标本采集注意事项
血液标本采集及检测结果的影响因素及注意事项患者准备是规范采集标本前患者的一切行为。有很多检测项目，如果病人准备不当，检测结果则无价值，甚至造成误诊、误治。目前认为运动、过度空腹、饮食、饮酒、吸烟及姿势体位等可影响某些检测的结果，现对易对血液检测项目造成误差的常见影响因素进行如下说明：
1.患者情绪的影响：患者处于激动、兴奋、紧张、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。有时会造成标本采集的失败。
建议：平静、休息状态下采血。
2.饮食的影响：不同食物对检验结果的影响不同
（1）普通进餐后，甘油三脂将升高50%，血糖升高15%，丙氨酸氨基转移酶及血钾增加15%；（2）高脂饮食可使甘油三脂大幅度升高，甚至出现脂血，对许多实验造成干扰；
（3）高糖饮食则血糖明显升高，
（4）高蛋白饮食可使血液尿素、尿酸及血氨明显增高；
（5）高核酸食物饮食（如动物内脏）可使血液尿酸明显升高；
（6）喝饮料、咖啡等可使淀粉酶、天门冬氨酸氨基转移酶、酸性磷酸酶等升高。
也不要拖延空腹时间 (不超过16小时)，否则会使血糖、血清白蛋白、胆固醇、甘油三脂、补体、铁蛋白、T3、T4等含量下降。相反，血肌酐、尿酸上升。
建议：一般在禁食12 h后清晨空腹采血。
3. 运动的影响：运动时由于能量消耗、体液丢失、呼吸剧烈，可使丙氨酸氨基转移酶、磷酸肌酸肌酶一时性升高，血清钾、钙、镁、白蛋白、血糖、红细胞、白细胞均有不同程度的升高，丙氨酸氨基转移酶在停止运动1h后测定，其值仍可偏高30%～50%。
建议：患者至少在检测前一晚避免剧烈运动并在采血前避免长距离行走、跑步和爬楼。
4. 饮酒：长期饮酒者平均红细胞体积、丙氨酸氨基转移酶、天门
冬氨酸氨基转移酶、γ谷氨酰转移酶增高；慢性酒精中毒者，血液胆红素、丙氨酸氨基转移酶、甘油三脂等增高。
5.吸烟的影响：吸烟者白细胞比非吸烟者高30%，长期吸烟者中性粒细胞及单核细胞、血红蛋白、癌胚抗原增高，平均红细胞体积偏高，嗜酸性粒细胞减少，儿茶酚胺、血清可的松增高。
6.药物与毒物的影响
药物对检验结果的影响非常复杂，如甲状腺类制剂可使血糖升高，胆固醇降低；维生素C使血糖降低并造成尿糖假阴性；先锋霉素类药物可影响肌酐的测定等。
建议：1.采样前应暂停各种药物（服用药物监测除外），如不能停用的药物应予以说明。
2.采样应尽量避开血药浓度高峰期。
体位的影响：体位影响血液体液循环，如由卧位改为站位，血红蛋白、血细胞比容、红细胞计数、血浆白蛋白、总蛋白、酶、胆红素、胆固醇及甘油三酯等均可增高。
建议：患者多次采血应采取同一体位。
7. 生物钟的影响：应考虑病人的生物钟规律，胆红素、血清铁以清晨最高；血浆蛋白在夜间降低；血Ca2+往往在中午出现最低值，甲状腺激素8-12时最高，23-3时最低，可相差10-20% 。
建议：相同时间采血。
8.月经和妊娠的影响：与生殖有关的激素在月经周期会产生不同的变化；月经前和妊娠末期纤维蛋白原增高，血浆蛋白质则在排卵时减低；胆固醇在月经前最高，排卵期最低，血沉在月经期增高。
建议：避开月经期采血。
9.采血部位的影响
同一标本若部位不同，其物质含量是不同的。末梢血与静脉血的血细胞成分有显著差异，差别最大可达2～3倍。同时末梢采血有采集血量少，不易复查，受干扰因素较多等缺点。建议：静脉采血。
标本采集及注意事项：
一、全血细胞标本
1.标本采集
A、全血细胞检查标本的采集
患者应处于平静状态，减少运动，避免在输脂肪乳过程中或其后采血，禁止在输液手臂同侧采集血液，冬天从室外进入室内，应等患者身体暖和后再采血，采血时一般取坐位或卧位。
B、末梢血的采集
a) 由检验技术人员询问完患者姓名后，选择采血部位，成人选择左手中指或无名指端内侧，1岁以下婴儿选择大拇指或足跟部内外侧缘部采血。
b) 轻轻按摩采血部位，使其自然充血，用医用碘酒棉签消毒局部皮肤，再用干棉签将其擦干。
c) 操作者用左手拇指和示指捏紧采血部位两侧，右手持一次性无菌采血针自指尖腹侧迅速刺入2-3mm，立即出针，让血液血然流出，若不易流血，于伤口远端稍加压力，或重新穿刺。
d) 用一次性消毒棉签擦去第1滴血后，用微量毛细管收集标本于EDTA抗凝EP管中，采血完毕，用消毒棉签压住伤口几分钟至止血为止。
C、静脉血的采集
由采血室或病房护士进行采集。询问患者姓名后根据医生医嘱进行。用真空采血针抽取肘静脉，或手背、手腕和外踝静脉，幼儿可取颈外静脉处，将2ml静脉血注入含有抗凝药（含EDTA·K23.0-4.0mg）的抗凝试管中，立即轻轻将试管颠倒混匀5-8次，以使其充分抗凝。标本采集完后，在试管上做好标识，2h内送检。该管血液标本除用于全血细胞分析检查外，还可用于ABO、RH血型测定、网织红细胞计数、细胞形态学和疟原虫涂片检查。
2.注意事项
a) 一般要求用抗凝的静脉血，尽可能不用皮肤穿刺采集末梢毛细胞血管血进行全血细胞分析检测。因为末梢血采集时，易受组织液的稀释，细胞成分和细胞与血浆的比例与静脉血有差别。末梢毛细血管采血量较少，特别对一些全自动分析的仪器，不易采到足够量，更不
能在有疑问时重复检查。因此，除了少数不易取得静脉血，如婴儿、大面积烧伤，某些需要经常采血检查的病例，如血液病、肿瘤化疗或放疗的病人等，均应采静脉血进行检测。
b) 采静脉血时止血带压迫不能时间过长或过紧，应<1min，避免造成血液成分浓度发生改变。
c) 末梢采血时，挤压力不能过大，以免混入过多组织液；同时要避开冻疮，发炎，水肿等部位，以避免影响结果。所以，为了保证结果的准确性，尽可能使用静脉采血方法，而不用毛细血管采血方法。
d) 当标本同时用于血涂片分析时，应在采集后4h内制备血涂片，以免引起中性粒细胞和单核细胞形态的改变，同时标本不能冷藏。
e) 静脉采血如不注意，常易使血样溶血，影响检验，常见溶血的技术因素有注射器或试管潮湿，或有表面活性剂污染，或抽血后未卸下针头，强力将血液排入试管，或抽血时负压过大，或止血带结扎过久又不能一针见血等。严重溶血标本原则上不能使用，应通知临床重新采血，或在报告单上注明“溶血”字样，提醒临床医生注意。
二、溶血检查
1.病人要求：患者应处于平静状态，避免在输入脂肪乳过程中或其后采血。
2.标本采集
a) 抗凝药选择以肝素锂为主，亦可选择EDTA、枸橼酸钠抗凝。
b) 采血要顺利，防止溶血，抽取血液标本置于抗凝试管中立即轻轻颠倒摇匀，充分抗凝。
c) 酸溶血标本要同时用EDTA和干燥试管采血。
3.注意事项采样及分离血浆过程不能发生溶血。
三、血栓与止血检验
1. 病人要求
病人采血的环境温暖，病人放松，避免剧烈运动，可能的话，对于多次反复采血的病人最好在同一条件下采血。
2. 标本采集
a) 收集静脉血，采血前不应拍打前臂。
b) 采血时止血带不宜扎得过紧，时间不应超过1min。
c) 抗凝药首选枸橼酸钠，抗凝药的浓度为0.109mol/L，其与血液的比例为1:9。
d) 用清洁塑料管或硅化玻离试管采集血液标本，避免表面激活。
e) 通常采集第2管血液标本用于凝血方面的检测，第1管血液用于其他的化学检测。
