 5、20-200 DNA marker 6、尿素 实验步骤: 1、配置10%的胶10ml:8M*10ml*60g/mol=4.8g 尿素 6.1ml water 3.3ml 30% Acrylamide 1ml 10 ×TBE 0.11ml APS 0.01mlTEMED 2、立即将胶倒入两块板间并插好梳子,放置,待凝固30min,时间可以适当延长。 3、向电泳槽加入1×TBE,拔出梳子并用注射针筒多次洗涤点样孔,尽可能排除未聚合 的丙烯酰胺。 4、将DNA marker 加到点样孔中,以120V(10V/cm)进行电泳直到燃料走到靠近底部 的三分之一处,大约需要60-90分钟。 二银染实验 银染溶液的配置:实验之前准备4℃水 1、固定液(10%醋酸):20ml冰醋酸,180mlddH2O混匀(通风厨中进行) 2、染色液:将0.1g AgNO3溶解于100 ml ddH2O中,使用前加1.5ml37%甲醛溶液,必须 储存于避光瓶中,防止接触皮肤(通风厨中进行) 3、显影液:将30gNa2CO3溶解于ddH2O中,冷却至4℃,使用前加1.5ml37%甲醛溶液 (通风厨中进行),0.1M五水硫代硫酸钠150μl;(0.1M Na2S2O3。5H2O:将2.48g Na2S2O3。5H2O溶于100mlddH2O)。 注意事项: 1、染色液和显影液要现用现配; 2、显影液必须在4℃使用且必须保存在4℃; 3、甲醛蒸汽致癌,在通风厨内操作; 4、实验室中柔和的背景光线有利于降低背景颜色; 5、显色不能在透光的盒子中进行; 6、溶液不能直接倒在胶面上,应使盘倾斜后将溶液倒在盘的角上,或者将每种溶液各方 一盘,然后将胶从一个盘转到另一个盘; 7、溶液的体积必须足够将胶全部浸没;

聚丙烯酰胺类絮凝剂根据其电荷性质可将其分为非离子型聚丙烯酰胺

阳离子聚丙烯酰胺絮凝剂 表1-1 无机高分子絮凝剂的种类与名称 Table 1-1 the kinds and names of inorganic molecular flocclants 类型名称 阴离子型聚合氯化铝PAC 聚合硫酸铝PAS 聚合氯化铁PFC 聚合硫酸铁PFS 聚合磷酸铝PAP 聚合磷酸铁PFP2 阳离子型活化硅酸AS 聚合硅酸PS 无机复合型聚合氯化铝铁PAFC 聚合硫酸铝铁PAFS 聚合硅酸铝PAST 聚合硅酸铁PFST 聚合硅酸铝铁PAFST 聚合磷酸铝铁PAFP 无机有机复合型聚合铝-聚丙烯酰胺聚合铁-聚丙烯酰胺 聚合铝-甲壳素聚合铁-甲壳素 聚合铝-阳离子有机高分子聚合铁-阳离子有机高分子 聚丙烯酰胺类絮凝剂根据其电荷性质可将其分为非离子型聚丙烯酰胺(NPAM)、阴离子型聚丙烯酰胺(APAM)、阳离子型聚丙烯酰胺(CPAM)和两性聚丙烯酰胺(AmPAM)。 在水处理中,悬浮颗粒往往具有不同的电荷和粒径。根据电性吸附原理,颗粒表面带负电,则应采用阳离子或非离子型絮凝剂。如果颗粒表面带正电,则应采用阴离子型絮凝剂。一般阳离子型絮凝剂适用于处理有机固体,阴离子型絮凝剂适用于处理氧化物和含氧酸盐。对于长时间放置能沉降的悬浮液,使用阴离子型或非离子型的高分子絮凝剂可以促进其絮凝速度。对于不能自然沉降的胶体溶液,浊度较高的废水,单独使用阳离子型的高分子絮凝剂,就可取得较佳的絮凝效果。 阳离子型高分子絮凝剂对胶粒同时起到电中和、降低ξ电位和吸附架桥的作用;阴离子型、非离子型高分子絮凝剂以吸附架桥作用为主;两性离子型高分子絮凝剂中的阳离子基团可以捕捉带负电荷的悬浮物,阴离子基团可以促进无机悬浮物的沉降,具体过程有待于进一步研究。 影响聚合物分子量的主要条件有:聚合方法、引发体系的类型、单体浓度、引发剂浓度、助剂(链转移剂、助溶剂、络合剂等)加量、引发温度等。 水处理用阳离子聚丙烯酞胺絮凝剂的合成及其絮凝性能研究卢红霞 常用的阳离子单体主要可分为季(叔)胺型、季(叔)膦型和叔硫型三类。 目前,国内常用的阳离子单体主要是季胺型,有二甲基二烯丙基氯化铵(DMDAAC)、 甲基丙烯酰氧乙基三甲基氯化铵(DMC)、 丙烯酰氧乙基三甲基氯化铵(DAC) 二烯丙基二乙基氯化铵(DEDAAC)等。 DMDAAC的共聚物及均聚物具有正电荷密度高、水溶性好、分子量易控制。高效无毒和造价低廉等特点,因此被广泛应用于日用化工、造纸、石油处理和污水处理等领域。 各种助剂 增链剂含叔胺基的功能性单体如甲基丙烯酸N,N一二甲氨基乙酯(DM)