f) 在血细胞比容（Hct）<20%或>55%时，须按Macgann推荐的公式来调整抗凝药与血液的比例，公式如下：抗凝药用量（ml）=0.00185×血量（ml）×[1-Hct（%）]。
3. 注意事项
a) 采血技术要熟练，最好“一针见血”，防止组织损伤而激活凝血系统，影响实验结果，例如凝血因子活性增高。
b) 抽血后迅速将血液和抗凝药轻轻颠倒混匀，不能用力振荡使凝血蛋白受到破坏。
c) 不能从输液三通管取血，防止样品中可能含有的小凝块及污染的组织对实验结果造成影响。
d) 注射器选用国际上推荐的21G1.5或20G1.5号针头。
e) 采血时，血液要平稳地进入试管，防止产生气泡，避免纤维蛋白原、因子Ⅴ和因子Ⅶ变性。
f) 拒绝溶血的标本。
g) 不能使用过期变质的枸橼酸盐抗凝药抗凝，否则会使PT、APTT试验的结果缩短。
h) 采血量要严格按照1：9比值采血约为2ml。
i) 避免于输液同侧采血，以避免影响抗凝剂与血液比例。
四、疟原虫、红斑狼疮细胞
1. 疟原虫
EDTA·K2抗凝静脉血或末梢血。间日疟、三日疟在发作后数小时至10余小时采血，此时早期滋养体已发育成易于鉴别形态的晚期。恶性疟在发作后20h采样。
2. 红斑狼疮细胞
抽取患者血液2-4ml，注于干燥洁净试管中，置室温中待凝（抽血后立即送检）。
五、阴道及宫颈分泌物标本采集
阴道及宫颈分泌物为女性生殖系统分泌的液体。标本采集前24h，禁止性交、盆浴、阴道检查、阴道灌洗及局部上药。由妇产科或患者就诊科室的医务人员采集。采用消毒棉拭子自阴道深部或阴道穹窿后部、宫颈管口等处取材，取材后的棉拭子置于试管内，避免污染立即送检。
1、标本采集方法
由妇科医生直接取阴道分泌物于干净载玻片及生理盐水小瓶中送检。
2、注意事项
（1）取材要准确，并立即送检；
（2）阴道清洁度检查时，标本必须新鲜，防止污染；
（3）检查阴道毛滴虫时应注意保温。
六、精液标本的采集
1、病人准备
精液标本一般由患者留取。采集精液标本前必须禁欲。一般情况下，25 岁以下禁欲3天，25～35岁禁欲5天，35～45岁禁欲7天（禁欲亦包括无遗精和手淫）。医生应向患者讲清楚收集精液标本前禁止服用化学药物如呋喃类、烷基化物、激素、安体舒通、5-羟色胺、单胺氧化酶抑制剂、环磷酰胺、四氨蝶呤以及大量阿司匹林等。
2、标本采集方法
采集精液的最好方法是让患者本人手淫采集，如有困难可用取精器（电按摩法）采集。禁止用性交中断法采集精液，因为这种方法会失掉射精前的一部分，而开始射精的精子浓度最高，终末部分精子浓度最低。
3、注意事项
（1）将一次射出的全部精液直接排入清洁、干燥容器内，不能用乳胶避孕套采集，因避孕套内含有滑石粉可影响精子活力。
（2）精液标本留取后应立即送检（如送检时间过长，超过1小时或容器有溢漏，均不能作精液检查）。
（3）精液标本采集后在运送过程中，其温度应保持在25～35℃，在冬天运送标本时最好放在内衣口袋内，并防止瓶子倒置。
（4）出现一次异常结果，每隔1周后复查，反复查2-3次方能得出比较正确的结果。
七、前列腺液常规标本采集与要求
1、病人准备
无须特殊准备
2、标本采集方法
由男科医生按摩取前列腺液于干净载玻片送检。
3、注意事项
（1）标本采集后立即送检，以免干涸。
（2）采集标本时应弃取流出的第一滴前列腺液。
（3）前列腺急性感染时，原则上禁止按摩前列腺。只有全身应用足够抗生素时，才可以进行前列腺按摩。
(4)检查前三天内禁止性生活，因性兴奋前后前列腺内的细胞增加。
八、脑脊液标本的采集
由临床医生进行腰穿术留取标本，标本收集后应立即送检，一般不超过1h。第3管做显微镜检查。避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用EDTA抗凝。
九、红细胞沉降率标本
1、标本采集方法
专用109mmol／L(32g/L)枸橼酸钠溶液真空试管1支，静脉采血，颠倒混匀。
2、注意事项
（1）血样不能有凝块。
（2）全血样本应在采血后2小时内测完。
（3）样本分析应在室温（15℃～32℃）下进行。
十、尿液标本采集与要求
1、收集尿液的容器和尿量
收集尿液标本的容器多种多样，留取标本最基本的要求是使用清洁、干燥、方便的容器。无论采用何种容器，都必须满足下列要求：
a)门诊病人凭检验申请单在检验科领取一次性尿杯。根据检验单要求留取尿样，交由检验科小便检验工作人员。
b)病房送检的尿标本容器上应使用标签，并注明病人的姓名、科别、床号、检测项目等，尽可能注明收集标本的时间。
c)容器要清洁，不含有干扰试验的物质。
d)所用容器开口要大，底部要宽，以防止尿液溅出。
e)容器应方便运输，便于保存。
f)对于儿科患者，特别是新生儿，可使用小型、特殊的容器。
g)对于尿量，尿液分析和妊娠试验不少于10ml。
2、收集尿液标本的方法
（1）自然排尿法
适用于尿液分析检查、细菌检查和细胞学检查。取尿标本时，注意防止尿道口分泌物的污染，特别是女病人易受阴道分泌物污染。临床最常用的方法是采用中段尿法，即尿流开始的小部分弃之，收集中段尿于尿杯中。细菌检查，必须用无菌盐水彻底清洗外生殖器，然后收集中段尿于无菌容器中。
（2）膀胱导管或穿刺法
对于自然排尿困难的病人或为了避免女病人阴道分泌物的污染，可采用膀胱导管。但此法有可能把细菌带入膀胱而引起感染，故不宜经常使用。为了获得单次尿标本，在耻骨弓上穿刺膀胱取尿有时被用来代替导管取尿。
3、尿液标本的种类
（1）首次晨尿标本
收集早晨起床后的第一次尿液标本，此尿液最适合于尿液常规检查和hCG定性定量试验，特别是细菌及亚硝酸盐、尿蛋白和细胞、管型等有形成分的显微镜检查。
（2）随机尿标本
随机留取任何一个时间的尿液标本，不受条件的限制。此类标本容易获得，是尿液分析等检查最常用的方法，但受饮水、饮食和收集时间等多种因素影响，病理成分容易漏诊。仅适用于门诊、急诊病人的过筛检验。
（3）空腹尿标本
即进餐前的尿液标本。此标本对于糖尿病患者尿糖测定有较大意义。
（4）餐后尿标本
即通常在餐后两小时收集的尿液。其对于病理性蛋白尿、糖尿检查更为敏感。午餐后尿对尿胆原检查特别有益。
（5）3小时尿标本
即收集上午3小时的尿液标本。具体的做法：嘱病人于留尿前一天少饮水，使得尿液浓缩呈偏酸性，不含晶形或非晶形盐类。早晨8点排空膀胱的尿液，然后卧床3小时，至11点收集所有尿液标本。此标本适用于病人每小时或每分钟细胞排泄率。
（6）12小时尿标本
即患者正常进食，晚上8点排空膀胱的尿液，于容器中加入约lOml甲醛作为防腐剂，再收集以后12小时内所有尿液标本。曾常用于细胞、管型等有形成分的计数，如尿Addis 计数等，因患者标本采集繁琐和有形成分长时间保存困难，现已少用，建议使用3小时尿标本。
（7）24小时尿标本
病人于早晨8点排空膀胱的尿液，再收集以后24小时内所有尿液标本。此标本用于体内代谢产物的定量检测，如尿蛋白、微量白蛋白排泄率、糖、肌酐定量、儿茶酚胺等检查。
4、尿液标本的保存
尿液化学物质和有形成分不稳定，排出后即开始发生物理和化学变化，如胆红素、尿胆原见光易分解；抗坏血酸消失。细菌生长导致尿液成分的改变：尿素经细菌酵解生成氨，尿pH升高，使尿液有形成分破坏；葡萄糖被细菌降解，使病理性尿糖消失。因此，应提倡常规
检查在排尿后尽快送检。室温保存的尿液标本须2小时内测定完毕，检测后的标本不保存。标本如不能及时分析，必须采取保存措施，冷藏法或化学防腐法。
（1）冷藏法
冷藏可抑制微生物生长，维持尿液pH恒定，使尿中有形成分的形态基本不变。但4℃条件下，冷藏不得超过8小时，有时冷藏时非晶形磷酸盐和尿酸盐可析出形成沉淀影响尿沉渣检查，故检验前应恢复至室温。
（2）化学防腐法
常用的化学防腐剂有：(1)甲苯：于尿液表面加甲苯数滴，使成一薄层隔绝空气，防止细菌生长繁殖，通常用于一般化学成分检查；(2)甲醛：每lOOml尿液加40％甲醛0.5ml，可抑制细菌生长并固定尿中有形成分，适用于尿液有形成分的检查，但不能适用于具有还原性醛基的化学成分(如糖、17一羟皮质类固醇)检查；(3)盐酸：每1 000ml 尿标本中加入浓盐酸lml即可，使尿液维持在pH2，此标本主要可用于17一羟皮质类固醇、17-酮类固醇、儿茶酚胺、丙酮定量等。
5、尿液标本收集的注意事项
临床医护人员和实验室工作人员应指导病人正确留取尿标本的方法。根据不同实验要求，留取不同种类的尿液标本、不同的取样方式和尿量。尿液分析、尿生化、hCG定性试验、尿液细胞计数、尿含铁血黄素标本，一般留取约20m1，注意防腐剂使用的种类、使用的方法，并嘱咐病人注意防腐剂对自己的伤害。
十一、粪便标本采集与要求
1、病人准备
检查隐血之前，病人应禁食肉类及含动物血类食品，并停服铁剂及维生素C三天，以免干扰化学法隐血试验。
2、标本采集方法
（1）门诊病人
门诊病人凭检验申请单在检验科领取粪便采集器。尽量选择有粘液脓血或肉眼见有异常的粪便部位，挑取约59(约拇指头大小)于粪便
采集器中后，交由检验科粪便检验工作人员。
（2）住院病人
住院病人由各病房的护士发放粪便采集器及检验申请单。尽量选择有粘液脓血或肉眼见有异常的粪便部位，挑取约59(约拇指头大／b)于粪便采集器中。
3、注意事项
（1）粪便采集应采用容量合适的清洁不漏水有盖的容器；
（2）标本不得混有小便、消毒剂、自来水等物质；
（3）采样必须从粪便表面及深处多个部位挑取，并首选有粘液、脓血等病理成分；
（4）采集标本后以及时送检为原则。若检查阿米巴滋养体，则需立即送检，寒冷季节需要保温送检。
十二、脑脊液常规标本采集与要求
1、病人准备
应先检查患者有无颅内压增高症状和体征，并做眼底检查。
2、标本采集方法
（1）脑脊液标本由临床医师进行腰椎穿刺采集，必要时可从小脑延脑池或侧脑室穿刺获得。（2）穿刺后应由医师做压力测定，正常脑脊液压力卧位为0.78～1.76kPa;儿童为0.4～1.0kPa。
（3）待压力测定后将脑脊液非别收集于3 个无菌小瓶（或试管）中，每瓶1～2ml 即可，第一瓶做细菌学检查，第二瓶做生化或免疫学检查，第三瓶做细胞计数。
（4）脑脊液标本采集后，患者取枕平躺24h，严密观察病情，经常注意生命体征和瞳孔的变化。
3、注意事项
（1）严格掌握禁忌症，凡疑有颅内压升高者必须先作眼底检查，如有明显视神经乳头水肿或有脑疝先兆者，禁忌穿刺。凡患者处于休克、衰竭或濒危状态以及局部皮肤有炎症，颅后窝有占位性病变者均列为禁忌。
（2）穿刺时患者如出现呼吸、脉搏、面色异常时，应立即停止操
作，并作出相应处理。（3）标本采集前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。
（4）收集标本后，必须立即送检。久置可致细胞破坏，葡萄糖分解，病原菌破坏或溶解。细胞计数标本应注意防止凝集。
十三、浆膜腔积液常规标本采集与要求
1、病人准备
浆膜腔积液标本采集前，应避免跑步、骑自行车等剧烈运动，要求患者卧床休息15 分钟后进行采集。
2、标本采集方法
（1）浆膜腔积液采集一般分别行胸腔穿刺术、腹腔及心包腔穿刺术采集标本。标本由医护
人员采集。
（2）为防止标本细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时。
（3）为防止凝固，应在存放标本的容器中加抗凝剂。可用肝素10U 或用100g/L 浓度的EDTA 溶液，其与标本量之比为1：10。理学检查和细胞学检查宜采用EDTA抗凝，化学检查宜采用肝素抗凝。
3、注意事项
样本要及时送检及检验。
十四、滑膜液常规标本采集与要求
1、病人准备
滑膜液标本采集前，患者宜空腹4～6小时。
2、标本采集方法
（1）滑膜液采集在无菌条件下行关节穿刺术采集标本。标本由医护人员采集。
（2）为防止标本细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时。
（3）为防止凝固，应在存放标本的容器中加肝素抗凝剂。显微镜检查不宜采用肝素理、草酸盐或EDTA 干粉抗凝，以免人为形成晶体，干扰显微镜检查。
十五、胃液常规标本采集与要求
1、病人准备
（1）试验前l天停用影响胃酸分泌的药物，如抗胆碱脂类及碱性药物等。
（2）试验前晚8:00后禁食、禁饮、禁烟。有胃排空迟缓者，则在试验前1 -2天进流质饮食。
2、标本采集方法
（1）由受试者空腹坐姿，插管抽取胃液。弃残余胃液，连续抽取1 h 胃液作为空腹胃液标本。标本由医护人员采集。
（2）为防止标本细胞变性、出现凝块或细菌破坏溶解等，送检及检查必须及时。
3、注意事项
样本要及时送检及检验。
十六、微量元素标本采集与要求
1、病人准备
（1）采血部位尽量不与其他物品接触，在采血过程中不使用未经微量元素含量测定的用品。（2）患者在采血前应用肥皂仔细清洗双手，用水冲洗后，再用纸巾将手擦干，如果是婴幼儿，护理婴幼儿的成人也应同时洗手。
2、标本采集方法
采用的是用肝素锂抗凝的全血样本。
3、注意事项
（1）采血环境清洁、无灰尘并保持一定的湿度。标本采集台面应该保持清洁。
（2）样本加入量要准确，加入稀释液后要迅速混匀，防止凝结。
（3）橡胶手套含有金属元素较多，医务人员采血时应防止接触采样部位和样品。
（4）使用前如发现稀释液体积明显减少，或有浑浊、沉淀、絮状物时，停止使用。
（5）样本应尽快检测，暂不能检测时，可置于冰箱（2～6℃）保
十七、生化标本采集与要求
1.尿标本采集
（1）24小时尿液采集，准备清洁干燥的有盖广口容器，病人于晨8时将尿液排尽弃去，然后开始留尿，留尿后加甲苯防腐剂（0.5ml 甲苯/100ml尿比例）混匀后盖好盖子，至次日8时，24小时内每次尿均留于容器中，测量24小时尿液总量（ml），记录在申请单上。将尿液混匀后取10ml送检。
（2）尿微量白蛋白最好取晨尿样本。准备清洁干燥的广口容器采样。
2.标本采集注意事项：
（1）要求在采血前禁食12小时-16小时。
（2）输液的影响：由于边输液边采血影响血液成份的测定！规定输液时应在输液的另一侧手臂取血。
（3）采集血液标本时动作宜迅速扎脉带使用时间要有控制，不能过长。
（4）防止溶血。溶血标本可影响检测结果，使血钾、乳酸脱氢酶、门冬氨酸氨基转酶等结果增高。
（5）标本采集应立即送检的生化检测项目：血氨、血气分析；
0.5小时内送检的生化项目：血糖、电解质；1-2小时内送检的生化项目：各种蛋白质、酶类、脂类。
（6）由于血气分析是测定血液中气体，因此在采血过程中必须防止外界空气进入。抽血时必须做到：①抽血针筒不漏气；②抽气时应让血液血动进入注射器，切勿用力拉针蕊，以免空气沿针筒壁进入；