变性与非变性聚丙烯酰胺的区别

非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体 现在哪里? 作者: 墨池(站内联系TA)收录: 2011-07-31 发布: 2011-07-21 1 非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体现在哪里? 2 SRAP标记用6%聚丙烯酰胺凝胶电泳,是变性还是非变性?配方是什么?配胶时,过硫酸铵是不是要最后加入? 谢谢(*^__^*) 嘻嘻 收、蛋白质分子量测定会使用变性PAGE,而DNA跑PAGE通常是采用非变性PAGE,另外回收活性蛋白也有用非变性PAGE的。 2. SRAP(貌似叫什么...相关序列扩增多态性)标记这个应该是非变性PAGE,6%的PAGE胶配方就不用发了吧,google一下一大堆。TEMED和过硫酸铵都是最 Originally posted by holyala at 2011-07-21 2121: 1. 变性胶加尿素或者其他变性剂,非变性胶是不加的。一般做RNA分离或回收、蛋白质分子量测定会使用变性PAGE,而DNA跑PAGE通常是采用非变性PAGE,另外回收活性蛋白也有用非变性PAGE的。 2. SRAP(貌似叫什么...相 ... Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2138: TEMED和过硫酸铵的先后呢? Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2019: 1 非变性和变性聚丙烯酰胺凝胶的区别?“变性”体现在哪里?

2 SRAP标记用6%聚丙烯酰胺凝胶电泳,是变性还是非变性?配方是什么?配胶时,过硫酸铵是不是要最后加入? 谢谢(*^__^*) 嘻嘻 1. “变性”体现在聚丙烯酰胺凝胶中加入尿素(一般跑DNA)或SDS(一般跑蛋白),另外,如果样品也要变性(DNA的loanding buffer也与普通的琼脂糖电泳所用的不同,同理所用Marker也不同;蛋白也要变性)。 2.SRAP一般用变性的聚丙烯酰胺,毕竟片段还是比较小。 3.配胶时不用加入过硫酸铵,灌胶前同时加入过硫酸铵(注意有毒!低温保存)和TEMED(也有毒,特臭)。 另外,这些问题貌似分子克隆那本书非常详细,只不过SRAP标记较新而已,没 Originally posted by changes at 2011-07-21 2107: 1. “变性”体现在聚丙烯酰胺凝胶中加入尿素(一般跑DNA)或SDS(一般跑蛋白),另外,如果样品也要变性(DNA的loanding buffer也与普通的琼脂糖电泳所用的不同,同理所用Marker也不同;蛋白也要变性)。 2.SRAP一般 ... Originally posted by 墨池 at 2011-07-21 2104: 你说SRAP是变性的,我看师姐的配胶过程没有一点体现变性的物质。 非变性胶也可以,但是分辨率会低些。另外,你是用SRAP标记做什么的,多态 Originally posted by 冼亮淀粉酶 at 2011-07-22 0727: APS和TEMED虽然不好,但也比不上丙烯酰胺有神经毒性,可随皮肤渗入人体,所以我是什么东西都加完之后最后加丙烯酰胺。 ...额~~话说我们一般都是把丙烯酰胺和甲叉丙烯酰胺配成40%的母液,用的时候根据所需要的浓度加一定量的母液即可。要是每次都搞丙烯酰胺来配,那谁

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