③针头拔出时应立刻将针头刺入橡皮塞内，隔绝空气。取样后要认真混匀，将注射器放在手心中慢慢搓动20 次以上，注意不要加温标本，让标本与抗凝剂充分混合，动作要慢不能太剧烈，避免溶血；立即送检，送检同时将体温，血红蛋白值，吸氧浓度等信息填入送检申请单。
（7）脑脊液、胸腹水、关节液等穿刺液应取第2管作生化检查。
（8）尿液标本：取样容器须清洁干燥，留取24尿应加入防腐剂
十八、乙肝病毒核酸(HBV-DNA)扩增检测
（1）标本类型：血清、乳汁；2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。离心后备用。乳汁标本用无菌杯采集，其他要求同血清标本。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过72小时，-20℃保存期6个月，
应避免反复冻融。室温运输。
（4）标本拒收状态：细菌污染、严重溶血或脂血标本不能作测定。
十九、丙肝病毒核酸(HCV-RNA)扩增检测
（1）标本类型：血清，2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。离心后备用。周六、周日及节假日不抽血。
（3）标本储存和运输：标本运送应采用0℃冰壶。室温放置不超过2小时，4-8℃不超过72小时，-20℃保存期6个月，应避免反复冻融，室温运输。
（4）标本拒收状态：细菌污染、严重溶血或脂血标本不能作测定。
二十、性病三项（CT-DNA、UU-DNA、NG-DNA）扩增检测
（1）标本类型：分泌物。
（2）标本采集：
男性：取生殖道尿道分泌物或细小棉拭子伸入快尿道约2~4cm，捻拭子取出分泌物，将分泌物或棉拭子置入无菌玻璃管，密闭送检（采集分泌物前2小时紧小便）。
女性：生殖道—用无菌生理盐水棉球洗去宫颈外分泌物，再用无菌棉拭子插入宫颈内，停5秒钟后旋动棉拭采取宫颈分泌物，将棉拭子置入无菌玻璃管，密闭送检。
尿道—用无菌生理盐水棉球洗净尿道口，再用无菌棉拭子插入尿道约2厘米，旋动棉拭采取分泌物，将棉拭子置入无菌玻璃管，密闭送检。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过72小时，-20℃保存期6个月，应避免反复冻融。室温运输。
（4）本拒收状态：细菌污染标本不能作测定。
二十一、人乳头瘤病毒（HPV）基因分型检测
（1）标本类型：宫颈脱落细胞。
（2）标本采集：用无菌生理盐水棉球洗去宫颈外分泌物，用专用标本刷插入宫颈内取宫颈脱落细胞置于专用保存液内。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过72小时，-20℃保存期6个月，应避免反复冻融。室温运输。
（4）本拒收状态：细菌污染标本不能作测定。
二十二、多肿瘤蛋白芯片检测（C-12）
（1）标本类型：血清2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。离心后备用。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过72小时，-20℃保存期6个月，应避免反复冻融。室温运输。
（4）标本拒收状态：细菌污染、严重溶血、脂血及黄疸的标本不能作测定。
二十三、地中海贫血基因检测
（1）标本类型：全血2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。柠檬酸钠或EDTA抗凝，不用肝素抗凝。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过5天，-20℃保存期1个月。室温运输。
二十四、CYP2C19基因检测
（1）标本类型：全血2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。柠檬酸钠或EDTA抗凝，不用肝素抗凝。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过5天，-20℃保存期1个月。室温运输。
二十五、ALDH2基因检测
（1）标本类型：全血2ml。
（2）标本采集：用真空采集管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送达实验室。柠檬酸钠或EDTA抗凝，不用肝素抗凝。
（3）标本储存和运输：室温放置不超过8小时，4-8℃不超过5天，-20℃保存期1个月。室温运输。
二十六、免疫标本采集注意事项
1、多数试验要求空腹抽血。抽血前需禁食至少8小时，但最好不超过12小时，期间不可进食，可以喝少量的水，避免剧烈运动，除某些必须按时服用的药物以外，其他药物抽血之后再服用，以免对某些检验结果有所干扰。
2、高血压系列检验标本
(1)肾素、血管紧张素Ⅱ
①病人准备：β-阻断剂、血管扩张剂、利尿剂及甾体激素、甘草等影响体内肾素水平，一般要在停药后2周测定肾素活性（PRA），利血平等代谢慢的药物应在停药3周测定。不宜停药的病人改服胍乙啶等影响PRA较小的降压药。钠摄入量影响机体PRA水平，故病人测定PRA前3天应适当减少食盐摄入量。
②标本采集：静脉取血4-5ml，拔除针头后缓慢注入到EDTA抗凝管中，盖好管塞后上下颠倒5次，如不能及时送检，请低温（2-8℃）保存， 2小时内送至检验科（最好冰水浴送检）。
③注意事项：申请单上应注明抽血时的体位（卧位：病人在早上6-8时起床前，取静脉血；立位：病人起床后活动3小时，取静脉血。）和饮食情况（普食饮食、低钠饮食）。
(2) 醛固酮
①病人准备：留样前应停服利尿剂至少3周，停服抗高血压药物1周；
②标本采集：静脉抽血3-5 ml至未抗凝管内（血清管），及时送检（3小时内至检验科）。
③申请单上注明：抽血时的体位（卧位、立位）和饮食情况（普
食饮食、低钠饮食）；
3、皮质醇标本采集及注意事项
正常人皮质醇的分泌存在昼夜节律，一般为早上8点、凌晨12点或下午4点采血，送检时请务必在申请单上注明采血时间。
4、时间：因激素在一天中不同时间变化较大，所以最好在早晨空腹时采血。女性的激素5项检测（LH、FSH、E2、PRL、T）一般建议在月经来后3-5天抽血。女性孕酮检测一般建议在月经来后21-23天抽血检测。
5、输液的影响：由于边输液边采血影响血液成份的测定！输液时尽量避免采血，确实需要应在输液的另一侧采血。
臂取血。
6、采集血液标本时动作宜迅速扎脉带使用时间要有控制，不能过长。
7、防止溶血。溶血标本可影响检测结果。
二十七、临床微生物标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm（直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人8-10ml，婴幼儿1-3ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，也应在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质.
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。
（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌或某些苛养菌感染的可能。
二、骨髓的采集
1、采集方法
在病灶部位或髂前（后）上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml，注入血培养瓶内，另抽取0.5ml 于无菌注射器，一起送往微生物室。
2、注意事项
（1）骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞，因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
（2）用于怀疑细菌性骨髓炎病人。
三、静脉导管标本的采集
1、采集方法
（1）常规导管部位皮肤消毒。
（2）无菌方法从病人体内拔出静脉导管，剪下导管尖端5cm，放
入无菌瓶中。
（3）立即（15min内）送检，避免标本干燥。
2、注意事项
（1）剪下的导管立即接种血平皿，可提高阳性率。
（2）肉汤反复冲洗导管腔内，冲洗液做定量培养。
（3）有人将剪下的导管置肉汤增菌液或培养瓶中，此法不能区分导管感染菌与少量定植菌。（4）卫生部在《医学感染诊断标准》（试行）（2001年1月3日施行）中规定：导管管尖培养其接种方法应取导管尖端5cm，在血平板表面往返滚动一次。细菌≥15cfu/平板，即为阳性。
四、呼吸道
1、痰标本
(1）采集方法
①清晨起床后用温开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中送检。
②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
③咳嗽无力或昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔经气管腔内吸引痰液送检。
④气管切开者可以深入透气孔中取痰。
⑤可用支气管镜直接在病灶部位采集高浓度的病原菌。
⑥用无菌导管经鼻腔插入气管镜内，缓慢注入无菌蒸馏水5ml，取出导管。留取患者在3h 内咳出的痰液，放入无菌容器中送检。
⑦胃内采痰法。无自觉症状的结核病人。有时可把痰误咽入胃内，因而可采用胃内溶物做结核菌培养，其阳性结果比咯痰高10%左右，该方法于晨起空腹时，把灭菌的胃管，从鼻腔送入胃内，用20ml注射器抽取胃液。
（2）注意事项
①痰标本的采集以晨痰为准，此时患者痰量较多且含菌量也多。
标本采集相关注意事项 一、静脉血标本的采集： 静脉采血时病人方面应注意的问题 1、避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨采血，住院病人可在起床前采血，回家住的病人应至少休息15分钟后采血。 2、注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食水12h后空腹采血。 3、药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。 静脉采血时护士应注意的问题 4、采血的顺序：采血顺序为：血培养→生化、免疫项目→凝血→血流变、微量元素→血沉/血常规→氟化钠血糖 5、采血时止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变。 6、当一侧手臂输液时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度。 7、血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热等等。 8、静脉采血后混匀次数说明：血培养瓶混匀8-10次，含分离胶（黄帽）的采血管混匀5次；凝血管（蓝帽）混匀3-4次，含肝素（绿帽）和血常规（紫帽）抗凝采血管混匀8-10次；血糖（灰帽）氟化钠抗凝采血管混匀8-10次；混匀方式如下图（图为混匀1次）。*注意要轻柔混匀，不要剧烈震荡，以防细胞破裂影响检验结果。 二、血培养标本的采集 血培养标本的采集指征及最佳时机 病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养： 1.发热（大于等于38℃）或低温（小于等于36℃） 2.寒战 3.白细胞增多（大于10X109/L，特别有“核左移”时）
病理标本采集技巧及注意事项病理标本采集是判断疾病诊断和治疗的重要依据，采集技巧的准确 性和注意事项的执行性对于病理学结果的准确性和临床意义至关重要。为此，本文将介绍病理标本采集的相关技巧和需要注意的事项。 【1】病理标本采集的基础知识 病理标本采集是指从患者体内采集组织或液体样本，以供病理学检查。采集到的标本经过特殊处理和染色，再通过显微镜观察和分析， 从而获得疾病诊断和病理机制等重要信息。 【2】病理标本采集的技巧与步骤 （1）选择适当的时间和部位。 在采集病理标本之前，需要确认采集的时间和部位是否与病变相关。不同类型的标本有不同的采集时间和部位选择。例如，活检标本通常 在病变活跃期采集，而固定标本则可以在任何时间采集。 （2）采集前的准备工作。 在进行病理标本采集之前，需要进行充分的准备工作。包括准备必 要的采集工具和材料，清洁采集区域，以确保采集过程的无菌和无污染。 （3）采集标本的具体步骤。 在开始采集标本之前，需要确保操作者具备必要的专业知识和技能。采集过程需要仔细而谨慎地进行，以防止标本损伤或污染。
（4）标本采集后的处理与保存。 采集到的标本需要在采集后立即进行适当的处理和保存。不同的标本类型有不同的处理要求，包括切片、固定、染色等，这些步骤对于后续的病理学检查至关重要。 【3】病理标本采集的注意事项 （1）遵守操作规范。 在进行病理标本采集时，操作者需要严格遵守相关的操作规范和流程。确保所有步骤的准确性和规范性，以免产生误诊或误判。 （2）保持良好的沟通。 在进行病理标本采集时，与患者和临床医生之间需要保持良好的沟通。了解患者的病情和相关病史，以便做出准确的标本采集决策和操作。 （3）注意标本完整性和连续性。 在进行病理标本采集时，需要确保采集到的标本具有完整性和连续性。避免在采集过程中产生断裂或丧失连续性的情况，以免影响病理学检查结果的准确性。 （4）严格遵守无菌操作。 在进行病理标本采集时，需要严格遵守无菌操作的要求。避免任何可能的污染和感染，确保采集到的标本的纯净性和可靠性。 【4】病理标本采集的相关问题和解决方法
标本采集注意事项 一、前期准备 在进行标本采集之前，需要对样本采集器具备的器材和条件进行检查和准备。 1. 检查标本采集器的器材是否完备，器械的种类、数量和完好状况是否符合要求， 以确保采样器械使用时达到可靠的状态。 2. 检查标本采集的环境，确保采集的环境卫生干净，并尽量避免外部干扰。如开窗 通风、关闭空调、禁止吸烟等。 3. 接受标本采集者的培训，了解如何正确进行标本采集，保证操作流程规范化。 二、采集前个人准备 在进行标本采集之前，标本采集者需要做好个人的准备，以保证标本采集过程的顺利 进行。 1. 标本采集者需要正确佩戴消毒口罩、无菌手套、无菌服、鞋套等严格防护物品， 严禁在无菌场所内吸烟、吃东西、喝水等。 2. 标本采集者应该提前和患者沟通，了解采集部位和过程，以便准确规划采集部位 和手法。 3. 标本采集者应该洗净手并戴上无菌手套，在操作过程中要尽量避免触摸其他表 面。 三、样本检测的选择和规划 应根据检测的目的和种类选择适当的采样方法和采样技术。不同种类的标本采集方法 和采样器械选择应根据检测对象不同而灵活选择。 1. 采样前要了解检验目的、方法和标本的种类、数量等，根据实际情况进行设计和 规划。在采集过程中，重点关注采集部位、顺序、采样体积、采样方式等关键信息。 2. 根据采集样本的种类和特点，选择适当的标本容器（如容器的材质、体积、密封性、保存液等）和标签贴，确保标本的准确采集和安全传递。 3. 如果标本采集过程中患者有任何不适或应急情况（如呼吸窘迫、晕厥等），标本采集者需要立刻停止采集，并采取相应的急救措施，并妥善保存和处置标本。 四、标本采集操作
简述标本采集的注意事项 标本采集是医学检验的重要环节，正确的采集方法和注意事项能够保证检验结果的准确性和可靠性。下面就来简述一下标本采集的注意事项。 1. 采集前准备 在采集前，需要对采集器具进行消毒处理，以避免交叉感染。同时，采集者需要进行手部消毒，戴上手套，以保证采集过程的无菌。 2. 采集部位 不同的检验项目需要采集不同的标本，因此需要根据具体情况选择采集部位。在选择采集部位时，需要注意避开有炎症、创伤、肿瘤等情况的部位，以免影响检验结果。 3. 采集方法 采集方法也因不同的标本而异。例如，血液标本采集需要选择合适的采血针，按照正确的采血顺序进行采集；尿液标本采集需要注意避免污染，避免采集到第一次排尿或最后一次排尿的尿液等。 4. 采集量 采集量也是影响检验结果的重要因素之一。采集过少的标本可能导致检验结果不准确，采集过多的标本则可能浪费资源。因此，在采
集时需要根据具体情况选择合适的采集量。 5. 采集时间 有些检验项目需要在特定的时间采集标本，例如空腹血糖需要在早晨空腹时采集。因此，在采集前需要了解具体的采集时间要求，以避免影响检验结果。 6. 标本保存 采集完标本后，需要按照要求进行保存。例如，血液标本需要在采集后立即进行离心分离，避免血细胞沉淀影响检验结果；尿液标本需要在采集后尽快送到实验室进行检验，避免细菌繁殖影响检验结果。 7. 标本运输 标本采集完成后，需要按照要求进行运输。例如，血液标本需要在采集后立即送到实验室进行检验，避免血液凝固影响检验结果；尿液标本需要在采集后尽快送到实验室进行检验，避免细菌繁殖影响检验结果。 标本采集是医学检验的重要环节，正确的采集方法和注意事项能够保证检验结果的准确性和可靠性。在采集前需要进行准备工作，选择合适的采集部位和采集方法，注意采集量和采集时间，以及标本
标本采集要求及注意事项 标本采集是医学检验工作的重要环节，正确的标本采集能够保证检验 结果的准确性和可靠性。下面是标本采集的要求及注意事项。 一、标本采集要求 1.标本应在合适的时间采集：在采集标本之前，应了解相关检验项目 的采样时间要求，避免采集不及时或过早的标本，影响结果的准确性。 2.避免标本污染：采集标本时，应注意避免标本的污染。使用无菌手 套和消毒用品进行操作，避免与其他物品接触，防止交叉感染。 3.采用合适的容器和保存方式：根据检验项目的要求，选择合适的容 器进行采集，保证标本的完整性和稳定性。同时，采集完标本后，应根据 具体项目的要求，选择合适的保存方式和温度进行保存。 4.标本采集应充分：采集标本时，应采集足够的量，以保证后续检验 的需要。一般情况下，标本的量不宜少于检验项目要求的最低标本量。 5.采集标本时应注意适当顺序：在进行多项检验时，应按照一定的顺 序进行标本采集，避免互相干扰和污染。一般推荐先采集无菌标本，再采 集非无菌标本。 二、标本采集的注意事项 1.采集前应了解相关信息：在实施标本采集前，应充分了解相关信息，包括检验项目的要求、标本采集的注意事项和操作规范等，避免操作错误 和不当。 2.标本采集前须洗手并佩戴手套：采集标本前应用肥皂和流动水充分 清洗双手，并在采集时佩戴无菌手套，避免引入细菌和其他污染物。
3.采集位置应清洁：标本采集前应用消毒液清洁采集位置，保持干净 和无菌状态，避免污染标本。 4.采集正确位置：在标本采集时，要准确找到采集部位，确保标本的 准确性。如血液标本的采集，应准确选择相应的静脉或毛细血管位置。 5.采集方法正确：根据具体标本的采集方法，进行正确采集。对于血 液标本，应按要求选择合适的针头和穿刺部位，避免疼痛和出血。 6.采集完标本后应妥善处理：采集完标本后，应及时妥善处理标本。 对于有特殊要求的标本，应按照要求进行处理和保存，确保标本的完整性 和稳定性。 7.标本采集后应送检：采集完标本后应及时送检至检验科室，避免标 本在途中受到污染或失效。 8.标本采集的记录和标识：在采集标本时，及时记录和标识标本信息，包括标本种类、采集时间、采集人员等，避免标本信息的混乱和丢失。 总之，标本采集是医学检验过程中非常重要的环节，准确的采集操作 可以保证检验结果的准确性和可靠性。采集者应严格按照要求进行操作， 了解检验项目的要求和标本的处理方式，以确保标本采集工作的质量。
血液标本采集的注意事项 1. 无菌操作：血液标本采集环境和工具必须保持无菌，以防止细菌或其他微生物的污染。插管和针头应当具备专门用途，且在使用前应先进行灭菌处理。 2. 选取适当的血管：在采集血液标本时，应优先选择较大的静脉，如前臂静脉、肘窝静脉等。避免选择表浅的血管，以减少伤害和疼痛感。 3. 洗手与戴手套：在血液标本采集前，操作人员必须经过洗手并戴上无菌手套。这是为了防止手部污染造成采集的标本出现不准确的情况。 4. 正确束带：在静脉血液采集时，可以使用束带帮助静脉突出。束带的使用时间不宜过长，通常不应超过1分钟，以免造成细胞组织压迫和采集标本质量下降。束带应绕得不太紧，有利于静脉血流。 5. 适当的采集工具：血液标本采集中常用的工具有针头和采血管。选择适当的针头和采血管，需根据采集静脉的大小、病人的年龄、病情等情况来确定。当选择时，血液采集者应选择合适长度和孔径的针头和采血管。 6. 适时更换针头：在采集血液标本过程中，如果有需要重新穿刺的情况出现，应当及时更换针头避免污染。即使在同一个病人采集多个标本时，也应更换采血针头，避免交叉污染。 7. 采样顺序：在采集多个标本时，应按照特定的顺序进行采样。通常的采样顺序为无抗凝剂的标本（如血清）优先，再采集带有抗凝剂的标本（如EDTA管）。这样可以避免抗凝剂对无抗凝剂标本的影响。 8. 避免过量抽血：在采集血液标本时，应避免过度抽血，以免对病人身体造成过度损伤和不适。通常情况下，抽血的总量不应超过病人体重的1%。 9. 采集前适当压迫：在血液标本采集前，应用无菌的纱布或棉花球进行适当压迫，使采集部位的血管充分扩张，有利于血液的顺利采集。 10. 标本标签和记录：在采集血液标本后，应准确标注和记录相关信息，包括病人姓名、病人编号、采集时间等。这有助于避免标本的混淆和错误，确保标本的准确性和追溯性。
取样操作注意事项 取样操作是科学研究和实验中非常重要的一环，它直接影响到实验结果的可信度和准确性。在进行取样操作时，需要注意以下几点：一、样本选择的代表性 样本的选择必须具有代表性，能够准确地反映整个总体的特征。如果样本选择不具有代表性，将会导致结果的误差和偏差，从而影响到研究结论的正确性。因此，在进行取样操作时，需要根据研究目的和总体特征，合理选择样本。 二、样本容量的确定 样本容量的大小直接影响到结果的可靠性和推广性。过小的样本容量可能无法准确地反映总体特征，而过大的样本容量则会增加研究成本和工作量。确定样本容量时，可以根据总体大小、置信水平、抽样误差等因素进行计算，并在实际操作中进行适当的调整。 三、随机抽样的使用 随机抽样是一种常用的取样方法，可以消除主观因素对样本选择的影响，保证样本的独立性和无偏性。在进行随机抽样时，可以使用随机数表、随机数发生器等工具，确保每个个体都有相等的机会被选中。 四、避免选择偏差 选择偏差是指样本选择过程中存在的非随机性，导致样本与总体特
征不一致。为了避免选择偏差，可以采用分层抽样、整群抽样等方法，确保样本的多样性和代表性。 五、标本保存和处理 在进行取样操作后，需要对标本进行保存和处理。标本的保存要求严格，要避免受到外界环境和污染物的影响。同时，在进行标本处理时，需要按照实验设计和研究要求进行操作，保证结果的可靠性和准确性。 六、数据采集和记录 在进行取样操作时，需要及时、准确地采集和记录数据。数据采集的过程中要注意避免操作失误和数据错误，确保数据的准确性和可靠性。同时，为了防止数据丢失和遗漏，可以采用多种方式进行数据备份和存储。 七、数据分析和解释 在进行取样操作后，需要对采集到的数据进行分析和解释。数据分析要基于科学的统计方法和原理，避免主观臆断和误导。同时，在进行数据解释时，要结合实际情况和研究目的，给出合理的解释和结论。 取样操作是科学研究和实验中至关重要的一环。在进行取样操作时，需要注意样本选择的代表性、样本容量的确定、随机抽样的使用、避免选择偏差、标本保存和处理、数据采集和记录、数据分析和解
采集各类标本的注意事项 临床检验项目涉及的标本一般由护士采集，为保证检验标本的质量，护士应熟练正确地进行标本采集以及采集的注意事项，使检验结果真正成为指导临床治疗、护理的重要依据。常见的有血液、尿液、痰液、咽拭子等标本的采集。注意事项如下： 一、血液标本的采集 1.严格执行查对制度及无菌技术操作原则。 2.采血时间：①空腹采血：血液生化检验。一般要求早晨空腹安静时采血。故指导病人晚餐后禁食，至次日晨采血，理想的采血时间是早晨7：00～8：00。②定时采血：口服葡萄糖耐量试验、药物血浓度监测、激素测定等应定时采血。 3.采血部位：①外周血：检验只需微量全血时，成人从耳垂或指尖取血，婴儿从大脚趾或脚跟取血。②静脉血：成人一般取肘部静脉，婴儿常用颈部静脉、股静脉或前囟静脉窦;刚出生的婴儿可收集脐带血。
4.采血部位扎止血带不可过紧、压迫静脉时间不宜过长，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果。 5.抽动脉血时，桡动脉穿刺点为前臂掌侧腕关节上2cm、动脉搏动明显处。股动脉穿刺点在腹股沟股动脉搏动明显处，穿刺时，病人取仰卧位，下肢伸直略外展外旋，以充分暴露穿刺部位。新生儿宜选择桡动脉穿刺，因股动脉穿刺垂直进针时易伤及髋关节。 二、尿液标本的采集 1.标本留取后，应及时送检，常规检查在标本采集后尽快送检，最好不超过2h。 2.留置导尿管术留取法：长期留置导尿管者应更换新导尿管后再留尿，不可采集尿液收集袋中的尿液送检。 3.尿常规标本：用于检查有无细胞和管型，特别是各种有形成分的检查和尿蛋白、尿糖等项目的测定。 4.12小时尿标本：常用于细胞、管型等有形成分计数，
新冠病毒标本采集注意事项 一、标本采集 （一）采集对象。 新冠肺炎病例、可疑感染人员和其他需要进行检测的人员，以及可能被污染的环境或物品等。 （二）采样人员基本要求。 从事标本采集的人员应当经过培训I,熟练掌握标本采集方法和操作流程，考核合格后方可上岗。采样时，应做好标本信息记录，严格遵守操作流程，确保标本质量符合要求、标本及相关信息可追溯。 （三）标本采集基本要求。 1.密切接触者标本由当地指定的疾控机构、医疗机构负责采集。采集标本时，要根据不同采集对象设置不同的采样区域，发热患者前往发热门诊就诊和采样。 2.确诊病例、无症状感染者、入境人员、密切接触者和密接的密接在住院、隔离观察或健康监测期间应“单采单检”，即单独采集个体的标本，单管进行核酸检测，不得进行混采混检。 3.采样人员应严格遵循采样规范，保障所采集标本质量符合要求,同时应详细记录受检者信息，可利用条形码扫描等信息化手段采集相关信息。 4.人群筛查应根据核酸提取、检测所用试剂的要求确定采样管,用于病毒分离的标本应放置于不含有病毒灭活剂的采样管。 5.物品和环境监测应根据监测目的和防控需求，确定采样物品、位置与数量，采样时应严格遵循采样规范。 （四）采集标本种类
常态防控和疫情监测主要采集上呼吸道标本，包括鼻咽拭子、口咽拭子等。 （五）标本采集和处理。 1鼻咽拭子：采样人员一手轻扶被采集人员的头部，一手执拭子,拭子贴鼻孔进入，沿下鼻道的底部向后缓缓深入，由于鼻道呈弧形,不可用力过猛，以免发生外伤出血。待拭子顶端到达鼻咽腔后壁时,轻轻旋转一周（如遇反射性咳嗽，应停留片刻），然后缓缓取出拭子，将拭子头浸入含2〜3m1病毒保存液（也可使用等渗盐溶液、组织培养液或磷酸盐缓冲液）的管中，尾部弃去，旋紧管盖。 2.口咽拭子：被采集人员头部微仰，嘴张大，露出两侧扁桃体,采样人员将拭子越过舌根，在被采集者两侧扁桃体稍微用力来回擦拭至少3次，然后再在咽后壁上下擦拭至少3次，将拭子头浸入含2〜3m1病毒保存液（也可使用等渗盐溶液、组织培养液或磷酸盐缓冲液）的管中，尾部弃去，旋紧管盖。口咽拭子也可与鼻咽拭子放置于同一管中。 （K）标本包装。 1.所有标本应当放在大小适合的带螺旋盖内有垫圈、耐冷冻的标本采集管里，拧紧。容器外注明标本编号、种类、姓名及采样日期。 2.将密闭后的标本装入密封袋，每袋限一份标本。 （七）标本保存。用于核酸检测的标本应当尽快进行检测，一般人群筛查标本，可在24小时内检测的标本置于4℃（2℃〜8°C）保存；24小时内无法检测的标本应置于-70℃或以下保存（如无-70°C保存条件，则于-20℃冰箱暂存）。 （Λ）标本送检。标本采集后室温（25°C）放置不宜超过4小时。如果需要长途运输，应采用干冰保藏，难以获取干冰时，可使用冰袋、冰
细菌培养标本采集及注意事项 细菌培养标本采集是临床微生物学检验中的重要环节，它对于细菌的 分离、鉴定和药敏试验具有重要意义。正确的标本采集能够提高细菌培养 的准确性和药敏试验的可靠性，从而对临床诊断和治疗提供准确的依据。 以下是一些细菌培养标本采集的注意事项： 1.选择合适的标本：根据临床症状和病情，选择合适的标本进行采集。例如，咽部感染可以采集口咽拭子、咳痰、深喉拭子等标本进行细菌培养。 2.采集前洗手：采集标本前，采集者应进行手部消毒或洗手，以减少 细菌的污染。同时，佩戴清洁的手套也是必要的。 3.标本容器的选择：根据需要进行细菌培养的部位和类型选择合适的 标本容器。通常情况下，采用无菌的容器，且应有足够的容量满足后续操 作的需要。 4.采集技术和操作：采集者应具备相应的技术和操作能力，以保证标 本的质量和准确性。遵循无菌操作，避免污染。不同部位的采集有不同的 技术要求，需要注意不同部位的解剖和生理特点。 5.采集适量的标本：采集者应确保要采集的标本量足够，以满足后续 的分离和鉴定操作。对于多种标本的采集，应遵循采集优先级和适宜量， 以减少不必要的浪费和重复采样。 6.保护标本：标本采集后，应及时处理和保存，以防止标本的污染和 失活。保持标本的完整性，尽量避免液体标本的泄漏和固体标本的破碎。
7.标本的迅速送检：标本采集后应及时送到实验室进行处理，以保持标本的新鲜和避免细菌生长过多或失活。不同类型的标本有不同的送检要求，应注意标本是否需要特殊的保存和运输条件。 8.注意个别特殊情况：有些特殊类型的标本采集有特殊的要求，如液体标本的胫前组织穿刺、关节穿刺液等，需要专业医师操作，且操作过程更加复杂和精细。此外，对于病程较长、曾接受治疗的患者，应注意标本的采集时机和对抗生素的处理。 9.记录标本信息：在标本采集过程中，应及时、准确地记录标本的相关信息，如采集日期、患者姓名、住院号、标本类型、采集部位等。这些信息对于后续的结果解读和结果报告都具有重要的作用。 在细菌培养标本采集过程中，除了注意上述事项外，还应遵守相关的法律法规和医院的操作规范，确保工作的规范性和安全性。同时，组织开展相关的培训和质控活动，不断提高对细菌培养标本采集的认识和技术水平。只有严格按照规范操作，才能得到准确可靠的细菌培养结果，为临床诊断和治疗提供科学依据。
标本采集注意事项 标本采集注意事项 标本的采集 1、一般生化检验采集早晨空腹的静脉血，在采血前禁食12小时 2、需要不抗凝的项目，采取规定的血量注入洁净干燥的试管中，室温放置待血液凝固后 分离血清如：生化项目：肝功、肾功、电解质、心肌酶、血糖、血脂、淀粉酶等； 免疫项目：乙肝、丙肝、、甲肝、、、、、C3、 C4、甲功、性激素类、血沉、抗“O”、类风湿因子、梅毒血清学试验等 注意：生化和免疫的标本应分开试管抽血送检，生化和免疫的项目应分开开单 其它如血常规、粪便常规、尿常规、胸腹水及其穿刺液、脑脊液等各种体液则要单独开 单 3、需要抗凝血的项目，一定要看清楚是那种抗凝管，需要血量是多少，注入试管后要立 即颠倒混匀5-6次，以达到抗凝的目的，且动作轻柔勿使血球破裂，特别是专用抗凝管的项目要严格按要求抽取血量 4、尿液检测需要采集新鲜的中段尿五毫升以上，或半杯取样杯送检 5、粪便采集后2小时内送检 采集血标本的注意事项 1、为了减少由于采血时间而造成的检验结果波动，每次采血最好固定在同一时间进行 2、从卧位到直立位，有些项目所采血液标本的测定值有升高的趋势； 3、止血带压脉时间不能太长，过长易引起多种成分的改变及血管内溶血；
4、红细胞中许多成分的浓度比血清的高几倍或几十倍甚至百倍，溶血可以影响该成分的 分析(如血钾、钠等) 5、抽血时针筒内产生的气泡不要注入试管中，否则易引起溶血； 6、避免在输液、吃药时抽血作为待测标本； 7、血液标本应及时送检 特殊标本的采集要求 微生物培养标本的采集要求基本原则 a、发现感染应及时采集微生物标本作病原检查 b、尽量在抗菌药物使用前采集标本1 c、标本采集时严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染； d、标本采集后及时送至实验室 e、送检标本应注明来源与检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环 境； 注意：细菌培养的标本收集时应注意无菌操作，所用的培养杯、试管、针筒必须是无菌的采集方法 1、下呼吸道分泌物 瞩患者清晨起床后用清水漱口，不要刷牙，咳气管深部第一口痰，吐在专用的无菌杯内，及时送检 2、尿液培养：无菌留取中段尿5-10ml于无菌试管中及时送检 3、粪便：取有粘液脓血部分的粪便约2-3g，盛于灭菌广口瓶或无菌容器中，及时送检 4、血液：凡疑似菌血症、败血症的患者，在无菌条件下采血成人5-10ml 小孩2-3ml 轻轻
野外采集植物标本的安全措施 采集植物标本是植物学实践教学的一项野外活动。由于野外采集工作所处的环境条件多种多样，情况非常复杂，因此，在进行采集过程中，防止自然灾害，保证采集人员安全是非常重要的。下面简要谈谈野外采集工作中必需注意的几点安全措施。 一、预防野生动物的伤害1、预防毒蛇咬伤我省地处亚热带，毒蛇的种 类和数量都较多，分布遍及全省各地，如大家熟知的眼镜蛇、金环蛇、银环蛇、竹叶青和蝮蛇等，都是有名的毒蛇。采集人员在野外工作时，常有可能遇到毒蛇，因此要提高警惕，防止被毒蛇咬伤，但是，毒蛇并不可怕、而且往往可以利用作药物，许多采集人员还学会掌握毒蛇的生活习性和活动规律，以及捕杀毒蛇、防治毒蛇咬伤的知识，这是制胜毒蛇的积极办法。为了安全起见，一般外出采集时，都应该注意好防护工作，如穿鞋、随身带上蛇药、棍子或其它捕蛇工具等。当进入深山、草丛、高谷和溪边等毒蛇栖息较多的地方采集时，就要先察看清楚有没有毒蛇踪迹，特别要注意多种毒蛇具有"保护色"，即它的颜色与它活动的环境相似。如竹叶青喜欢栖息在树上和灌木丛或草丛中，蝮蛇喜欢生活在溪边岩石处。如果发现毒蛇，可根据不同情况，采用"打草惊蛇"，把它赶跑，或设法捕杀它。万一被毒蛇咬伤，要沉着采取急救措施，如用清水冲洗伤口，挤压伤口排毒，服用蛇药(或用蛇药擦洗伤口)，结扎伤口上部等，并尽快到附近的医疗单位治疗。 2、防蚊、蠓、毒蜂和山蚂蟥的叮咬 在野外工作，蚊子、蠓和山蚂蟥是最令人讨厌的东西，特别是在炎热、潮湿的林中更是如此。它们除吸血外，往往传播多种疾病，如疟疾、丝虫病、流行性乙型脑炎、登革热等，蚊子就是它们的最好媒介。防护办法是穿长袖衣和长裤，同时可以使用防蚊油。为了防止山蚂蟥从树上掉下来落入衣领内，应戴草帽，这点在密林中特别要注意。用无患子的果打烂后湿涂手脚，有避山蚂蟥的作用。毒蜂对野外采集人员也常造成伤害，虽然它不至于造成生命危险，但被叮后也会影响工作和身体健康。毒蜂最常见的是黄蜂和竹蜂，它们的巢常建在灌木丛和草丛中，因此，在采集某些植物，如金樱子、山栀子、金银花时要加以注意。被毒蜂叮伤后，搽氨水或肥皂水洗，可起到缓解效果；用三叉苦叶或一枝黄花全草捣烂擦患处，也可以缓解肿痛。 3、预防大型野兽的伤害进入深山野岭采集时，要严防野猪、狗熊和虎、豹